444 10 4497 https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/70656b7ede7d51131f0603b30a0adf00.pdf 0821478bcb5ba41106b667c26d4b40da PDF Text Text �Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Manual de Procedimientos para la ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE) Dr. Marcelo Daniel de la Sota Dirección de Luchas Sanitarias �SENASA Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Av. Paseo Colón 367 C1063ACD Ciudad de Buenos Aires - República Argentina tel. (054) (011) 4331-6041 al 49 y lineas rotativas. website: http://www.senasa.gov.ar Coordinación General Dr. Marcelo D. de la Sota (Dirección Nacional de Sanidad Animal) email.: mdelasot@senasa.gov.ar Responsables de los Contenidos Dr. Marcelo D. de la Sota (Dirección de Luchas Sanitarias) Dr. Raul J. Gonzalez (Programa Enfermedades Equinas) Edición: Lic. Cristina del Llano (Coordinación de Gestión Técnica) Armado y diagramación: Area de Diseño Gráfico. Buenos Aires, agosto de 2005 4 Dirección de Luchas Sanitarias �AUTORIDADES Dr. Jorge Néstor AMAYA Presidente Ing. Carlos CASAMIQUELA Vicepresidente Dr. Jorge Horacio DILLON Director Nacional de Sanidad Animal Dr. Marcelo Daniel de la SOTA Director de Luchas Sanitarias Dr. José Luis ANTONELLI Coordinador General de Campo Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 5 �INDICE FINALIDAD ........................................................................................................................................................... 11 MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PARA LA ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE) .......................................... 13 1. Consideraciones Generales ......................................................................................................................... 13 1.1 Importancia económica ....................................................................................................................... 14 2. Etiología ........................................................................................................................................................ 14 3. Descripción ................................................................................................................................................... 15 4. Formas de presentación clinica .................................................................................................................... 15 5. Transmisión de la enfermedad ...................................................................................................................... 16 6. 7. 8. 9. 5.1 Transmisión natural .............................................................................................................................. 16 5.2 Transmisión por el hombre .................................................................................................................. 17 5.3 Otras vías de transmisión .................................................................................................................... 17 Diagnóstico de Laboratorio ........................................................................................................................... 18 6.1 Periodo de ventana para la detección de la enfermedad por medio del test ...................................... 18 6.2 Precisión de los tests diagnósticos y divergencias más frecuentes. ................................................... 18 Proceso Epizoótico ....................................................................................................................................... 19 7.1 Reservorios del virus ........................................................................................................................... 19 7.2 Población hospedadora ....................................................................................................................... 19 Medidas de Prevención y control .................................................................................................................. 20 8.1 Aplicación de las medidas de control y prevención. ............................................................................ 20 8.2 Medidas protectoras en territorios limpios (Países o regiones de países) .......................................... 20 8.3 Medidas en territorios con la enfermedad enzoótica ........................................................................... 21 8.4 Medidas a adoptar ante brotes o hallazgos de reactores positivos al test .......................................... 21 8.5 Procedimientos en predios rurales ...................................................................................................... 22 8.6 Medidas para los ingresos ................................................................................................................... 22 8.7 Procedimientos en los eventos hípicos ............................................................................................... 22 8.8 Procedimientos en los remates ferias .................................................................................................. 23 8.9 Desinfección ........................................................................................................................................ 23 Diagnóstico y Certificación: Procedimientos ............................................................................................... 23 9.1 Extracción y remisión de la muestra .................................................................................................... 23 9.2 Recepción de las muestras ................................................................................................................. 24 9.3 Tiempo de validez de las certificaciones ............................................................................................. 24 10. Procedimiento para la denuncia ................................................................................................................... 24 11. Eliminación de los reactores ......................................................................................................................... 25 REGLAMENTO SANITARIO EQUINO - Res. SAGP y A N° 617/05 .................................................................... 27 �Prefacio El presente manual de procedimientos fue redactado por la Dirección de Luchas Sanitarias, a cargo del Dr. Marcelo de la Sota y el Programa de Enfermedades de los Equidos a cargo del Dr. Raúl González. El mismo cuenta con la revisión de la Comisión Nacional de Enfermedades de los Equinos. �Finalidad El presente manual se dirige principalmente a los Veterinarios privados, sectores interesados en la producción equina y actividades hípicas, y particularmente a vastos sectores rurales que estando cultural y tradicionalmente tan cerca del caballo quedan a veces tan lejos de los conocimientos más elementales para proteger su salud. También va dirigido a las autoridades nacionales, provinciales y municipales locales igualmente responsables y encargadas de emprender acciones sanitarias contra la AIE. En su desarrollo, se pretende reavivar el debate acerca de cual fue el aprendizaje y cuales fueron los defectos u omisiones en el intento de controlar la AIE desde siempre, puntualizando aquello que está al alcance de todos y cada uno para controlarla en todo el país. Seguramente se reiterarán conceptos y se desmitificarán algunas creencias populares sobre la enfermedad que a lo largo de los años sumaron confusión y produjeron alarmas exageradas en aquellos que se enfrentaron o vuelven a enfrentarse con esta enfermedad. Por tanto, centraremos su contenido en los principios de la enfermedad, descripción, pruebas de laboratorio, evaluación de sus resultados, medidas preventivas, atención de sospechas, focos y casos de infección. 11 �Manual de Procedimientos para la ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE) 1. Consideraciones Generales Esta enfermedad se encuentra incorporada mediante el Decreto Nº 991 de fecha 14 de marzo de 1969, al grupo de enfermedades a que refiere el artículo 6º del Reglamento General de Policía Sanitaria. Por lo tanto son de aplicación todas las regulaciones previstas en la Ley Nº 3959 de Policía Sanitaria de los animales y su decreto reglamentario, lo que incluye la denuncia obligatoria, la interdicción preventiva ante la presencia de casos y la eliminación de portadores de acuerdo al articulado de las normas específicas para la Anemia Infecciosa. Lo referente a la notificación, vigilancia y seguimiento epidemiológico, análisis de riesgo y emergencias sanitarias, así como los procedimientos que contemplan los aspectos de protección y lucha contra esta enfermedad y los diferentes niveles de responsabilidad de los distintos actores en la misma, se encuentran establecidos en las Resoluciones SENASA N° 422/03 y SAGPyA N° 617/05. Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 13 �En el país, a pesar de la existencia de normativas oficiales para su control y del esfuerzo colectivo desarrollado por varios sectores en los últimos 35 años, la AIE ha constituido un enigma para muchos propietarios y productores, adquiriendo importancia no solo en relación a pérdidas directas sino también a las limitaciones, necesariamente estrictas, que imponen las exportaciones y el sostenido tráfico del comercio caballar y las actividades ecuestres. Las diferencias en la prevalencia e incidencia de esta enfermedad dependen de diversos factores, como la región geográfica y sus ecosistemas, la densidad de población de équidos y su dinámica regional, también del nivel socio cultural de sus propietarios y consecuentemente la asistencia sanitaria y profesional de los equinos y por ende del conocimiento o no de la enfermedad, muy en especial de las formas de transmisión. Pero básicamente, el cumplimiento responsable de las medidas de prevención y control, ya sean estas las impuestas por la autoridad sanitaria oficial o simplemente las de propia incumbencia y responsabilidad del propietario son definitorias. La morbilidad y la mortalidad vienen determinadas preferentemente por la sensibilidad de la población, es decir, que en los territorios con la enfermedad enzoótica (presente en forma marcada y permanente) predominan los cursos crónicos y latentes, mientras que en regiones limpias o de baja prevalencia pueden prevalecer los cursos graves sobretodo en los primeros brotes de esta enfermedad, tal como aconteció a fines de la década del 60. 1.1 Importancia económica En general, existe la creencia que solo los grandes brotes de enfermedades de los animales, con registros de alta mortalidad, acompañados de cuadros clínicos claros y manifiestos son los que originan cuantiosas pérdidas económicas. La Anemia Infecciosa Equina, en su forma más frecuente de presentación crónica e inaparente, es un claro ejemplo de enfermedad de presentación «poco visible» para el productor, lo que hace posible que, a través de su diseminación insidiosa, solapada y permanente, genere pérdidas regionales por millones de dólares anuales sin que cada productor en particular registre tal magnitud. Esto se expresa mediante el permanente reemplazo y reposición de equinos de trabajo que propone esta enfermedad, y que es lo que provoca tales mermas productivas. Según un estudio realizado en Santa Fe a comienzos de los años 90, en el centro y este de la región ubicada al norte del paralelo 32, el desplazamiento de bovinos provocado por la superpoblación de equinos de trabajo portadores de esta enfermedad – para el cálculo fue considerado que por su bajo rendimiento se requieren para cumplir tareas rurales de dos a tres equinos por uno – era equivalente a 40-50 millones de dólares anuales medidos en kilos de carne bovina. En esta línea de análisis, si bien no existen antecedentes de ponderación económica similares a lo descripto, debiera tomarse en cuenta que en todo nuestro territorio nacional, el equino es aún hoy una herramienta insustituible, no solo formando parte de la cadena de recolección y distribución de una gran variedad de productos pecuarios y agrícolas primarios que de otra forma no llegarían luego a ser bienes contabilizables en el mercado, o al menos lo harían generando mayores costos - sino también en relevantes tareas tales como el control de fronteras o las relacionadas con el desarrollo sociocultural de numerosas poblaciones rurales en las cuales el caballo garantiza la asistencia sanitaria y educativa de sus pobladores. 2. Etiología El virus RNA de la anemia infecciosa pertenece a la familia Retro viridae, incluyéndose entre los llamados lentivirus, caracterizados por una alta tasa de mutación, que por estar genéticamente relacionado con el virus de HIV-SIDA, ha sido motivo de muchas investigaciones en el campo de la medicina humana en los últimos años, en el intento de conocer más en 14 �profundidad aspectos de la estructura molecular y el mecanismo de replicación de estos virus. Se conoce que algunas cepas de AIE matan rápidamente, mientras que otras inducen una enfermedad crónica severa, pero es sabido también que muchas cepas de campo de la actualidad, inducen muy pobres o ausentes signos clínicos de enfermedad tornando compleja su detección si no se recurre a análisis de laboratorio. No obstante, es imperioso asumir que todas las cepas de AIE tienen el potencial genético para enfermar, independientemente que la enfermedad se manifieste clínicamente o no. 3. Descripción La AIE es una enfermedad infecciosa producida por un virus que es exclusiva de caballos, asnos y mulas, de amplia difusión en todo el mundo, que no tiene cura ni vacuna preventiva, caracterizada por una variedad de síntomas relacionados a la anemia, que termina invariablemente en la muerte del animal. La duración del plazo de incubación (tiempo que transcurre entre el ingreso del virus y la aparición de síntomas) es variable, de 5 a 30 días y en oportunidades hasta varios meses. Esto depende ante todo de la cantidad y calidad de la dosis infectante, si bien esto no ejerce ninguna influencia sobre el nivel de gravedad y el posterior curso clínico seguido por la enfermedad. El curso dependerá más de la predisposición y respuesta inmunitaria del animal infectado que de factores debilitadores de la resistencia. Una vez infectado, el equino es portador del virus por el resto de su vida. 4. Formas de presentación clinica Un equino infectado puede evidenciar una de las cuatro siguientes formas: a. Sobreaguda: presentación no frecuente. Es una presentación de infección en la cual el animal muere súbitamente antes de presentar signos clínicos. Solo es detectable posmortem (mediante necropsia y análisis de laboratorio). b. Aguda: Sus síntomas principales son fiebre alta e intermitente, incremento de la frecuencia del pulso, apatía, incoordinación en algunos casos, mucosas de tonalidad entre roja sucia e ictérica (amarillenta) con hemorragias difusas, edemas subcutáneos, y pérdida de condición corporal pese a conservar el apetito. En esta forma el nivel de virus en sangre es muy alto por lo que podrá ser transmitido más fácilmente a otros caballos como se verá más adelante. c. Subaguda a crónica: se mantienen los mismos signos clínicos descriptos para la forma aguda pero de una manera más atenuada, pudiendo ocurrir la muerte del animal luego de una corta agudización de los signos. El equino infectado entra y sale de esta forma clínica hacia la forma aguda o crónica de manera cíclica, presentando períodos de normalidad - la forma inaparente - entre episodios. Este comportamiento cíclico, generalmente dilata la consulta profesional y la imprescindible confirmación del laboratorio; si bien la detección de algún síntoma, como la pérdida de peso y la apatía debieran provocar siempre la sospecha. Los equinos que se encuentran en esta etapa tienen generalmente un nivel más moderado de virus circulante pero constituyen igualmente muy buena fuente de virus. 15 �d. Subclínica o inaparente: solo detectable por medio del test de laboratorio aplicado rutinariamente, es otra forma de presentación muy frecuente de la enfermedad. En esta etapa el caballo luce sano y nadie advierte su enfermedad pudiendo mantenerse así gran parte de su vida. Otros en cambio, regresan a la forma subaguda a crónica a causa de estrés, excesivo trabajo, a otras enfermedades o a parasitosis, a ciertas medicaciones como los corticoides o por la reversión del virus a formas más dañinas dentro del propio organismo del equino. Como conclusión, la forma crónica y la inaparente, con sus «señales» pobres o ausentes, constituyen el verdadero desafío para el control de la enfermedad por constituir el único y verdadero reservorio y fuente de virus para la persistencia de la enfermedad en los rodeos y su propagación territorial. 5. Transmisión de la enfermedad La AIE no es una enfermedad contagiosa, sino una enfermedad infecciosa transmisible. El uso poco preciso de los términos contagiosa o infecciosa, conduce a veces a un exagerado temor a la infección y a la enfermedad y a la justificación de que todo lo que se haga es en vano. Al contrario de lo que muchas veces se cree, y a excepción de la vía intrauterina, la transmisión del virus no se produce por transmisión directa (contagio) de un animal infectado a otro susceptible o sano. Para que el ingreso del virus a un animal sano se produzca, es indispensable que se vehiculice sangre desde un portador en forma mecánica. Desde esta óptica, puede afirmarse entonces que si se controlaran las vías más comunes de vehiculización, la enfermedad es altamente controlable. Las principales vías de transmisión mecánica a las que referimos son básicamente dos, la transmisión natural producida a través de algunas especies de insectos hematófagos y la que provoca la mano del hombre. 5.1 Transmisión natural Se ha comprobado fehacientemente que los distintos tipos de tábanos y moscas «chupadoras» de sangre son transmisores mecánicos del virus. Algunos investigadores citan la probabilidad de que algunas especies de mosquitos lo hagan - en particular los de gran tamaño - pero en menor grado y siempre de manera mecánica. Para que esta forma de transmisión sea posible, es preciso que el acto alimentario del insecto, iniciado sobre un equino portador del virus, quede incompleto por algún motivo (p.e. defensas del animal) debiendo entonces concluir su comida sobre otro equino sano. Según pudo comprobarse, el virus va perdiendo su capacidad infectante en la boca de estos insectos sobreviviendo en ella entre 15 minutos a 4 horas. Por lo tanto, la probabilidad y el grado de transmisión son altos cuando en una población de equinos se dan simultáneamente estas tres condiciones: 16 1. alta carga de tabánidos sobre el lugar (región, época del año, etc.), 2. distancias estrechas entre los equinos (factor que adquiere mucha importancia en lugares de estabulación o de alta concentración), y 3. un nivel infectivo suficiente en la sangre de el/los portador/es, que como fuera dicho es muy alto cuando se presentan síntomas clínicos. Dirección de Luchas Sanitarias �5.2 Transmisión por el hombre Se afirma que el virus puede sobrevivir varios meses a temperatura ambiente en sangre o suero secos infectados. Esta es la razón para afirmar que involuntariamente la mano del hombre es en muchos casos la principal forma de diseminación, y para ello bastará la presencia de tan solo un portador de virus para iniciar una diseminación masiva dentro de un establecimiento. A nivel rural, entre los elementos de uso común con riesgo cierto de vehiculizar el virus, se citan los frenos, espolines, mordazas, cinchas, sudaderas, rasquetas y demás elementos relacionados al equino, cuando sin una buena higiene y desinfección previa, son compartidos por distintos equinos. Es así como estos enseres tan familiares y conocidos para el hombre de a caballo, se transforman en «armas» sanitariamente peligrosas. Son igualmente considerados de alto riesgo, la omisión de cambio de aguja al efectuar tratamientos, vacunaciones o desparasitaciones colectivas, extracciones de sangre y/o las esterilizaciones o desinfecciones imperfectas de agujas, jeringas, sondas gástricas y todo tipo de instrumentos o material punzo cortante utilizado en maniobras quirúrgicas, odontológicas, terapéuticas (infiltraciones), diagnósticas, de identificación (tatuajes), etc... También está descripto en algunos trabajos, que los saches o frascos multidosis (vacunas, vitaminas, terapéuticos, etc.), al ser compartidos por más de un caballo están expuestos a quedar contaminados con el virus, siendo una excelente vía de diseminación. En definitiva, todo aquello que pueda vehiculizar sangre infectada de un portador enfermo (aún estando seca, en la cual según algunos autores el virus persiste varios meses) a un receptor sano, debe ser considerado de alto riesgo. El Servicio Oficial de los Estados Unidos concluye al respecto: «No existe una base científica que justifique el miedo de adquirir la AIE a partir de reactores positivos conocidos, cuando el predio o lugar en donde estos equinos se cuarentenan, respeta 200 yardas (180 metros) de distancia respecto del resto de equinos sanos», agregando «La probabilidad de diseminar y adquirir el virus cuando se mezclan en un predio equinos no testeados (sin diagnóstico de laboratorio), aún cuando solo exista un infectado entre 10.000, es significativamente mayor - probablemente más de un millón de veces - que la proveniente de equinos positivos bien cuarentenados.» En esto reside la importancia de conocer el estado serológico de toda la población mediante un test periódico. 5.3 Otras vías de transmisión En niveles menos frecuentes, se describe la transmisión del virus desde la yegua infectada al potro, aún cuando este aspecto no está absolutamente claro si el contagio tiene lugar por vía intrauterina o post partum a través de la leche materna. También se contempla la posibilidad de contagio por medio del coito, puesto que se ha conseguido la transmisión experimental del virus mediante inyección subcutánea de esperma de un semental enfermo con signos clínicos. Por ser eliminado el virus con excreciones y secreciones, algunos consideran posible la transmisión oral al beber agua o pienso infectados, si bien esta circunstancia únicamente desempeñaría un papel importante si se acompaña de la existencia de microlesiones en la boca o en el tracto digestivo del receptor susceptible que actuarían como puerta de entrada a dosis infectantes suficientes. Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 17 �6. Diagnóstico de Laboratorio. El cuadro clínico de la enfermedad es como vimos muy variable pero al menos permite la sospecha en muchos casos. Por este motivo, ante la presencia de cuadros febriles, incremento de la frecuencia del pulso, apatía, pérdida de condición corporal aún con apetito conservado, resulta imprescindible la práctica del test diagnóstico específico para descartarla y para esto se han propuesto distintos tests serológicos para la identificación de anticuerpos ya que la detección de los mismos indican invariablemente que ese animal tomo contacto con el virus, en consecuencia ha contraído la enfermedad. La Organización Internacional de Epizootias (OIE) recomienda hasta hoy como método diagnóstico de elección la prueba de inmunodifusión en gel de agar (ID), desarrollada por Leroy Coggins en 1972, por ser la única prueba que descubre con máxima seguridad a los portadores de virus sin manifestaciones clínicas. Este test solo puede ser realizado por laboratoristas de la Red Oficial de Laboratorios para lo cual los técnicos son entrenados y evaluados periódicamente en su competencia para integrar la misma. La lista y ubicación geográfica de estos laboratorios con la nómina de los profesionales autorizados a extender certificaciones, es actualizada y difundida bimestralmente por el servicio oficial para conocimiento de los usuarios. En la actualidad existen otras pruebas (Tests de ELISA) con ventajas y desventajas respecto del Test de Coggins (ID), no obstante sigue siendo éste último el requerido para las campañas oficiales en los diversos países y para el comercio internacional. Si el resultado del test de Coggins es claramente positivo en los équidos adultos, el diagnóstico se considera confirmado, independientemente de la ausencia o existencia de signos clínicos y de cuál sea la gravedad de los mismos, y aun cuando existan indicios presuntivos de estarse desarrollando además otras patologías no infecciosas. 6.1 Periodo de ventana para la detección de la enfermedad por medio del test El llamado efecto «ventana» de una enfermedad es el período comprendido entre el momento en que se produce la infección o ingreso del virus al organismo y la probabilidad cierta de que el test diagnóstico de laboratorio detecte los anticuerpos como para dar un resultado positivo, confirmando de esta forma la condición de portador. Este período es para la AIE de 1 a 3 o más meses. En razón de lo dicho, es que para confirmar un diagnóstico negativo, se recomienda que siempre se ratifique esa condición mediante otra prueba efectuada a los 60 días de la primera, sobretodo cuando se incorporan nuevos equinos a una población controlada. Es decir que antes de incorporarlos definitivamente al predio, se los mantenga separados del resto de la población residente hasta conocer el resultado de esta prueba confirmatoria. Durante este período se pondrá especial cuidado en prevenir las formas potenciales de transmisión vistas arriba. Esta particularidad de la enfermedad también explica porque en la reglamentación para los controles de tránsito y de ingreso y permanencia a concentraciones, se haya adoptado el plazo de 60 días como el período aceptable dentro del cual todo equino, que se traslada o que asiste o permanece en lugares de alta concentración, debe estar certificado con resultado negativo por un laboratorio habilitado por el SENASA. De esta forma se apunta a minimizar el riesgo y la probabilidad de diseminación a través de los portadores. 6.2 Precisión de los tests diagnósticos y divergencias más frecuentes. No siempre en el laboratorio pueden obtenerse resultados precisos. Algunas veces ocurren discordancias como resultado de diferencias de test a test, por ejemplo: entre la técnica de ID y la de ELISA, de un laboratorio a otro, de lectura a lectura usando el mismo método y 18 �realizándolo en el mismo laboratorio, o entre dos muestras de un mismo animal. Esto puede suceder en presencia de muestras de sangre que están cerca del límite técnico que tienen las pruebas en si mismas para poder detectar los anticuerpos, a diferencias relacionadas a un fenómeno biológico o simplemente a diferencias en el desempeño humano. La razón biológica de divergencia más frecuente es que el equino en cuestión tenga muy bajos niveles de anticuerpos contra el virus de AIE. El equino puede haber estado recientemente expuesto y recién está comenzando a producir anticuerpos. Otras veces, los portadores inaparentes tienen un nivel consistentemente bajo de anticuerpos contra el virus de AIE, lo que sugiere un bajo nivel de replicación viral y una baja estimulación. Afortunadamente, este tipo de reacciones se observan en muy baja proporción, pero en ambos casos el resultado final es el mismo: el nivel de anticuerpos es tan bajo que la reacción de la prueba escapa a la detección de algunos de los tests de rutina o es de difícil o débil lectura. La presentación de resultados débilmente positivos en el test de Coggins pueden presentarse: 1. En potros sanos que vehiculizan todavía anticuerpos maternos persistentes. Un segundo análisis realizado 2 meses después del destete arrojará resultado claramente negativo. 2. En équidos infectados que están aún en período de incubación. En este caso el segundo análisis efectuado 30-60 días después arrojará resultado claramente positivo. 3. En animales con la infección latente. El segundo análisis da por lo regular el mismo resultado débilmente positivo. En el procesamiento del test y en el reporte de resultados, pueden ocurrir errores humanos en múltiples aspectos. Primero, podría haber ocurrido un error técnico en el procesamiento de la muestra. Por ejemplo, en el test de ID, errores en la preparación del agar y placas y el uso de sacabocados más pequeños que los recomendados, o el lavado de los «wells» para ELISA, pueden dar resultados incorrectos. Segundo, el técnico puede sentirse incómodo o poco dispuesto para interpretar y reportar como positiva una muestra con una reacción a la ID muy débil. Tercero, puede ocurrir una pérdida en la integridad de la muestra por contaminación o mal rotulado. No obstante lo dicho, las falsas reacciones negativas en el test de AIE son extremadamente raras y además puede afirmarse que el impacto de estos equinos diagnosticados como falsos negativos es considerado significativamente bajo con respecto a los cientos de miles que nunca han sido testeados. 7. Proceso Epizoótico 7.1 Reservorios del virus El virus está muy adaptado a los équidos y tiene como reservorio única y exclusivamente a las poblaciones equinas infectadas. Independientemente de que la enfermedad se manifieste clínicamente o no, está presente en todo portador del virus - por tanto positivo al test siendo de esta forma una potencial fuente de diseminación por las vías de transmisión vistas. 7.2 Población hospedadora El hecho de que en los territorios enzoóticos, casos con la forma aguda se presenten con menor frecuencia que la enfermedad latente o inaparente, no puede atribuirse, por consiguiente, a la falsa creencia de que un gran número de animales superaron la enfermedad. 19 �Todos los solípedos son igualmente susceptibles, independientemente de cuál sea su especie, raza, edad o sexo. Una vez infectado el animal susceptible, en virtud de la persistencia típica de este lentivirus, el équido, a pesar de generar anticuerpos, se convierte en un portador de virus por el resto de su vida. En la infección natural, tanto en la enfermedad clínica como en la latente, los anticuerpos formados no garantizan ninguna protección inmunitaria, por lo que los animales infectados pueden enfermar gravemente y morir al cabo de meses o años, tras largos períodos asintomáticos. Por esto, hasta el presente, no ha sido posible disponer de una vacuna eficaz, ni de una terapia efectiva. 8. Medidas de Prevención y control Vistas las características de la enfermedad, todas las medidas preventivas y de lucha y control que se aplican en los distintos países del mundo, se concentran en: a) La detección de los portadores mediante el test diagnóstico de laboratorio. b) La eliminación de los mismos, mediante sacrificio o envío a faena. El objetivo de lo expresado es evitar la difusión territorial del virus y el incremento de equinos portadores. El sostenimiento de este sistema, permite en algunos casos y regiones que, en condiciones ecológicas favorables y con la participación responsable y activa de todos los actores ligados al caballo y al ámbito rural y ecuestre, pueda ser controlado o erradicado paulatinamente. Si bien son conceptualmente iguales, las medidas de prevención pueden ser modificadas según se hable de países o regiones libres de la enfermedad, o de territorios con presencia enzoótica de la misma, pudiéndose en éstos territorios diferenciar a su vez zonas o regiones según el nivel de prevalencia de la enfermedad. 8.1 Aplicación de las medidas de control y prevención. Puede decirse de manera general que respecto a la implementación de estas medidas, las acciones de control están más relacionadas con la aceptación y aplicación de las reglamentaciones establecidas por la autoridad sanitaria, y las acciones de prevención recaen en manos de productores y propietarios, siendo por lo tanto de su propia y exclusiva responsabilidad el disponerlas en defensa del patrimonio propio o de terceros. En este sentido, para el éxito en el control de la enfermedad debe sumarse al accionar de las entidades oficiales, la participación imprescindible del usuario mediante el conocimiento y cumplimiento de las normas, el requerimiento de asesoramiento técnico profesional privado, y la aceptación y aplicación responsable de las medidas y recomendaciones que son de su exclusiva competencia. 8.2 Medidas protectoras en territorios limpios (Países o regiones de países) Cada importación o ingreso de solípedos al país o región libre exigirá en origen un certificado oficial en el que se haga constar que no más de 5 días antes de efectuar el embarque o transporte: 20 1. Los animales no presentaron signos clínicos de la enfermedad. 2. Los animales permanecieron como mínimo durante los 3 meses últimos en su establecimiento de origen. 3. Los animales arrojaron resultado negativo al test de Coggins realizado 30 días antes de su embarque o egreso. Dirección de Luchas Sanitarias �4. Los animales que ingresan para permanecer corto tiempo en el país o región (exposiciones y concursos hípicos) también cumplirán los tres requisitos precedentes. 5. Los que vayan a quedarse definitivamente en el país o región limpia se someterán posteriormente a su arribo, a una cuarentena de 30 días como mínimo, debiendo presentar un segundo test negativo confirmatorio realizado a los 60 días del efectuado en origen para que se autorice su ingreso definitivo. 8.3 Medidas en territorios con la enfermedad enzoótica Marco general Además de la denuncia obligatoria, desde 1979 existe en la República Argentina la obligación oficial de certificar con un test negativo no sólo a todos los équidos que traspasen las fronteras del país y a los destinados a la producción de sueros, sino también a todo équido que se traslade o que ingrese y/o permanezca en concentraciones a los que asisten equinos desde diversos orígenes. Si bien la legislación no contempla la obligatoriedad de realizar pruebas de control dentro de los predios en la medida que no se registren egresos desde los mismos, para mantener predios controlados las recomendaciones técnicas establecidas desde los comienzos de la campaña de lucha, y de aplicación voluntaria, son los mismos: 1. Realizar uno o dos test anuales en poblaciones estables de manera sistemática, en especial en zonas, o luego de temporadas de alta carga de insectos. 2. Establecer cuarentenas internas para los ingresos de nuevos equinos, reconfirmando la condición de negativos de los ingresantes a los 30-60 días posteriores y recién allí incorporarlos definitivamente al predio. 3. Garantizar el buen manejo de las posibles fuentes de transmisión descriptas anteriormente (material descartable, intercambio de enseres, desinfección, etc.). Como fuera dicho, la realización del test solo puede ser efectuada en laboratorios habilitados de la Red Oficial, quienes para su habilitación y mantenimiento en la Red, son previamente entrenados y luego evaluados periódicamente por el servicio oficial. 8.4 Medidas a adoptar ante brotes o hallazgos de reactores positivos al test Es única responsabilidad del propietario o responsable que ante animales clínicamente enfermos o inaparentes con resultado positivo al test de Coggins, proceda a: i) separarlos inmediatamente del resto, ii) efectuar la denuncia y iii) eliminarlos, por sacrificio inmediato en el lugar a los sintomáticos o con marcado a fuego y posterior remisión a faena. Una vez confirmado el diagnóstico, está contraindicado todo tipo de tratamiento, ya que vale recordar que el animal positivo, es un animal infectado, y se convierte en portador y reservorio del virus toda su vida, convirtiéndose en una potencial fuente de diseminación de la enfermedad sino se evitan las vías mecánicas de transmisión. Todo equino que estuvo en contacto con un caso infeccioso de una forma tal que se considera que ha estado considerablemente expuesto y por consiguiente corre el riesgo de contraer la infección, se debe aislar de los demás caballos y ser sometido a control clínico y serológico. Siempre que se presente esta enfermedad, se llevará a cabo una adecuada lucha contra los insectos y se acentuará la prevención de diseminación descripta para las formas de transmisión por la mano del hombre. Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 21 �8.5 Procedimientos en predios rurales En zonas de baja infección, al ocurrir en los predios hallazgos ocasionales de portadores, se deben eliminar de la población todos los equinos con test positivo; y de manera inmediata los que presenten además manifestaciones clínicas; el resto de los equinos del predio que contactaron con los positivos (sean negativos al test o no testeados), deben ser aislados y remuestreados a los 60 días para su confirmación diagnóstica. De verificarse nuevos hallazgos en éstos lotes, se repetirá el procedimiento tantas veces como sea necesario hasta asegurarse que toda la población es negativa. En los territorios con alta presencia de la enfermedad, se irán constituyendo paulatinamente efectivos de equinos seronegativos, los que deben ser mantenidos a la distancia indicada de 180 metros de la población infectada; estos lotes se protegerán del ingreso del virus con una continuada lucha contra los insectos y un adecuado manejo diferencial de los aperos, arneses y utensilios. Mediante la eliminación progresiva de los équidos seropositivos de la población remanente, combinada con el aislamiento y ulterior control de los animales en contacto, se irá reduciendo continuadamente el número de équidos infectados presentes en el territorio, y con ellos los reservorios del virus. Posteriormente, estos predios se manejarán como fue descripto para zonas de baja infección. 8.6 Medidas para los ingresos En forma similar a otras enfermedades infecciosas que afectan a los animales, la responsabilidad de los ingresos de équidos a establecimientos o predios de cualquier índole es exclusivamente de la entidad, del propietario o responsable de los mismos, por lo tanto para prevenir el ingreso de la enfermedad a una población, todo equino que ingrese debiera hacerlo bajo las siguientes condiciones: 1) Con diagnóstico y certificado negativo de origen. 2) Aislamiento del resto de la población estable, un mínimo de 180 metros de distancia (50 metros pueden ser efectivos en épocas o regiones sin tábanos). 3) Verificación de la negatividad mediante dos pruebas consecutivas, separadas una de otra por un intervalo de 30 días entre ambas o al menos una prueba confirmatoria a los 60 días de la fecha de realizada la anterior. 4) Durante la cuarentena, se garantizará el control y el buen manejo de las posibles fuentes de transmisión mecánica descriptas. 8.7 Procedimientos en los eventos hípicos La adaptación de las medidas recién descriptas, dada la gran dinámica de movimiento y estabulación de equinos debe centrarse en: 22 1) Diagnóstico y certificado negativo de origen. 2) Verificación de la negatividad. Se podrá disponer al ingreso la utilización de la prueba rápida de Elisa para los de corta permanencia, y en todos los casos - mayor lapso de tiempo de permanencia o reingresantes al predio – se confirmará la negatividad por test de Coggins. 3) Los que arrojen resultado positivo a ELISA se aislarán de inmediato en un box con protección contra insectos, hasta confirmación por la técnica de inmunodifusión. 4) Hasta conocer el estado serológico de los ingresantes o reingresantes, se garantizará el control y el buen manejo de las posibles fuentes de transmisión mecánica. �8.8 Procedimientos en los remates ferias Los certificados de AIE, deberán ser presentados al ingreso de los equinos a las autoridades sanitarias para su verificación y siempre con anterioridad a la realización de la subasta. Las tropas o équidos que arriben al predio ferial y que no se encuentren amparados por la mencionada certificación, serán considerados de riesgo sanitario, quedando interdictados en el lugar para posteriormente ser remitidos a faena sanitaria. Los certificados que no den cumplimiento a las normas establecidas al respecto, quedarán intervenidos y retenidos por la autoridad oficial independientemente del tiempo que reste para su vencimiento, labrándose las actuaciones correspondientes a efectos de determinar las responsabilidades del caso. Estas tropas o équidos que arriben al predio ferial con estas certificaciones intervenidas, quedarán aislados e interdictados en el predio hasta la realización de una prueba oficial a cargo del remitente. Los licenciatarios, propietarios o responsables de los mercados de concentración (Rosario, Liniers, Córdoba u otros), o de ferias regionales serán responsables de que los equinos que se encuentren o presten servicio en las instalaciones de los mismos cuenten con la certificación de Anemia Infecciosa Equina con diagnóstico negativo con una antigüedad no mayor a sesenta (60) días. 8.9 Desinfección El virus exhibe una marcada resistencia a las influencias físico-químicas, por lo que sólo una limpieza y desinfección escrupulosamente efectuada con un desinfectante en concentración suficiente permiten la destrucción del virus. Para la desinfección química de los instrumentos, primero se debe remover todo resto de suciedad mediante lavado y cepillado y luego sumergirlos en desinfectantes fenólicos por 10 minutos. Cuando la materia orgánica no es removida puede utilizarse clorhexidina o compuestos fenólicos combinados con un detergente. Para la desinfección personal se indican alcohol, hipoclorito de sodio o compuestos yodados. 9. Diagnóstico y Certificación: Procedimientos Es la resultante del conjunto de responsabilidades y tareas compartidas por el responsable, propietario o tenedor del/los equinos que solicita el test, el veterinario acreditado que extrae la sangre e identifica al equino y el laboratorista de la Red Oficial que realiza y lee la prueba serológica específica e informa el resultado. Cada uno de los actores mencionados asume su responsabilidad firmando en los respectivos lugares asignados en el formulario de certificado de Anemia Infecciosa Equina, Libreta Sanitaria o Pasaporte. 9.1 Extracción y remisión de la muestra Las muestras de sangre deben ser extraídas por la autoridad oficial o por un profesional veterinario acreditado oficialmente, siendo su responsabilidad: a. Acompañar a las muestras que remite, con el certificado de AIE, Libreta Sanitaria o Pasaporte aprobados por la autoridad oficial. b. Completar apropiadamente o verificar según se trate, los datos de estos documentos, con especial énfasis en lo referente a la reseña del animal y a la ubicación del equino al momento de extraer la sangre. 23 �c. En caso de verificar que la residencia de los equinos difieren de la consignada en las libretas, acompañará al material remitido de una nota con firma y sello consignando la ubicación de los equinos al momento de la extracción. d. Comunicar al propietario o tenedor del equino sobre los procedimientos y obligaciones a cumplir según las normativas de control vigentes. La sangre se volcará en tubos sin anticoagulante, utilizando rigurosas condiciones de asepsia, y luego las muestras se mantendrán refrigeradas en heladera sin congelar, hasta su remisión al laboratorio seleccionado. 9.2 Recepción de las muestras El laboratorista es responsable de: a. No dar ingreso a ninguna muestra, si el material remitido no viene acompañado de su correspondiente certificado de AIE, Libreta Sanitaria o Pasaporte aprobados por la autoridad oficial. b. No procesar las muestras si la documentación adjunta correspondiente a cada muestra no garantiza el eventual seguimiento oficial ante posibles hallazgos de reactores positivos, en particular: 1. La ubicación de los equinos al momento de la extracción. 2. Los datos del tenedor de los mismos. 3. La correcta identificación de cada equino. 4. La firma y aclaración del veterinario extractor de la muestra y del propietario o tenedor. 5. Cualquier otra irregularidad que impida la actuación oficial ante una denuncia. 6. Certificar solo sobre documentos con modelos aprobados oficialmente. Para facilitar la operatoria, los laboratorios podrán disponer de un formulario de recepción propio donde conste la conformidad del remitente y del laboratorio respecto de la documentación que acompañan a las mismas, número de muestras recepcionadas y su correlatividad con el Nº de certificado o Libreta que acompaña a cada muestra. 9.3 Tiempo de validez de las certificaciones La reglamentación vigente establece la obligatoriedad de realizar el test diagnóstico a los équidos que se encuentren en alguna de las condiciones que siguen: a. Todos los équidos del país que se movilizan, cualquiera sea su origen y destino, con excepción de aquellos con destino final a faena. b. Todos los équidos residentes en lugares de concentración tales como: clubes hípicos, caballerizas, centros de descanso, clubes de campo, countries; hipódromos, cuadreras, centros de entrenamiento o eventos deportivos para la práctica del pato, polo, trote, salto, equitación, prueba completa; espectáculos públicos, domas, jineteadas, desfiles tradicionalistas, marchas; paseos, recreación; o cualquier otra actividad o situación en la que convivan o se reúnan equinos de diversos orígenes. La validez de un resultado negativo, es de 60 días contados a partir de la fecha de extracción de la muestra. 10. Procedimiento para la denuncia Por estar reglamentada la denuncia obligatoria, la misma no es excluyente respecto de quien la formula ante la autoridad oficial, por lo que todo el que esté en conocimiento de la existencia de reactores estará igualmente obligado a realizarla. 24 Dirección de Luchas Sanitarias �No obstante, por ser el hallazgo de un positivo la resultante de responsabilidades compartidas por el tenedor del/los equinos, el veterinario que extrae la sangre y el laboratorista de la Red, el siguiente es el ordenamiento de procedimientos a seguir: a. El laboratorista está obligado a i) comunicar conjuntamente el resultado a la delegación oficial correspondiente a su zona de ubicación y al veterinario extractor, por cualquier medio fehaciente de comunicación (con evidencia documentada y comprobable); ii) retener la documentación que acompañó a la/las muestra/as objeto de la denuncia y iii) hacer entrega o remitir la documentación original al veterinario oficial cuando éste se lo requiera. b. El veterinario actuante notificará de inmediato por cualquier medio fehaciente de comunicación a la delegación oficial regional correspondiente a la localidad en que se encuentra el predio de residencia de los equinos y al tenedor de los equinos en forma conjunta. c. A partir del momento de tomar conocimiento del resultado POSITIVO del examen, es responsabilidad exclusiva del propietario o responsable, el aislamiento e inmovilización de/del los equino/s dentro del predio, hasta la intervención oficial y su posterior eliminación. d. El tenedor podrá optar por realizar una segunda prueba confirmatoria, la que será única y realizada solo en forma oficial, y sin que hayan transcurrido más de VEINTE (20) días corridos de intervalo entre la primera y la segunda extracción y manteniendo al equino en estricto aislamiento. e. De presentarse litigios sobre resultados de pruebas realizadas sobre un mismo equino, solamente se dará por válida y definitiva aquella cuya extracción y diagnóstico sea realizado únicamente por el servicio oficial. 11. Eliminación de los reactores Los equinos con sintomatología de la enfermedad, confirmados con resultado positivo al test, deberán ser sacrificados de inmediato en el lugar de residencia. Los portadores serológicos sin síntomas, se marcarán a fuego con las letras AIE en la tabla del cuello del lado izquierdo y podrán ser remitidos a faena directa en cuyo caso serán marcados además con una letra F en la grupa derecha. Cualquiera de las acciones indicadas deberán ser supervisadas por un funcionario oficial. Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 25 �REGLAMENTO SANITARIO EQUINO (Res. SAGPyA N° 617/05) Apartados del Anexo II relacionados a la A.I.E. 7.12. Anemia infecciosa Equina 7.12.1. Los équidos que se movilicen con cualquier origen y destino, con excepción de aquéllos destinados a faena, deberán haber sido sometidos al diagnóstico de Anemia Infecciosa Equina, y transitar acompañados con una certificación de Anemia Infecciosa Equina negativa vigente. 7.12.2. Para los casos de importación y exportación de équidos el diagnóstico de Anemia Infecciosa Equina será realizado por la Dirección de Laboratorios y Control Técnico del SENASA o por el organismo oficial o laboratorio de Red que autorice la Dirección Nacional de Sanidad Animal del SENASA. 7.12.3. Todo équido clínicamente enfermo y/o sospechoso de padecer Anemia Infecciosa Equina deberá ser inmediatamente aislado del resto de los equinos hasta tanto se confirme la enfermedad por medio del diagnóstico de Anemia Infecciosa Equina. En équidos con sintomatología clínica sospechosa de Anemia Infecciosa Equina, un diagnóstico 27 �serológico negativo solamente se interpretará como tal, cuando hayan transcurrido VEINTE (20) días desde la aparición de los primeros síntomas. Vencido este plazo se deberá realizar un segundo diagnóstico serológico. 7.12.4 La certificación con resultado negativo de Anemia Infecciosa Equina será la resultante del conjunto de las tareas realizadas por el responsable del equino, el veterinario que extrae la sangre a analizar y el laboratorista que realiza la prueba serológica y consigna el resultado, debiendo firmar todos en los respectivos lugares asignados en el formulario de certificado de Anemia Infecciosa Equina o Libreta Sanitaria Equina. 7.12.5 La validez del certificado de Anemia Infecciosa Equina en todos los casos será de SESENTA (60) días corridos a partir de la fecha de extracción de la muestra de sangre. 7.12.6 El diagnóstico positivo en un potrillo al pie de la yegua madre, la cual es también positiva, será considerado como tal luego que el potrillo sea destetado y se efectúen DOS (2) pruebas realizadas con un intervalo de SESENTA (60) días corridos entre ellas. Si el resultado POSITIVO subsiste, el potrillo será considerado infectado con el virus de la Anemia Infecciosa Equina. 7.12.7 Todo équido confirmado como reactor positivo, será marcado a fuego con las letras AIE, de DIEZ (10) centímetros de altura y QUINCE (15) centímetros de ancho, en el cuello, del lado izquierdo. 7.12.8 Los équidos con diagnóstico positivo y con sintomatología de Anemia Infecciosa Equina deberán ser sacrificados con intervención de la Dirección Nacional de Sanidad Animal dentro de las CUARENTA Y OCHO (48) horas de haber recibido la comunicación por parte del veterinario actuante. En todos los casos que el equino evidencie sintomatología de Anemia Infecciosa Equina, el veterinario actuante lo hará constar en la documentación que, conjuntamente con el material, se envíe al laboratorio. 7.12.9 Los équidos con diagnóstico positivo a Anemia Infecciosa Equina y sin sintomatología de Anemia Infecciosa Equina (portadores inaparentes), deberán en todos los casos ser aislados y posteriormente eliminados por sacrificio en el lugar donde se encuentran o por remisión a faena, en cuyo caso se deberán marcar a fuego previamente con las letras AIE, de DIEZ (10) centímetros de altura y QUINCE (15) centímetros de ancho, en el cuello, del lado izquierdo, y ser despachados según el régimen vigente de remisión de équidos a faena. 7.12.10 El aislamiento de los reactores o cuando se sospeche que la enfermedad que aqueja al equino es Anemia Infecciosa Equina y hasta tanto no se cuente con el resultado del diagnóstico de laboratorio, se efectuará cumpliendo con las siguientes pautas: 7.12.10.1. Se lo aislará debiendo encontrarse separado por lo menos TRESCIENTOS (300) metros de otros équidos, si se encuentra en el campo. 7.12.10.2. El aislamiento de los équidos reactores será permanente, no pudiendo salir bajo circunstancia alguna de ese lugar hasta su eliminación por sacrificio o remisión al frigorífico. 7.12.10.3. Se evitará todo intercambio de jeringas, útiles de aseo, enseres de monta, recipientes de alimentación, termómetros u otros objetos entre equinos enfermos o sospechosos y equinos sanos, salvo una adecuada y esmerada esterilización. 7.12.10.4. Se evitará el acercamiento de insectos al enfermo y a los lugares de alojamiento de los sospechosos. 7.12.11 Ante el hallazgo de UN (1) resultado positivo, el lugar o predio de residencia del reactor quedará interdictado, procediéndose al sangrado y diagnóstico de la totalidad de las existencias cuando éstas sean menores al número de DIEZ (10) équidos, y del DIEZ (10) por ciento de las existencias en forma aleatoria por encima de esta cifra. 28 Dirección de Luchas Sanitarias �7.12.12 De registrarse UNO (1) o más resultados positivos en los muestreos indicados en el numeral anterior, el propietario o responsable del predio quedará obligado al saneamiento total de las existencias equinas, manteniéndose la interdicción del predio hasta su cumplimiento y siendo los costos emergentes del mismo a su cargo. 7.12.13 Ante un resultado positivo el propietario o responsable del équido podrá optar únicamente por un segundo diagnóstico bajo los requisitos que se detallan: 7.12.13.1 El propietario del animal deberá manifestar al veterinario de la Dirección Nacional de Sanidad Animal del SENASA dentro de las CUARENTA Y OCHO (48) horas de tomado conocimiento del primer diagnóstico, su decisión de realizar el segundo diagnóstico. 7.12.13.2 Esta segunda prueba – la extracción de la muestra y el diagnóstico oficial – tendrá carácter definitivo y será realizada exclusivamente por personal del SENASA. 7.12.13.3 Entre el primer y segundo diagnóstico no podrán transcurrir más de VEINTE (20) días de intervalo. 7.12.13.4 Aislamiento total del equino dentro del predio en un lugar autorizado por la Dirección Nacional de Sanidad Animal. 7.12.13.5 El Veterinario Oficial procederá a la extracción de la muestra de sangre, y la remitirá al laboratorio oficial. Todos los costos emergentes serán a cargo del propietario. 7.12.13.6 La remisión de la sangre deberá hacerse en la forma indicada en el presente reglamento e irá, asimismo, acompañada con la ficha de identificación. 7.12.13.7 En caso de repetirse el diagnóstico positivo, el Veterinario Oficial actuante deberá proceder a la marcación del animal, dentro de un plazo no mayor de CUARENTA Y OCHO (48) horas. 7.12.14 Los laboratorios que elaboren productos biológicos medicinales de origen equino, tanto para uso humano como animal, deberán utilizar únicamente equinos libres de Anemia Infecciosa Equina. 7.13. Laboratorios de A.I.E - Registro de pruebas efectuadas 7.13.1 El laboratorio llevará el registro de la totalidad de las pruebas diagnósticas de Anemia Infecciosa que efectúe, incluyendo las repeticiones de pruebas y las que se efectúen sin requerimiento de certificación (relevamientos), de tal forma que exista correspondencia entre la cantidad de dosis provistas y declaradas por el Laboratorio proveedor de cada equipo diagnóstico y el número de dosis utilizadas. 7.13.2 Los laboratorios deberán contar con un libro foliado, rubricado indistintamente por personal autorizado dependiente de la Dirección Nacional de Sanidad Animal o de la Dirección de Laboratorio y Control Técnico del SENASA, cuyas medidas mínimas sean de VEINTIDOS (22) por TREINTA (30) centímetros, y en el cual deberán constar los siguientes datos: 7.13.2.1 En su primer hoja: nombre del laboratorio, nombre del director técnico, código de habilitación otorgado, domicilio, localidad, partido o departamento y distrito correspondiente a la oficina local de la Dirección Nacional de Sanidad Animal al cual corresponde. 7.13.2.2 En las hojas subsiguientes se reproducirá el modelo de registro según se detalla en el Anexo III . 7.13.2.3 En los casos en que se utilicen registros informáticos, las planillas deberán respetar el modelo mencionado y sus impresiones deberán quedar adheridas firmemente sobre las hojas respectivas del libro foliado. Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 29 �7.13.3 7.14 Los laboratorios obligatoriamente remitirán esta información en los términos descriptos en forma mensual a la Dirección de Luchas Sanitarias. Manejo de la certificación y del estampillado 7.14.1 La totalidad de los resultados diagnósticos que se vuelquen en los certificados y Libretas Sanitarias oficiales, además de la firma y sello del Director Técnico, llevarán adherida la estampilla oficial con el autoadhesivo provisto en el equipo diagnóstico. 7.14.2 Cuando se utilice el formulario de certificación, sus TRES (3) hojas deberán firmarse en forma hológrafa, por el profesional acreditado que remite la muestra, por el propietario, tenedor o responsable del equino y por el Director Técnico del Laboratorio, prescindiendo del uso de carbónicos u otros mecanismos de duplicación. 7.14.3. En caso de requerirse en una misma muestra la repetición de una prueba diagnóstica, las estampillas correspondientes a las dosis utilizadas deberán quedar adheridas en el libro foliado en la columna correspondiente a Nº de certificado o libreta. 7.14.4. Se procederá de igual modo al descripto en el numeral anterior cuando se realicen pruebas que no demanden certificación (relevamientos). 7.15. Comercialización y utilización del antigeno Anemia Infecciosa Equina. 7.15.1. Los laboratorios de la Red habilitados para efectuar las pruebas de Anemia Infecciosa Equina deberán llevar un archivo que contendrá los remitos y facturas de compra de los equipos diagnósticos. 7.15.2. Las cajas o estuches que contengan al antígeno de Anemia Infecciosa Equina, llevarán en un superficie una parte fácilmente removible (troquelada, perforada) en la que conste el nombre comercial del producto, número de serie o lote y cantidad de dosis diagnósticas. 7.15.3. Acompañando a la presentación comercial del producto se incluirán en su interior las estampillas oficiales, numeradas del UNO (1) al número total de dosis contenidas en el envase; y en cada una de ellas, el número de serie o lote y la fecha de vencimiento, conforme lo establecido por la Resolución Nº 118 del 4 de febrero de 1994 del exSERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL. 7.15.4. Cada titular de Certificado de Uso y Comercialización -importadores o elaboradores- y cada comercializador inscripto llevará un archivo en el que consten en forma completa los documentos de compra y venta, o de venta, del antígeno de Anemia Infecciosa Equina, según corresponda en cada caso. 7.15.4.1. La documentación debe ser conservada hasta DOS (2) años después de realizada cada operación. A los fines de su auditoria oficial debe obrar copia de cada documento tanto en el archivo del emisor del mismo (documento de salida o venta) como del receptor (documento de entrada o compra). 7.15.4.2. El documento a archivar será la factura o, en su defecto, el remito que documenta el movimiento del antígeno de Anemia Infecciosa Equina entre partes. 7.15.4.3. La Documentación Comercial del movimiento del antígeno de Anemia Infecciosa Equina será archivada en el domicilio legal de cada operador (lugar formal de auditoría). 7.15.4.4. Unicamente se podrán efectuar ventas desde los laboratorios elaboradores o importadores a los Laboratorios Habilitados de Red. 30 �7.15.4.5. Prohíbese la venta a cualquier lugar o persona no habilitada y registrada oficialmente para efectuar diagnósticos 7.15.4.6. La información que deben conservar los Laboratorios Habilitados de Red será un archivo, el que contendrá, por un lado, los remitos o facturas de compra del antígeno de Anemia Infecciosa Equina y, por otro, el libro foliado con el detalle de la utilización de las dosis diagnósticas de los equipos adquiridos. 7.15.4.7. Los laboratorios elaboradores o importadores deberán informar mensualmente a la Dirección Nacional de Sanidad Animal el número total de equipos comercializados a sus clientes con el detalle de las facturas o remitos, según corresponda,. 7.15.4.8. Además de la remisión mensual indicada en el punto precedente, toda la información descripta debe conservarse ordenada cronológicamente y a disposición del personal del SENASA a los fines de la auditoría oficial del sistema. 7.15.4.9. La Dirección Nacional de Sanidad Animal comunicará mensualmente a los laboratorios titulares de Certificados de Uso y Comercialización la nómina de las altas, bajas y suspensiones de laboratorios de la Red, con la identificación de sus Directores Técnicos, a efectos de la programación de sus ventas. Ante la detección de cualquier incumplimiento en el funcionamiento del sistema, el SENASA podrá suspender el Certificado de Uso y Comercialización del producto que corresponda. La conservación de documentos para auditoría oficial del sistema y el flujo de información para auditoria interna es responsabilidad del titular del Certificado de Uso y Comercialización. 31 �32 Pour On Baño Cumafos SANUVET 10 SIPERKINA 91217 93206 FAEVE S.A. VETANCO S.A. AGROINSUMOS S.A. TRINSEC POUR-ON VETANCID POLVO WARBICIDE POUR-ON 98262 92186 93128 (*) ANTES DE USAR, LEA LAS INSTRUCCIONES Y CONSULTE SIEMPRE A SU VETERINARIO DE CONFIANZA. Cipermetrina Cipermetrina Pour On Espolvoreo Ambiental Pour On Pour On Cipermetrina BURNET SACIFIA TEHUELCHE POUR-ON 92491 Cipermetrina, BOP.,diclorvós Pour On OVER Pour On Cipermetrina OVER SYNECTO PLUS POUR-ON Aspersión Animal Pour On Pour On Aspersión Amb y animal Aspersión Amb y animal Pour On Aspersión Animal Pour On Aspersión Amb y animal Tópica SYNECTO MAX A.R. POUR-ON Cipermetrina Tópica Aspersión Amb y animal 97252 Cipermetrina, Carbaril,BOP Cipermetrina Cipermetrina Asimetrina Cipermetrina Cipermetrina Cipermetrina Cipermetrina Carbaril Carbaril Triclorfón, Diclorvós Cipermetrina,Diclorvós Pour On 90176 OVER POUR ON BIOTENK 93202 SYNECTO ASPERSION BIOGENESIS S.A. PIRETRAL 92432 90175 BIOTENK S.A. BROUWER S.A. PIRETRAL POUR-ON 92492 OVER FAEVE S.A. OPIGAL 50 87001 DELENTE LABORATORIOS FAEVE S.A. MOSCASIN POUR-ON 93183 STOP FLY IND. QUIMICAS ALMIDAR LUVUCIT 90248 SUPER SYNECTO POUR-ON ANUBIS S.R.L. LER CHAMPU MEDICADO 93335 95341 Deltametrina LAB.LER S.R.L. HOECHST ROUSSEL VET S.A. INSECTICIDA RURAL 82642 93432 Tópica Pour On Diclorvós,Malatión BIOGENESIS S.A. JOHN MARTIN S.R.L. GALMETRIN PLUS POMADA 87504 Cipermetrina Tópica BROUWER S.A. DERRAMIN Tópica 88234 Cialotrina Pirimifós VON FRANKEN SAIC Cipermetrina,DDVP SCHERING PLOUGH S.A. CURABICHERAS PIRETROIDE Aspersión Animal Pour On Pour On DKL 5 CURABICHERA LIQUIDO Diazinón Cipermetrina Cipermetrina Tópica y Ambiental Aspersión Amb y animal 82799 NOVARTIS ARGENTINA S.A. CLIK 600 ASPERSION 1805 Diclorvós Cipermetrina 87313 INSTITUTO SAN JORGE BAGO PHARMAVET DE CASTAÑO SRL CIPERSIX CIPERVET POUR ON 96162 BIOGENESIS S.A. 87595 ALSI QUIMICA SANITARIA CIOVAL CIPERKILL 86368 BOX 92376 80246 Tópica Pour On Triclorfón Cipermetrina ALLIGNANI HNOS S.R.L. LOPEZ VILLANUEVA Y ASOC. BICHOLUZ RIO DE JANEIRO 82488 Pour On PROAGRO S.A. Cipermetrina BAYER ARGENTINA SA ASUNTOL LIQUIDO BICHERON POUR ON 1544 96016 Pour On Cipermetrina BIOGENESIS S.A. ACIENDEL Cipermetrina BIOGENESIS S.A. ACIENDEL 87595 VIA DE ADMINISTRACION 0080/E COMPONENTES EMPRESA PRODUCTO CERTIFICADO PRODUCTOS REPELENTES DE INSECTOS HEMATOFAGOS INDICADOS EN EQUINOS (*) �REGISTRO DE PRUEBAS DIAGNOSTICAS DE ANEMIA INFECCIOSA EQUINA EFECTUADAS EN LABORATORIOS DE RED OFICIAL Para volcar datos en el libro foliado y remisión mensual de la información a la Dirección de Luchas Sanitarias AL COMENZAR CADA EQUIPO DE DIAGNOSTICO Marca ............................................................. N° de Serie Estampillas Nros. de ......................................................... ......................................... Fecha de Compra .............../......................................./.............. a N° de Dósis ................................ ..................................... Factura/Remito N° ..................................................... DATOS A COMPLETAR Prueba N° Fecha de Ingreso Remitente Origen de la Muestra Resultado Certificado/ Libreta N° .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................ .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................ .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................ .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................ .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................ RESPONSABLE Lugar ................................................................................................ .................................................. Firma y Sello Fecha C.244 .............../......................................./.............. .............................................................................. Aclaración 33 �N° Colegio de Veterinarios de la Provincia de: 000000000 Fecha: ............../................./ ................... IDENTIFICACION Nombre del Equino: .................................................................................. Edad: ......... DISEÑO DE MARCA A FUEGO Identificación Individual: ........................................................................ Sexo:............ Raza o Tipo:..................................................................... Pelo: .................................. Padre: ..........................................................Madre:.......................................................... PROPIETARIO Apellido y Nombre:.......................................................................................................... RENSPA N°: ....................................................... Domicilio: Calle: ........................................................................................................... N°:........................ Localidad: ....................................................... Partido o Dto.: ..................................................................... Los datos consignados son verídicos, corresponden al equino y se ajustan a la realidad Prov.:.............................................................. ...................................... Firma del Propietario CERTIFICACION DE LA EXTRACCION DE LA MUESTRA Fecha de Extracción: ........./....................../.............. La Muestra se Encuentra Identificada con: ............................... Fecha de Remisión: ........./....................../.............. Equino CON SINTOMAS Equino SIN SINTOMAS Lugar de Extracción: Calle: ................................................................................................................................... N°:........................ Localidad: ....................................................... Partido o Dto.: ...................................................... Prov.:.............................................. Responsable de la Extracción: Doctor................................................................................................ MP N°:....................................... Acreditación SENASA N°: ..................................................... Los datos consignados son verídicos, corresponden al equino y se ajustan a la realidad. Los datos de filiación se encuentran correctamente transcriptos, sin tachaduras ni enmiendas ...................................... Firma y Sello del Profesional CERTIFICACION DEL DIAGNOSTICO Laboratorio donde se efectuó el análisis:.............................................................................................................. Red N°:..................... Diagnóstico Positivo Negativo FECHA DE RESULTADO ........./....................../.............. Pegar el stiker correspondiente a la prueba, en este lugar. ......................................................... Lugar de Expedición Vencimiento ........./....................../.............. Expedición ........./....................../.............. ...................................... Firma Laboratorista Certifico el resultado del análisis del equino cuya filiación figura en este documento MP N°: .......................... C247 35 �INTERVENCION SENASA FECHA MOTIVO LUGAR FIRMA .............................................................................................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. INTERVENCIONES SERVICIO VETERINARIO PRIVADO ACREDITADO FECHA MOTIVO LUGAR FIRMA .............................................................................................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. 1 - En los formularios estará dibujada la silueta de un équido, con DOS (2) perfiles, derecho e izquierdo. Entre ambos la cabeza, cuello y pecho, de frente; también estarán los perfiles izquierdo y derecho de los miembros y los mismos vistos de atrás. 2 - La individualización de todo equino que requiera certificación diagnóstica específica de Anemia Infecciosa Equina, deberá efectuarla el veterinario que extraiga la sangre para exámen, con el equino a la vista, cumplimentando la documentación identificatoria correspondiente. 3 - Para una correcta identificación el veterinario actuante acreditado deberá consignar la totalidad de las señas particularas, como ser: remolinos, manchas, cicatrices, pelos blancos, marcas a fuego, pelaje, edad, etcétera, todo ello correctamente ubicado, remitiendo luego al laboratorio los TRES (3) ejemplares conjuntamente con la muestra de sangre contenida en un tubo identificado con una faja de seguridad. 4 - Para dar ingreso a las muestras deberá verificarse que los datos que figuran en el certificado que acompaña la muestra, estén completados en su totalidad, y rubricados por el veterinario que extrae la muestra con sello aclaratorio. 5 - Deberá mantenerse en archivo por un lapso no menor a UN (1) año y en el orden en que fueron expedidos, los duplicados de los certificados, los que deberán ser presentados al personal del SENASA, cuando este lo requiera. 6 - Los certificados deberán ser firmados, tanto por el profesional que remite la muestra como por el Director Técnico del laboratorio en forma ológrafa, prescindiendo del uso de carbónicos u otros mecanismos de duplicación. 7 - El laboratorio deberá llevar registro de la totalidad de las pruebas diagnósticas Anemia Infecciosa Equina, sean estas para la extensión de los certificados diagnósticas o de relevamientos a establecimientos que no la requieran. 8 - En caso de que el diagnóstico sea POSITIVO, el laboratorio lo comunicará al veterinario actuante, reservándose para sí el triplicado. El original y el duplicado los remitirá de inmediato a la Oficina Local del SENASA. 8.1 - Los formularios duplicados y triplicados no tendrán valor como certificación. 8.2 - En caso de extravío del formulario, se podrá solicitar una copia, en la que deberá constar tal carácter. 8.3 - Los certificados deberán ser confeccionados con tinta o cualquier material inalterable y no presentar raspaduras ni enmiendas. 36 �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Manual de Procedimientos para la Anemia Infecciosa Equina (AIE) Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2005 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección de Luchas Sanitarias Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0037 Abstract A summary of the resource. El presente manual se dirige principalmente a los Veterinarios privados, sectores interesados en la producción equina y actividades hípicas, y particularmente a vastos sectores rurales que estando cultural y tradicionalmente tan cerca del caballo quedan a veces tan lejos de los conocimientos más elementales para proteger su salud. También va dirigido a las autoridades nacionales, provinciales y municipales locales igualmente responsables y encargadas de emprender acciones sanitarias contra la AIE. En su desarrollo, se pretende reavivar el debate acerca de cual fue el aprendizaje y cuales fueron los defectos u omisiones en el intento de controlar la AIE desde siempre, puntualizando aquello que está al alcance de todos y cada uno para controlarla en todo el país. Seguramente se reiterarán conceptos y se desmitificarán algunas creencias populares sobre la enfermedad que a lo largo de los años sumaron confusión y produjeron alarmas exageradas en aquellos que se enfrentaron o vuelven a enfrentarse con esta enfermedad. Por tanto, centraremos su contenido en los principios de la enfermedad, descripción, pruebas de laboratorio, evaluación de sus resultados, medidas preventivas, atención de sospechas, focos y casos de infección. Table Of Contents A list of subunits of the resource. FINALIDAD MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PARA LA ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE) 1. Consideraciones Generales 1.1 Importancia económica 2. Etiología 3. Descripción 4. Formas de presentación clinica 5. Transmisión de la enfermedad 5.1 Transmisión natural 5.2 Transmisión por el hombre 5.3 Otras vías de transmisión 6. Diagnóstico de Laboratorio 6.1 Periodo de ventana para la detección de la enfermedad por medio del test 6.2 Precisión de los tests diagnósticos y divergencias más frecuentes. 7. Proceso Epizoótico 7.1 Reservorios del virus 7.2 Población hospedadora 8. Medidas de Prevención y control 8.1 Aplicación de las medidas de control y prevención. 8.2 Medidas protectoras en territorios limpios (Países o regiones de países) 8.3 Medidas en territorios con la enfermedad enzoótica 8.4 Medidas a adoptar ante brotes o hallazgos de reactores positivos al test 8.5 Procedimientos en predios rurales 8.6 Medidas para los ingresos 8.7 Procedimientos en los eventos hípicos 8.8 Procedimientos en los remates ferias 8.9 Desinfección 9. Diagnóstico y Certificación: Procedimientos 9.1 Extracción y remisión de la muestra 9.2 Recepción de las muestras 9.3 Tiempo de validez de las certificaciones 10. Procedimiento para la denuncia 11. Eliminación de los reactores REGLAMENTO SANITARIO EQUINO - Res. SAGP y A N° 617/05 Enfermedades de los Equinos https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/de57dbef6cd95e116eac773161c81dd9.pdf a8f811827681a398d8911eb173cd3ed4 PDF Text Text Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo epidemiologia@senasa.gov.ar Informe Final: Halicephalobus: Recomendaciones sanitarias El siguiente informe se ha llevado a cabo tomando en consideración los aportes realizados por el grupo de expertos, conformado a pedido del SENASA. En el mismo se presenta las conclusiones que deben ser consideradas ante la ocurrencia de futuras sospechas de ésta enfermedad, como así las medidas de prevención y mitigación. El presente se confeccionó a raíz de un evento de un equino muerto con antecedentes de signología nerviosa en un club de campo de la ciudad de Avellaneda, provincia de Buenos Aires. Para la construcción de las siguientes recomendaciones, se citó a la conformación de un grupo de expertos profesionales, pertenecientes a variadas ramas de la biología, lo cuales están relacionados con la temática. Ellos son:      Dr. Chavez Eliseo. Zoólogo. (Universidad Nacional de La Plata Dr. Tanzola Ruben Daniel. Biólogo (Universidad del Sur) Dra. Radman Nilda. Microbiología (Universidad Nacional de La Plata) Dra. Salomón, Maria Cristina. Bioquímica (Universidad Nacional de Cuyo) Dr. Suarez Victor. Veterinario (INTA Salta) De acuerdo con la bibliografía internacional referida a Halicephalobus gingivalis, nematode Rhabditoidea, descripto por Stefanski en 1954 en Francia es habitante común de suelos enriquecidos con materia orgánica vegetal en descomposición y posible de aislar a partir de materia fecal de equinos. Es patógeno facultativo o accidental de equinos. Cosmopolita y, zoonótico. Forma tempranamente granulomas evidentes en piel y mucosas, es letal al legar a nervioso central. Dado el riesgo que implica, se realizan las siguientes observaciones y recomendaciones para diagnóstico, manejo y control de la Halicephalobiasis. Página 1 de 7 �Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo epidemiologia@senasa.gov.ar 1. Recomendaciones operativas Protocolo de desparasitación y desinfección       Primera desparasitación: dosis única de Fenbendazol 100mg/kg vía oral (sonda nasogástrica) e Ivermectina 1,2 -1,8 mg/Kg. Le sigue un período de 48hs de limpieza y desinfección de los boxes (soda caustica 5% o hipoclorito de sodio 10%), donde previamente debe se debe retirar la cama de cada equino de forma diaria para ser quemada. Segunda desparasitación a los 4 días: dosis única de Fenbendazol 100mg/kg e Ivermectina 1,2 – 1,8 mg/kg. Le sigue un período de 48hs de limpieza y desinfección de los boxes (soda caustica 5% o hipoclorito de sodio 10%). Se debe retirar la cama de cada equino de forma diaria para ser quemada. Cumplido, los equinos deben ser llevados a la zona limpia, por un período de 72hs. Durante estas 72hs se deberá realizar una exhaustiva limpieza y desinfección diaria de los boxes que fueron desalojados (zona sucia) con soda caustica al 5% o hipoclorito de sodio al 10%. 2. Posible impacto en la sanidad equina. Considerando el género del parasito y su ciclo de vida, el cual según las revisiones bibliográficas, describe una etapa ambiental y una segunda, con estadios adultos, dentro del hospedador definitivo (equino), se resuelve tener presente las siguientes premisas:     La totalidad de las descripciones y hallazgos diagnósticos se llevaron a cabo mediante las necropsias respectivas de los animales fallecidos y complementándolo con estudios histopatológicos/parasitológicos. El mayor porcentaje de la casuística revisada, alude a la ocurrencia del evento en equinos estabulados. Esto plantea la posibilidad del riesgo de contagio entre los animales mediando algún tipo de material infeccioso, posiblemente materia fecal, cama, etc. Considerar entre los diagnósticos diferenciales las distintas encefalitis equinas de origen vírico. No se recomienda la utilización de corticoides en equinos con sospecha o riesgo de padecer ésta parasitosis. El riesgo se considera según el nexo epidemiológico acorde a la investigación llevada a cabo. (Están contraindicados, coadyuvan en la diseminación de la parasitosis por el organismo). Página 2 de 7 �Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo epidemiologia@senasa.gov.ar  Controlar los animales que estén en riesgo posteriormente a situaciones de stress y/o inmunodepresoras (traslados, exigencias deportivas, enfermedades concomitantes, vacunaciones, etc.). 2 Recomendaciones para el diagnóstico, a partir de casos clínicos y posibles contactos Se considera que el diagnóstico debe realizarse tanto en animales vivos con signología compatible inespecífica, como en aquellos con sospecha de muerte por éste parásito o que tengan un nexo epidemiológico que los relacione. En caso de establecer sospecha de Halicephalobisis, es factible realizar un diagnóstico precoz de la infestación:      3 En animales en pie se debe observar la presencia de nódulos subcutáneos y submucosos (Realizar biopsias mediante la técnica aspiración (PAF) o ablación parcial y observación en fresco). Observar la presencia de tumoraciones superficiales renales por palpación rectal. Se describen éstas ubicaciones en un gran porcentaje de la casuística. Realizar observaciones en fresco, con previa concentración del material mediante centrifugación, de las secreciones nasales, lavados bronquiales y orina, previamente concentrar el material mediante centrifugación. En todos los casos respetar las condiciones de bioseguridad adecuadas para trabajar con éste patógeno. Como técnica coproparasitológica se recomienda la de Baerman, Recuperación de larvas, realizada con heces refrigeradas. También se pueden sembrar éstas sobre placas de agar conteniendo una pátina de Bacilus subtilis o Escherichia coli. Se observarán a ojo desnudo o conicroscopio estereoscópico, trayectos correspondientes a la migración de los vermes por el agar. Recomendaciones para el tratamiento de animales con sintomatología compatible; y el tratamiento preventivo de posibles contactos. Al reconocer a ésta entidad patógena con cierto poder de contagiosidad, (la cual aún no se ha aclarado con certeza), se recomienda que ante la presencia de animales con diagnostico positivos, como a los susceptibles convivientes y sospechosos con nexo epidemiológico, se lleven adelante las siguientes acciones precautorias:   Ante la presencia de vermes en nódulos subcutáneos o en secreciones o heces, realizar resección quirúrgica y/o tratamiento general con Ivermectina (1.2 a 1.8 mg/kg) acompañado con Fenbendazol (100mg/Kg) vía nasogástrica, en forma inmediata a fin de evitar la migración vía hemática de los vermes al SNC. Las mismas drogas y dosis deben ser repetidas a los 4 días de la primera, para reforzar la terapéutica. Recordar la dosis toxica de IVM, la cual es de 3 – 6 mg/Kg, presentado cuadro con sinología nerviosa indeseada. Los equinos considerados contactos deben ser medicados con Ivermectina y Fenbendazol a la dosis anteriormente nombradas. Página 3 de 7 �Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo   4 epidemiologia@senasa.gov.ar  Permanecer en estado de alerta ante la aparición de signos compatibles en los contactos directos e indirectos. Ante la aparición de un caso, reforzar los controles clínicos y las medidas higiénicosanitarias en el establecimiento. Realizar las denuncias correspondientes a las autoridades sanitarias pertinentes. Posibles riesgos para la salud humana y de otras especies. Atento a la bibliografía consultada, se considera a éste agente infeccioso como un parasito zoonótico. Se han descripto numerosos casos en personas que tuvieron contacto estrecho con los animales fallecidos y/o con potenciales fuentes infecciosas del ambiente. En todos los casos la infección culmina en la muerte del individuo, presentado un cuadro neurológico central, producto de la migración del parásito en el SNC. Hasta el momento no se han podido clarificar la via de ingreso, pero se postula la percutánea como una de ellas. Por tal motivo se considera tener precauciones especiales y se recomiendan los siguientes ítems:         Los contactos humanos deben concurrir a consulta médica a las áreas del nosocomio correspondiente, con la finalidad de ser evaluados y consignar controles y tratamiento acorde. Comunicar a las autoridades de salud el evento para estar preparados ante cualquier contingencia. Minimizar el ingreso de personas al sitio de agonía o de fallecimiento del animal. De la misma manera se debe reducir el movimiento de personas en el establecimiento. Todos aquellos elementos que tengan contacto con el animal sospechoso/infectado, o con potenciales fuentes de infección, deben ser descontaminados adecuadamente o eliminados, en los que se permita. Los elementos de limpieza del ambiente donde se encuentra el animal sospecho/infectado o fuentes potenciales de infección, deben ser de uso exclusivo de ese sector y no retirarse. Se deben descontaminar todos los días. La recolección de camas y heces debe ser diaria con su eliminación/destrucción adecuada. Los encargados de la tarea deben tomar las medidas de bioseguridad adecuada (guantes, mamelucos, antiparras, etc). Colocar mallas metálicas en el sector de permanencia del animal sospechoso/infectado, a fin de evitar la proliferación y diseminación del agente por medio de los insectos. Restringir la presencia de mascotas en el área. Tomar medidas para minimizar la aparición de roedores que puedan difundir el agente patógeno. Página 4 de 7 �Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo epidemiologia@senasa.gov.ar 5 Recomendaciones para la prevención y/o control de la patología a nivel poblacional. Al considerar ésta entidad a un nivel poblacional, se debe recordar que el halicephalobus es un parasito de ciclo mixto, con etapas dentro del animal como en el ambiente. Esto genera la posibilidad de difundirse en el hábitat y ser capaz de permanecer vital en el mismo, hasta encontrar al próximo hospedador para continuar con el ciclo. Por tal motivo se deben minimizar lso riesgos de difusión a otros equinos y especies susceptibles.        Aislar a los animales infectados (cuarentenas, uso de material de bioseguridad, botas, guantes, barbijos etc). Los animales fallecidos sin diagnóstico de certeza, deben ser necropsiados y estudiados por los servicios especializados complementarios (Bacteriología, virología micología y parasitología). Los cadáveres deben ser incinerados, con lo que se consigue la destrucción total del parasito y su potencial fuente de infección. Realizar tareas de limpieza y desinfección (soda caustica al 5% o hipoclorito de sodio al 10%) de los boxes y superficies donde permaneció el animal problema. Toma de muestras sanguíneas (sangre entera y suero), materia fecal y camas recuperadas de boxes (tener en cuenta que se trata de vermes de vida libre adaptados al parasitismo). para realizar diagnósticos por biología molecular. Remitir muestras sospechosas a laboratorios especializados. En todos los casos debe notificarse la sospecha y confirmación ante las autoridades correspondientes, (SENASA local, autoridad sanitaria animal y humana acorde a la región en cuestión) . Referencias bibliográficas Anderson RC, Linder KE, Peregrine AS: .Halicephalobus gingivalis (Stefanski, 1954) from a fatal infection in a horse in Ontario, Canada with comments on the validity of H. deletrix and a review of the genus. Parasite. 1998 Sep;5(3):255-61. Anwar, M. A. Gokozan, H. N. Ball, M. K. Otero, J. McGwire, B. S. 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Vet Parasitol. 2016 Mar 15;218:82-6. Fonderie, P., W. Bert, F. Hendrickx, W. Houthoofd and T. Moens. 2012. Anthelmintic tolerance in free-living and facultative parasitic isolates of Halicephalobus (Panagrolaimidae). Parasitology 139, 1301-1308. Hermosilla C, Coumbe KM, Habershon-Butcher J, Schöniger S.: Fatal equine meningoencephalitis in the United Kingdom caused by the panagrolaimid nematode Halicephalobus gingivalis: case report and review of the literature. Equine Vet J. 2011 Nov;43(6):759-63 Kinde H, Mathews M, Ash L, St Leger J.: Halicephalobus gingivalis (H. deletrix) infection in two horses in southern California. J Vet Diagn Invest. 2000 Mar;12(2):162-5. Lim CK, Crawford A, Moore CV, Gasser RB, Nelson R, Koehler AV, Bradbury RS, Speare R, Dhatrak D, Weldhagen GF: First human case of fatal Halicephalobus gingivalis meningoencephalitis in Australia. J Clin Microbiol. 2015 May;53(5):1768-74. Nadler Steven A, Ramon A Carrenob, Byron J Adamsc, Hailu Kinded, James G Baldwine, Manuel Mundo-Ocampoe: Molecular phylogenetics and diagnosis of soil and clinical isolates of Halicephalobus gingivalis (Nematoda: Cephalobina: Panagrolaimoidea), an opportunistic pathogen of horses. International Journal for Parasitology. 33 10, 2003, 1115–1125 Ondrejka SL, Procop GW, Lai KK, Prayson RA. Fatal parasitic meningoencephalomyelitis caused by Halicephalobus deletrix : a case report and review of the literature. Arch Pathol Lab Med. 2010 Apr; 134(4):625-9. Papadi, B. Boudreaux, C. Tucker, J. A. Mathison, B. Bishop, H. Eberhard, M. E. Case report: Halicephalobus gingivalis: a rare cause of fatal meningoencephalomyelitis in humans. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene; 2013. 88(6):1062-1064. Pearce Simon G., Ludovic P. Bouré, Judith A. Taylor, and Andrew S. Peregrine: Treatment of a granuloma caused by Halicephalobus gingivalis in a horse. Journal of the American Veterinary Medical Association, December 15, 2001, Vol. 219, No. 12 , Pages 1735-1738 Pintore Maria Domenica, Francesco Cerutti, Antonio D’Angelo, Cristiano Corona, Paola Gazzuola, Loretta Masoero, Corrado Colombo, Roberto Bona, Carlo Cantile, Simone Peletto, Cristina Casalone and Barbara Iulini: Isolation and molecular characterisation of Halicephalobus gingivalis in the brain of a horse in Piedmont, Italy. Parasites & Vectors 2017 10:135 Página 6 de 7 �Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo epidemiologia@senasa.gov.ar Stefanski W. Rhabditis gingivalis sp. n. parasite trouvé dans un granulome de la gencive chez un cheval. Acta Parasitologica Polonica, 1954, 1, 329-334. Wilkins PA, Wacholder S, Nolan TJ, Bolin DC, Hunt P, Bernard W, Acland H, Del Piero F. Evidence for transmission of Halicephalobus deletrix (H gingivalis) from dam to foal. J Vet Intern Med. 2001 Jul-Aug; 15(4):412-7. Yoshiga, T. Detection of Halicephalobus gingivalis in soil nematode samples using PCR. Japanese Journal of Nematology; 2007. 37(2):101-104. Página 7 de 7 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Informe Final: Halicephalobus: Recomendaciones sanitarias. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2013 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo. Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0043 Abstract A summary of the resource. El siguiente informe se ha llevado a cabo tomando en consideración los aportes realizados por el grupo de expertos, conformado a pedido del SENASA. En el mismo se presenta las conclusiones que deben ser consideradas ante la ocurrencia de futuras sospechas de ésta enfermedad, como así las medidas de prevención y mitigación. El presente se confeccionó a raíz de un evento de un equino muerto con antecedentes de signología nerviosa en un club de campo de la ciudad de Avellaneda, provincia de Buenos Aires. https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/710248feb193f60178a853f8077dfb68.pdf 5f815d28254dedc6f56e0df7d8d1eaf0 PDF Text Text LAS PRUEBAS TUBERCULINICAS EN EL GANADO BOVINO Pedro M Torres Jefe Programa Control de Tuberculosis. Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA). Av.Paseo Colon 367-4°piso (C1063ACD) Buenos Aires. tuberculosis@senasa.gov.ar Introducción La prueba tuberculínica constituye el instrumento básico para detectar la presencia de infección tuberculosa, por lo tanto, desempeña un papel fundamental en el programa de control y erradicación de la tuberculosis bovina. El empleo de la prueba tuberculínica en el ganado bovino tiene ya una larga historia, que ha permitido acumular una gran cantidad de conocimientos y una amplia experiencia, especialmente en los países cuyos programas de control de la tuberculosis bovina han alcanzado la etapa de la erradicación. Antes de describir las diferentes pruebas tuberculínicas actualmente utilizadas en medicina veterinaria para el control de la tuberculosis en las distintas especies que afecta, es importante realizar la revisión de conceptos básicos que nos permitirán comprender no solamente la razón de su utilización, sino también su capacidad para el diagnóstico, lo mismo que sus limitaciones. El conocimiento de las herramientas disponibles para el control y erradicación del problema en los animales, nos dará la posibilidad para determinar, no sólo la prueba que utilizaremos, sino también cómo, donde y cuando la aplicaremos para lograr el mejor resultado. La definición de la prueba tuberculínica, es sin duda el primer paso. Esta prueba consiste en la inoculación de un antígeno, la PPD (derivado proteico purificado) en forma intradérmica a un animal, con el objeto de poder establecer si el mismo fue infectado por el agente causante de la enfermedad. La lenta y localizada respuesta del organismo al antígeno inyectado se debe a un mecanismo de hipersensibilidad de tipo IV (retardada), la cual se manifiesta durante las 72 horas posteriores a la exposición al antígeno. Al contrario de lo que ocurre en otras formas de hipersensibilidad, la de tipo IV no puede ser transferida de un animal a otro mediante la transferencia de suero, sino que es necesario transferir células T (linfocitos), por lo que la respuesta inmune en tuberculosis se considera mediada por células. Las células T que dan lugar a las respuestas de tipo retardado tienen que haber sido sensibilizadas previamente por exposición al antígeno, y su misión es atraer células de otros tipos hacia la zona de reacción. Cuando el Mycobacterium bovis penetra en el organismo del huésped y las células del sistema inmunitario de éste se ponen en contacto con él, se produce la infección �tuberculosa, paralelamente aparece la resistencia inmunitaria adquirida junto con la hipersensibilidad retardada o de tipo tuberculínico (fenómenos paralelos ambos mediados por células), y se pondrá de manifiesto después de transcurrido el perìodo prealèrgico de 4 a 5 semanas, pudiendo persistir durante toda la vida del animal. Cuando el antígeno (PPD) se inocula en forma intradérmica en la piel de un animal sensibilizado, es decir expuesto al agente en un momento suficientemente anterior a la prueba, como para que el animal pueda haber desarrollado su respuesta inmunitaria, se produce una reacción inflamatoria en el lugar de la inoculación. Esta respuesta inflamatoria tarda varias horas en desarrollarse y alcanzar su máxima expresión, variando según las especies. En los porcinos y aves, el punto máximo de la reacción en proceso se produce a las 48 horas, mientras que los bovinos y otros rumiantes a las 72 horas. La reacción a la tuberculina es una reacción in vivo, sigue siendo una de las respuestas biológicas más interesantes, más estudiadas, que requiere del desarrollo de habilidades, y es la única forma práctica masiva que tenemos para demostrar el hecho más significativo en tuberculosis, que es la infección del ganado con el Mycobacterium bovis. Reactivo para la prueba tuberculìnica El PPD, Derivado Proteico Purificado de tuberculina, es un extracto antigénico derivado del cultivo de un bacilo tuberculoso en un medio sintético. Los Derivados Proteicos Purificados de tuberculinas que se producen son tres, utilizando ya sea Mycobacterium tuberculosis, Mycobacterium bovis y Mycobacterium avium. De ellas sólo las tuberculinas bovina y aviar tienen aplicación veterinaria. De acuerdo con los diferentes métodos de elaboración, existían distintos tipos de tuberculina, incluyendo la tuberculina vieja de Koch (O.T y K.O.T) y la tuberculina de Medio Sintético concentrado por calor (H.C.S.M). En la actualidad solamente se usa el PPD por su mayor potencia y especificidad. El empleo del derivado proteico purificado de tuberculosis, para el diagnóstico de la tuberculosis en los animales, es preparado de acuerdo con los requerimientos de la Organización Mundial de la Salud (OMS.,1968) y OMS/OPS (1972), en lo que respecta a orígenes de los materiales, métodos de producción, precauciones, sustancias agregadas libres de contaminantes, identidad, seguridad, potencia, especificidad y ausencia de agentes sensibilizantes. El bioensayo para la actividad biológica tiene especial importancia y la potencia se expresa en Unidades Internacionales (U.I). Por lo tanto la calidad del PPD siempre debe ser controlada, no siendo digna de confianza ninguna prueba, si se desconoce la potencia de la tuberculina con la que se efectuó. Este PPD se inocula a un animal o animales para determinar su situación de exposición con respecto al agente. De tal manera, cuando es inoculado intradermicamente a animales no expuestos a Mycobacterias, denominados vírgenes o sanos, no se observa ninguna respuesta inflamatoria local importante o que puedan clasificarse como sospechosas o positivas. �Por lo tanto, faltó en esos animales el estímulo previo que los sensibilizara y generen una respuesta frente al agente o sus productos. De la otra manera, si se inoculara a animales infectados o enfermos, es decir ya anteriormente expuestos y sensibilizados al bacilo tuberculoso, aparecerá la reacción tuberculínica, siendo la misma un ejemplo destacado de una respuesta inmunológica específica de hipersensibilidad tardía de tipo IV, mediada por células. Patogénesis de la hipersensibilidad tardía de la piel En las primeras horas no se observan modificaciones apreciables en el lugar de inoculación, pero luego se instala una vasodilatación con aumento de la permeabilidad vascular, con eritema e inflamación, que tiene como característica especial su dureza. Microscópicamente la lesión presenta en las primeras cuatro horas una acumulación celular, transitoria de neutrófilos, pero a las doce horas pasan a ser principalmente mononucleares (monocitos y celulas T). La reacción de hipersensibilidad alcanza su máxima intensidad a las 72 horas postinoculación y la lesión tuberculínica suele desaparecer gradualmente en el plazo de 5 a 7 días, dependiendo del grado de intensidad de la reacción. En reacciones severas puede llegar a observarse necrosis en el sitio de inoculación, pero no se trata de un fenómeno común. La reacción tuberculínica es una reacción inmunológica específica mediada por linfocitos T. Estas células sensibles a los antígenos que se encuentran en la circulación, entran en contacto con el antígeno inyectado, respondiendo al mismo por movilización de otros linfocitos y por división, diferenciación y liberación de linfoquinas. En el sitio de la inyección tuberculínica, se acumula el producto de la multiplicación de los linfocitos y de nuevas generaciones de células linfocitarias. Los macrófagos fagocitan el antígeno inyectado y finalmente lo destruyen, desapareciendo así el estímulo para que continúe la producción de linfoquinas, con lo cual los tejidos vuelven al estado normal. Las pruebas tuberculínicas deben ser aplicadas a intervalos no menores de sesenta (60) días, ya que el sitio alrededor del tejido que se inoculó previamente con la tuberculina puede estar temporalmente desensibilizado. De manera tal, la reacción tuberculínica aparece sólo en animales que tienen o han tenido la infección tuberculosa y puede entonces emplearse para identificar animales con infección o enfermedad. Este test ha servido como base para todos los programas de control y erradicación de la enfermedad en el mundo, a través de la identificación de animales infectados y de su eliminación y ha permitido alcanzar el objetivo de erradicación en países como U.S.A, Canadá, Australia, Cuba y algunas áreas de Uruguay, Chile y Paraguay. �Interpretación de la prueba tuberculínica Para la correcta interpretación de la prueba y sobre todo para que los resultados sean comparables, repetibles e igualmente interpretables por distintos profesionales, existen seis constantes que deben establecerse claramente con los resultados de cada prueba. Estas constantes son: 1. Potencia de la PPD. 2. Dosificación del antígeno. 3. Sitio de la inoculación. 4. Tiempo de lectura. 5. Medición de las respuestas o reacciones para su interpretación. 6. Instrumental a utilizar. No es suficiente clasificar a un animal o a un rodeo como reactor positivo, sospechoso o negativo, ya que la repetición del test por otro profesional que varíe cualquiera de las constantes, puede producir resultados dispares y ser motivo de situaciones conflictuantes a veces importantes. Los criterios de cuantificación de estas variables pueden cambiar en distintos países y aún dentro de un mismo país, de acuerdo con distintas situaciones epidemiológicas y es correcto y lógico que eso suceda, pero es sumamente importante que cada diagnóstico, especialmente aquellos de animales que se mueven hacia otros países, se acompañen de las aclaraciones que permitan conocer todos los pasos seguidos para el mismo, al igual que los criterios de evaluación utilizados para el análisis. La potencia de una tuberculina, es la medida de su actividad biológica en animales previamente sensibilizados con un organismo específico, valorada de acuerdo con patrones y un estándar internacional establecido. De acuerdo a lo establecido por la World Health Organization (WHO), el PPD bovino deberá contener 1 mg de proteínas por mililitro de antígeno para una potencia de 32,500 U.I/mg/ml. La potencia estimada de tuberculina bovina deberá ser, no inferior al 66% ni mayor del 150% de la potencia indicada en el prospecto. El PPD aviar con 0,5 mg de proteína por mililitro de antígeno deberá alcanzar 25,000 U.I/0.5mg/ml. La potencia estimada para las tuberculinas aviares no deberá ser inferior al 75% ni superior al 133% de la indicada en la etiqueta. Las tuberculinas PPD deberán conservarse al abrigo de la luz y a una temperatura de 2ºC a 8ºC, descartando el sobrante que quede en el frasco, sino se va a utilizar en el mismo día. Por lo tanto, cuando utilizamos antígenos de distintas potencias biológicas no hay duda que aquel de mayor potencia nos dará la máxima sensibilidad en las pruebas, por lo que los animales y rodeos testeados con resultados negativos utilizando una PPD de baja potencia, pueden dar resultados muy diferentes a una nueva prueba en la que se cambie el antígeno. Cuando utilizamos el lugar de inoculación más sensible, que es la tabla del cuello, si la potencia de la PPD es baja, los resultados que se obtengan en la identificación de �animales infectados, podrían ser iguales o aún menor que los que se podrían registrar utilizando un área menos sensible, como ser el pliegue ano caudal y una PPD de adecuada potencia. Al utilizar el sitio de inoculación menos sensible y una PPD de baja potencia, la veracidad de los resultados podría alterarse seriamente, sobre todo cuando se desconoce el verdadero diagnóstico de situación sanitario del rodeo. Una segunda constante mencionada, la dosificación del antígeno, es otro dato imprescindible de consignar en un diagnóstico. Manteniendo invariables las cinco constantes, el volumen de antígeno inoculado no importa el sitio, hará variar la sensibilidad de la prueba, que puede aumentar en una cierta proporción de acuerdo al volumen de PPD inyectado. Existen trabajos que muestran que no hay una diferencia significativa en sensibilidad y especificidad para el test ano caudal, utilizando 0.2 ml y 0.4 ml de dosis de PPD de 0.1 mg/ml, aunque el tamaño de la reacción de los animales infectados sería mayor con la dosis de 0.4ml, no observándose la diferencia en los animales no infectados (Francis et al., 1978). Otros estudios muestran escasa diferencia entre la sensibilidad del test cervical simple con 0.1ml de dosis y el test ano caudal con 0.2ml a igual potencia (Kantor et al., 1984). En este último trabajo tuvo como conclusión , que la prueba ano caudal utilizando 0.2 ml de PPD de 1mg/ml de alta potencia, era más sensible que la prueba cervical comparativa y tan sensible como la prueba cervical simple utilizando 0.1ml de PPD de potencia moderada. Por lo tanto, es claro entonces la necesidad de registrar esta información en el diagnóstico de situación. En la actualidad y de acuerdo al manual de normas y procedimientos en vigencia, las dosis correspondientes a las pruebas tuberculínicas en el ganado bovino y en otras especies animales, se hará inoculando 0.1ml de tuberculina PPD bovina de 1.0 mg/ml de concentración (Secretaría de Agricultura, Dirección Nacional de Sanidad Animal, Argentina., 1999). La tercera constante en estudio es el sitio de inoculación, siendo posiblemente el dato más comúnmente registrado, ya que sirve para identificar el tipo de prueba utilizada. Algunas veces no se hace la distinción entre prueba cervical simple o cervical comparativa. Sin embargo no faltan ocasiones en que la única información disponible es de un resultado negativo a la prueba tuberculínica, sin ningún otro dato adicional. La implementación de una prueba de alta sensibilidad, hace que las posibilidades de que surjan inconvenientes con una nueva prueba no importa cual, son escasas al igual que cuando se utiliza una prueba de menor sensibilidad en un rodeo controlado. Los problemas se presentan generalmente cuando luego de una primera prueba de baja o mediana sensibilidad en rodeos infectados o no controlados, se pasa a una prueba muy sensible. Existen otros factores que intervienen en el resultado de un re-test y que luego �consideraremos, pero es de suma importancia conocer la prueba inicialmente utilizada para poder evaluar el resultado que se recibe y decidir que se hará posteriormente. Actualmente no existen prácticamente discrepancias en el tiempo de lectura de la prueba, que es la cuarta constante y debe realizarse a las 72 horas, más/menos 6 horas, post- inoculación en el bovino y a las 48 horas en el porcino y las aves. Existen trabajos que demostraron que las reacciones a PPD bovina en animales tuberculosos, están bien avanzadas a las 48 horas y alcanzan su máxima expresión a las 72 horas (Lepper et al.,1977) y (Francis et al.,1978). Por este motivo es importante registrar cualquier alteración en el tiempo de lectura, cuando situaciones imprevistas dificultan efectuarla en el momento adecuado, en virtud de que reactores en el umbral de las 72 horas, pueden ser erróneamente clasificados 24 horas mas tarde. Por lo tanto, sería sumamente importante consignar cualquier tipo de reacción encontrada al momento de la lectura y no simplemente la categoría de clasificación del animal. La quinta constante a considerar es la medición de las respuestas o reacciones postinoculación. En los animales domésticos, cuando a los reaccionantes a la prueba tuberculínica, pretenden otorgarle una clasificación cuantitativa, criterios como tamaño de un grano de arroz, de maíz, de un huevo o de una naranja, son totalmente inservibles, ya que se modificarán con cada observador. Por supuesto que no existirán dudas respecto a la clasificación de reactores de un animal con una reacción del tamaño del huevo o una naranja, pero sí aparecerían juntamente con serios inconvenientes, con las reacciones pequeñas. La alternativa vigente es el uso del instrumento de medida, que permita cuantificar en forma correcta y en la misma escala, la reacción localizada a través de la medición del aumento del grosor de la piel en el sitio de inoculación, por cualquier profesional en cualquier lugar. Por lo tanto, en un diagnóstico de estas características, es aconsejable eliminar todo tipo de subjetividades en la lectura e interpretación de la prueba y para ello el uso del calibre es el procedimiento adecuado, si se pretende algo más que un diagnóstico cualitativo (reaccionante o no reaccionante). Excepto cuando se utilicen calibres automáticos, las medidas del espesor de la piel previa y posterior inoculación, variarán de observador a observador y es usual que esto suceda en virtud de la diferente presión que cada profesional de acuerdo con la aplicación de su fuerza, ejerza sobre la boca del calibre. No obstante, esto no constituye ningún problema, en virtud de que el diagnóstico surge de la diferencia de medidas del pliegue de la piel previa y posterior inoculación, y siempre que el veterinario acreditado que realice ambas lecturas sea el mismo, la diferencia medida en milímetros será la misma. �En el manual de normas y procedimientos de la resolución vigente, se describen los criterios de interpretación, en forma individual para cada una de las pruebas tuberculínicas, pero es importante recalcar que la simple observación sin proceder a la palpación, se debe considerar el procedimiento de la técnica de lectura en forma incorrecta. En algunos países como por ejemplo Estados Unidos, no se considera actualmente adecuado el uso del calibre en la prueba ano caudal, mientras que en otros, sí se lo utiliza para cuantificar y eliminar toda subjetividad de la prueba. La diferencia se debe a que en USA, con cualquier reacción a la palpación, se considera al animal como positivo, en tanto en los otros países, lo hacen de acuerdo a una escala con umbrales en milímetros, en donde se clasifican a los animales reactores en positivos, sospechosos y negativos, surgiendo ambos criterios de situaciones epidemiológicas totalmente diferentes. La sexta constante es el instrumental a utilizar, variable de suma importancia en la obtención del éxito o el fracaso del saneamiento del rodeo. Es necesario utilizar jeringas de uso veterinario de 1 a 2 ml de volumen, automáticas o manuables graduadas en 0.1 mililitros. Las agujas serán hipodérmicas, calibre 6, con una longitud de la cánula de 5 milìmetros y bisel corto. En el caso de animales difíciles de inmovilizar, se podrán usar agujas más cortas. Los calibres deberán estar graduados al 0.1 milímetro, pudiendo ser metálicos o de plásticos. La falta de calidad instrumental, puede llevar aparejado una disminución en la dosis aplicada, debido a una pérdida de tuberculina, como también una disminución de la tasa de cobertura o inoculación de los animales en tiempo y forma, teniendo como resultado una disminución de la eficacia o efectividad en el cumplimiento de los objetivos propuestos. En los sistemas productivos intensivos, con especial referencia a los tambos de alta producción, tales circunstancias pueden tener implicancias directas en la eficiencia o rentabilidad empleada para llevar a cabo el programa de saneamiento o monitoreo del rodeo. Es precisamente el estudio epidemiológico de cada situación en particular, la variable que inevitablemente tendremos siempre que analizar, cuando antes de iniciar cualquier diagnóstico de situación por medio de la prueba tuberculínica, nos planteemos cinco preguntas bàsicas: 1. 2. 3. 4. 5. Cuál es el objetivo del trabajo? Qué sabemos de la condición sanitaria del rodeo respecto a la enfermedad? Cuál de las pruebas tuberculínicas vamos a utilizar? Qué categorías vamos a testear? Cómo vamos a evaluar los resultados? �La definición del objetivo constituye sin duda el punto de partida y es de fundamental importancia para la programación de las actividades posteriores. El deseo por parte del productor y veterinario acreditado, de conocer la posible existencia de la tuberculosis bovina en el rodeo, con el único fin por ejemplo, de definir el origen y los costos de futuros reemplazos en el manejo de la reposición de hembras, o tal vez para contar con otro elemento de juicio en el momento de descartar animales para venta, hace que la organización de las tareas posibles de realizar, será muy diferente a la que se programe cuando se desea eliminar la enfermedad en el rodeo. Es posible que la prueba tuberculínica que utilicemos puede ser la misma, pero los animales a inocular y la evaluación de los resultados obtenidos serán totalmente diferentes. Por lo tanto, es una necesidad iniciar las tareas de saneamiento a partir de un diagnóstico de situación transparente, en el cual el productor pueda reconocer el problema concreto de la enfermedad en su rodeo y el profesional crear las alternativas posibles. Es necesario crear un equipo con las personas que son responsables en las diversas tareas. Esto se realiza con las prácticas y las relaciones de motivación y comunicación constante que el veterinario acreditado debe transmitir al personal de campo y el desempeño de las actividades se refleja en los indicadores que serán analizados, valorados e interpretados. Toda la información analizada, debe pasar por los mecanismos de retroalimentación y estar a disposición permanente de los propietarios del establecimiento. Es fundamental para el logro de las metas y objetivos propuestos, desarrollar las actitudes y habilidades del personal a cargo, a través de charlas de actualización en los diferentes temas de la problemática a resolver. De tal manera, se podría afirmar, que es muy difícil que exista una planificación coherente, si no sabemos para qué estamos trabajando y esa es la importancia de este primer paso, definir que es lo que esperamos obtener con la utilización de éste método de diagnóstico. La segunda pregunta, correspondiente al conocimiento de la condición sanitaria del rodeo respecto a la enfermedad, merece un análisis detallado de la historia del rodeo, como se fue formando, la situación de la tuberculosis en los rebaños adyacentes, en áreas vecinas, basándose para ello en resultados tuberculínicos confiables y/o en los datos disponibles que surjan de la vigilancia epidemiológica en faena, los resultados de pruebas anteriores y el orígen de los animales que a él ingresen dentro del marco local o regional, que nos permitirá tener una visión global de la historia natural de la enfermedad en el rodeo. Los datos que se obtengan por medio de una detallada anamnesis, en algún grado nos permitirá evaluar, primero el riesgo de que la tuberculosis esté presente y segundo, la posibilidad de su ingreso al rodeo a través de las distintas vías de transmisión. �Esto constituye parte del estudio epidemiológico que antes se mencionó como variable de análisis, que no se limitará a medir el problema presente y los riesgos de introducción o reinfección, sino que deberá abarcar aspectos mucho más amplios, bajo un enfoque sistémico, en la que no podrán dejarse de lado aspectos sociales, culturales y fundamentalmente económicos del establecimiento en estudio y del área o región en que se encuentre. Del correcto análisis de esa situación, depende la adecuada selección de la prueba tuberculínica a utilizar que se planteó en tercer lugar. Cuando hablamos de un estricto análisis de diagnóstico de situación, debe quedar claro que el mismo no se limita a presencia o ausencia de la enfermedad o a su grado de difusión en el rodeo, sino que contempla otros aspectos, como las posibilidades de eliminación de los reactores, en el caso de rodeos infectados, en forma tal que su número y el momento de su segregación afecten en la menor proporción posible el esquema productivo del establecimiento. Es sabido que la erradicación de la tuberculosis bovina, es sin duda una acción sanitaria redituable, pero debe tenerse en consideración todas las alternativas posibles de aplicación, para que en el proceso se afecten lo menos posible los ingresos del establecimiento, hasta el punto de no hacer peligrar la continuidad del programa de saneamiento. Por lo tanto, juntamente con el diagnóstico de situación inicial y con el resultado de una prevalencia de infección, debe evaluarse también la capacidad económica y financiera de cada establecimiento en particular, ajustando las acciones a las posibilidades reales del propietario. De acuerdo con el sitio de inoculación, podemos clasificar a las pruebas tuberculínicas en ano-caudal y cervicales. Las cervicales a su vez pueden ser de dos tipos: cervical simple y cervical comparativa, según se utilice un antígeno PPD bovino o dos, PPD bovino y PPD aviar respectivamente. La exactitud de una prueba puede medirse y expresarse, en base a su habilidad de clasificar correctamente animales de acuerdo a su situación sanitaria. Estas medidas son la sensibilidad (Se) y especificidad (Ep). Debido a que sobre estas dos propiedades esenciales, se basa la decisión del tipo de prueba a utilizar en cada una de las distintas situaciones que pueden presentarse, al igual que los criterios utilizados en la interpretación de los resultados de la lectura postinoculación, es importante dejar claro ambos conceptos. La sensibilidad es la probabilidad de que una prueba identifique correctamente aquellos animales infectados y enfermos. La especificidad es la probabilidad de que una prueba identifique correctamente aquellos animales no infectados o sanos. �Para establecer estos dos atributos, se debe aplicar la prueba en muestras de animales cuya situación respecto a la enfermedad es conocida y los resultados pueden tabularse en cuadro 2 x 2, del cual pueden calcularse la Se y Ep. En el caso de la tuberculosis bovina, la prueba utilizada es la prueba tuberculínica que es un test indirecto, ya que no se utiliza para detectar al agente de la enfermedad, sino para evidenciar en los animales en estudio una reacción inmunitaria contra el mismo. Esta reacción que representa la manifestación de la capacidad individual para producir defensas detectables y mensurables contra el mycobacterium, no diferencia infección ni enfermedad, sino simplemente mide la exposición del huésped al agente con el correspondiente desarrollo del proceso inmunitario. Una prueba tuberculínica es tanto más sensible cuanto mayor es el número de respuestas positivas entre los animales infectados, y es tanto más específica cuanto menor es el número de respuestas positivas en animales no infectados o sensibilizados por otras micobacterias diferentes del bacilo bovino. No existe actualmente ninguna prueba tuberculínica absolutamente sensible, capaz de detectar con una sola aplicación el 100% de los animales infectados; siempre habrá un cierto porcentaje de “falsos negativos”. Tampoco existe la prueba absolutamente específica; todas las micobacterias poseen ciertos antígenos comunes y los animales sensibilizados por el M.avium complex (MAC) Subsp.paratuberculosis,o por una variedad muy grande de otras micobacterias generalmente saprófitas que se hallan en el medio ambiente, pueden dar también reacción tuberculínica positiva, son los denominados “falsos reactores positivos” En las poblaciones de ganado bovino con altos porcentajes de infección, se deben preferir sistemas de saneamiento que utilicen pruebas tuberculínicas altamente sensibles, con el propósito de interrumpir lo más rápidamente posible la transmisión de la infección. La prueba que detecta la mayor proporción de animales infectados con el menor número de repeticiones será la adecuada, aunque con ella se corra el riesgo de tener algunas falsas respuestas positivas. Es conveniente utilizar la prueba tuberculínica operativa ano-caudal, de rutina, para determinar la presencia de infección tuberculosa en un rodeo o región, y la prueba cervical simple, más sensible, para eliminar los reactores de los rebaños infectados. El criterio de interpretación podrá ser más o menos severo, según las condiciones de infección del rodeo o de la región en que se aplicará la prueba y el objetivo que se persigue con la misma. En un rodeo con antecedentes de tuberculosis, será necesario emplear un criterio más estricto que en otro donde nunca se haya detectado un reaccionante. �De acuerdo a lo expresado anteriormente, de la Se de la prueba elegida, dependerá la mayor o menor proporción de enfermos y/o infectados detectados, mientras que la Ep determinará la proporción de falsos positivos que formarán parte de la tasa de prevalencia aparente de la enfermedad, surgiendo la misma, directamente de la práctica diagnóstica realizada por el profesional. Los datos que se obtienen de esa práctica rural, están clasificados como positivos y negativos a la prueba diagnóstica e incluyen tanto verdaderos positivos y verdaderos negativos como falsos positivos y falsos negativos. El profesional veterinario a pesar de no poder cuantificarlos, deberá estar prevenido sobre la posible inclusión de falsos positivos y falsos negativos, en la medida de la presencia de la enfermedad en el rodeo. Los resultados en cada caso serán el producto de la Se y Ep del test diagnóstico que se utilice, que no siempre son exactamente conocidas. Partiendo que la prevalencia verdadera esta calculada por aquellos animales probados y realmente infectados por la “prueba de oro”, determinándose normalmente por un método estándar (aislamiento bacteriológico), se puede inferir que la prevalencia aparente detectada es diferente a la verdadera. Esto se debe a la capacidad diagnóstica de cada prueba, expresada como Se y Ep, que al aplicarse sobre una población animal la discrimina en los cuatro grupos mencionados. Si fuese la Se y Ep del ciento por ciento cada una, solo existirían dos grupos, sanos y enfermos, que permitirían solucionar los problemas epidemiológicos y sin conflicto. En la realidad esos grupos de superposición sí se presentan y su gravitación en el saneamiento y eliminación de la enfermedad en el rodeo, puede ser tan importante como detener todo el proceso del mismo, siempre y cuando el profesional acreditado no tenga en claro los conceptos anteriores que pueden sintetizarse en dos propiedades importantes de la pruebas, que son el valor predictivo positivo (VP+) y el valor predictivo negativo (VP-) El primero también denominado diagnosticabilidad, indica que proporción de los animales positivos a la prueba están realmente infectados o enfermos. Es la probabilidad que un animal con resultado positivo a la prueba, sea correcto. El valor predictivo negativo, indica la proporción de animales realmente sanos del total de animales que no reaccionaron a la prueba. Es la probabilidad que un animal no esté infectado si tiene un resultado negativo a la prueba. Los valores predictivos indican la exactitud de la prueba, por lo tanto, es la proporción de animales correctamente identificados por la prueba, ambos VP dependen de la prevalencia de la enfermedad en la población y de la Se y Ep de la prueba utilizada. Existe una relación cercana entre VP+ y la Ep, así como entre VP- y la Se. Cuando aumenta la Ep de la prueba, se incrementa el VP+ y por lo tanto la probabilidad de que un resultado positivo sea verdadero, aumenta. �Cuando aumenta la Se de la prueba, aumenta el VP- y por lo tanto la probabilidad de que un resultado negativo sea correcto, aumenta. La Se permite una mayor confianza en un resultado de prueba negativo. Esto nos permite inferir, que una prueba tuberculínica negativa de mayor Se como la cervical simple, seleccionada para una eventual compra de animales, aquellos que fueron negativos a la prueba no diseminarán la enfermedad. Es importante tener presente que si la Se y la Ep de la prueba no se modifican o sea se mantienen constante, su diagnosticabilidad variará directamente con el valor de la prevalencia de la enfermedad en el rodeo. A mayor prevalencia corresponderá una diagnosticabilidad del test más elevada y viceversa, cuando la prevalencia de la enfermedad disminuye, el VP+ del test, se irá reduciendo y aumentará consecuentemente la eliminación de falsos reactores positivos. El conocimiento de estos conceptos y su comprensión son fundamentales para el correcto uso de las distintas pruebas tuberculínicas, que se detallan en el manual de normas y procedimientos de la legislación vigente, ya que cada una fundamentalmente de acuerdo con su Se y Ep tendrá un uso adecuado o una contraindicación, de acuerdo con la situación sanitaria que se esté analizando. No existe una prueba aconsejable para todos los casos y la opción entre las distintas pruebas diagnósticas disponibles dependerá del análisis de las variables que se han mencionado anteriormente. Que categorías del rodeo vamos a testear, nos indica la siguiente pregunta, la cual está relacionada con la edad de los bovinos a tuberculinizar. En la primera prueba ano-caudal, cuando se desconoce si los animales están o no infectados, es conveniente aplicar la PPD bovina a todos los bovinos mayores de 3 meses de edad en las razas lecheras, ya que la leche es el vehículo ideal como vía de transmisión del bacilo tuberculoso, observándose en éstas categorías de terneros/as una mayor frecuencia de la infección por ingestión de leche que por vía aerógena. Las ubres de vacas positivas a la tuberculina pueden eliminar bacilos en leche sin que exista mastitis tuberculosa. La eliminación por leche es trascendente, siendo el vehículo ideal para la transmisión de los bacilos, ya que éstos se encuentran en emulsión en la grasa y ésta facilita su difusión por el tracto digestivo, cuando los alimentos son digeridos. Por lo tanto la medida de prevención es no dar más de doce horas de calostro y retirar las crías del contacto de su madre, para continuar con la crianza artificial de los terneros/as, utilizando sustitutos lácteos. Dicha medida de manejo, contribuye de manera esencial, a que el núcleo genético de las futuras vaquillonas de reemplazo, en sus tambos, mantengan una sanidad de base óptima en el inicio de la reposición. �Es importante destacar que las vaquillonas preñadas, es una categoría sensible de contraer la infección, especialmente las que provienen con un origen libre de la infección tuberculosa, por lo tanto, la no separación de los animales por grupo de edad, es un factor de riesgo que contribuye a la propagación de la enfermedad. En las razas de carne se puede iniciar el diagnóstico tuberculínico, a partir de los 24 meses de edad, si no existieron ingresos de animales en ese lapso. En cambio si hay en el establecimiento animales recientemente adquiridos, o se comprueba que el rodeo está infectado, en la siguiente prueba tuberculínica se deberá examinar a todos los animales a partir de los 6 meses de edad. En el rodeo de carne con sistemas de producción extensiva, la propagación es lenta y la transmisión de la enfermedad de la vaca al ternero desempeña en ella un papel importante. En este tipo de rodeos, la tuberculosis bovina puede afectar a unos pocos animales sin que se difunda rápidamente entre los demás. Solamente cuando las condiciones de crianza se realiza en los sistemas estabulados o semiestabulados, la propagación de la enfermedad puede incrementarse. Como vamos a evaluar los resultados, es la pregunta que nos hacemos en la evaluación epidemiológica inicial de un establecimiento infectado. El veterinario acreditado que realiza la prueba tuberculínica en un rodeo, tiene que actuar con criterio epidemiológico, tomando en cuenta la totalidad del rodeo y no interpretar los resultados en base a los animales considerados aisladamente. Las pruebas tuberculínicas negativas no son garantía sanitaria suficiente, si se desconoce el estado sanitario del rodeo del cual provienen los animales, excepto cuando los mismos proceden de un rodeo certificado oficialmente libre, puede garantizar dicha condición. Por lo tanto, es un instrumento valioso en el control y erradicación de la tuberculosis bovina y con ese criterio deben manejarse. La interpretación de los resultados de las pruebas tuberculínicas, están debidamente detalladas en la guía de saneamiento de la tuberculosis bovina en un rodeo(Torres.,2000). Como expresamos anteriormente en la selección de la prueba tuberculínica, existen situaciones y factores que pueden impedir a la prueba diagnóstica clasificar correctamente al animal. De tal manera, deben tenerse siempre presente cuando se analizan los resultados de una prueba. Positividad a la reacción tuberculínica no es sinónimo de enfermedad. Un resultado positivo sólo indica la exposición del animal en estudio al agente en algún momento de su vida, con un tiempo mínimo de incubación, anterior al estudio como para haber desarrollado la respuesta inmune. En el momento de la prueba, el animal entonces puede encontrarse infectado en un período prodrómico, enfermo o inclusive sin desarrollo de lesiones granulomatosas. �La experiencia ha mostrado que no existe correlación entre el tamaño de la respuesta tuberculínica y la extensión de las lesiones que puedan ser encontradas en el examen post mortem del animal. Por el contrario, las reacciones suelen ser más importantes cuando la infección es reciente, pasado el período de incubación prealérgico. Con otro enfoque, algunos resultados positivos, pueden deberse a la existencia de mecanismos de defensa contra agentes microbianos distintos al M.bovis, pero que tienen semejanza antigénica con él, generando reacciones cruzadas al PPD bovino. Entre las especies de micobacterias más importantes que causan dicha sensibilidad tuberculínica, se pueden encontrar el M.avium Complex (MAC), de los cuales ninguno de los serotipos reconocidos, es considerado patógeno importante en el bovino y son capaces de causar lesiones pequeñas no progresivas y circunscriptas particularmente a los linfonódulos mesentéricos. El M.avium Subsp. Paratuberculosis es el agente causal de la enfermedad paratuberculosa en el bovino y puede ser una importante fuente de sensibilidad heteroespecífica. Otras micobacterias no patógenas, como las especies que se encuentran en las lesiones de piel (dermatitis tuberculosa) Ej: Complejo M.fortuitum, M.Kansasii, M.Phlei, pueden producir sensibilidad tuberculínica. En las etapas finales del control de la enfermedad en un rodeo o en una región, el problema de los “falsos reactores positivos” va cobrando mayor importancia. Estos animales generalmente reaccionan a la tuberculina bovina, dando respuestas pequeñas. Los agentes sensibilizantes paraespecíficos son más comunes en algunas regiones que en otras, tal es el ejemplo de los resultados obtenidos en el estudio de las micobacterias no tuberculosas en los suelos de la Provincia de La Pampa (Oriani.; 2000). En condiciones de muy baja prevalencia de infección y/o sensibilización, comprobada por micobacterias diferentes del M.bovis o del M.tuberculosis, es cuando la especificidad de la prueba adquiere particular relevancia, por lo cual se deben reducir al mínimo posible los “falsos positivos”. El origen de la sensibilización de los reactores “sospechosos” a la prueba operativa de rutina, sólo se puede dilucidar cuando el criterio epidemiológico así lo aconseje, mediante el empleo de la prueba doble cervical comparativa, utilizando PPD bovino y PPD aviar. La función de ésta prueba comparativa, es clarificar si la probabilidad de que la causa de la sensibilidad tuberculínica en un animal sospechoso, es debida a una infección con M.bovis. Sin embargo, el uso de la prueba comparativa, como prueba única en los rodeos o en regiones altamente infectados es desaconsejable, porque es más compleja, tanto en su ejecución como en su interpretación, que las pruebas cervical simple o ano caudal y, si bien tiene una mayor especificidad, su sensibilidad es marcadamente inferior y ello restringe su aplicación en las áreas infectadas de tuberculosis. �También debe considerarse que un animal puede dar un resultado negativo, aún cuando pueda estar realmente infectado, si lo reciente de la infección no ha permitido el adecuado desarrollo del proceso inmunológico, cuando un fuerte shock de stress bloquea su sistema de defensa, o cuando en bovinos, como en humanos, la sensibilidad tuberculínica tiende a disminuir a medida que las lesiones progresan y toda la sensibilidad puede desaparecer en las etapas avanzadas de la enfermedad, estado que se denomina anergia tuberculinica. Otras causas de anergia son la infección muy reciente, como ser el período de incubación, y motivos fisiológicos, como es la preñez avanzada. Las enfermedades virales, inmunodeficiencias y esteroides administrados, también disminuyen la capacidad del animal infectado para su respuesta a la tuberculina. Por último hay que recordar que la anergia puede resultar el producto de una desensibilización local y sistémica, debida a una inoculación tuberculínica. Cuando se detecta la infección tuberculosa en un rodeo, ningún animal dentro de él podrá ser considerado con certeza como no infectado por el resultado de una sola prueba tuberculínica. Dado que todos los animales de ese establecimiento han estado expuestos a un foco de infección, es muy probable que entre ellos existan, casos de infección reciente, aún en la etapa prealérgica y que sólo se los pueda identificar mediante la repetición de las pruebas. Los casos complicados de saneamiento son cuando aparecen los animales tuberculosos anérgicos, que se hallan en las últimas etapas de la enfermedad, con lesiones abiertas diseminadoras de bacilos. Una práctica que alienta la aparición de éstos animales, es la no eliminación a faena de los reactores positivos a la prueba tuberculínica. Dichos animales dejan de responder a la prueba, pero continúan propagando la enfermedad. La prueba indicará la aparición de nuevos casos de infección en el rodeo a una tasa bastante constante, ocasionando una falta en el control de la enfermedad. REFERENCIA BIBLIOGRAFICA Francis,J., Seiler,R., Wilkie,W., et al., 1978. The sensitivity and specificity of various tuberculin tests using bovine PPD and other tuberculins. Veterinary Record 103, 420435. Kantor, I., 1984. La prueba tuberculinica en el Ganado bovino. OPS/OMS. Lepper,A., Pearson,C., Corner,L., 1977. Anergy to tuberculin in beef cattle. Australian Veterinary Journal 53, 214-216. Organización Mundial de la Salud., 1968. Comité de Expertos de la OMS en Patrones Biológicos. Serie informe técnico Nº 384, pp.23-42. �Oriani,S.,Bernardelli,A., Sagardoy,M.,2000. Micobacterias no tuberculosas (MNT) en suelos de la Provincia De La Pampa (Argentina). Email. veter@teletel.com.ar Secretaría de Agricultura, Dirección Nacional de Sanidad Animal, Argentina, 1999. Plan Nacional de Control y Erradicación de la Tuberculosis Bovina. Resolución N° 115/99 SENASA/SAGPyA. Torres,P., 2000. Pruebas tuberculinicas (inoculación, lectura e interpretación). Preguntas y respuestas. SAGPyA, SENASA, OPS/OMS. WHO Expert Comité on Biological Standardization Requirements for Tuberculins., 1968. Technical Report, Series Nº 384, Geneva. � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Las pruebas tuberculinas en el ganado bovino Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2000 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Programa Control de Tuberculosis Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0044 Abstract A summary of the resource. La prueba tuberculínica constituye el instrumento básico para detectar la presencia de infección tuberculosa, por lo tanto, desempeña un papel fundamental en el programa de control y erradicación de la tuberculosis bovina. El empleo de la prueba tuberculínica en el ganado bovino tiene ya una larga historia, que ha permitido acumular una gran cantidad de conocimientos y una amplia experiencia, especialmente en los países cuyos programas de control de la tuberculosis bovina han alcanzado la etapa de la erradicación. Tuberculosis https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/573a2fa6b1f611c148f40ab7fd5b7a83.pdf 852728bb5be57e9eaee4b582a957e524 PDF Text Text CURSO VETERINARIOS ACREDITADOS EN SANIDAD y BIENESTAR AVIAR MÓDULO 1 SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA ÍNDICE �1. VETERINARIO PRIVADOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y BIENESTAR AVIAR 1.1. Objetivo de la capacitación 2. SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA 2.1. Situación de la producción de carne aviar mundial y en la República Argentina 2.2. Características de la producción de carne aviar en la República Argentina 2.3. Situación de la producción de huevo mundial y en la República Argentina 2.4. Características de la producción de huevo en la República Argentina 3. ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA 3.1. Influenza aviar 3.2. Enfermedad de Newcastle (ENC) 3.3. Salmonelosis 3.4. Micoplasmosis 3.5. Otras Enfermedades 1. VETERINARIO PRIVADOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y BIENESTAR AVIAR 2 �Según lo establece la Resolución SENASA N° 1-E/2018, se consideran como Veterinario privado acreditado a todas aquellas personas que hayan egresado de universidades reconocidas por el MINISTERIO DE EDUCACIÓN de la Nación, con título veterinario habilitante, acreditados y autorizados por este Organismo, para realizar las tareas inherentes a los distintos Programas Sanitarios que autorice la Dirección Nacional de Sanidad Animal. 1.1. Objetivo de la capacitación La acreditación de veterinarios privados del sector avícola tiene como objeto mantener la actualización permanente, en relación a conceptos técnicos, aspectos sanitarios de las principales enfermedades que afectan a la producción y la importancia de la notificación de sospechas de enfermedad. Si bien, cabe destacar que en el sector avícola los profesionales veterinarios son especialistas y de dedicación exclusiva a la especie, resulta imprescindible formar y mantener a los profesionales acreditados con un nivel elevado de conocimiento para que puedan tomar las medidas correctas e identificar las principales enfermedades aviares que rigen el mercado mundial, además es fundamental ejercer el cumplimiento de las medidas de bioseguridad, higiene y manejo así como el cumplimiento de los muestreos programados por SENASA. 2. SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA 2.1. Situación de la producción de carne aviar mundial y en la República Argentina La evolución del sector de carne aviar ha demostrado una dinámica muy interesante ya que en 1950 se comercializaban las aves vivas, hacia 1960 las aves con garras y cabeza, llegando a la década del 80 donde se comercializaba la carne de ave eviscerada fresca, con menudos y sin garras ni cabeza. 3 �En la década del 90 comenzó la comercialización de carne de pollo trozada fresca y congelada, algo que vemos actualmente, junto con lo descripto en la década del 80, aparecieron los cortes deshuesados cocidos congelados, siendo un segmento importante en la comercialización de esta carne. En la última década la carne de pollo es el producto que presentó el mayor aumento de demanda en el mercado mundial de carnes. La carne aviar representa el 45% de toda la carne comercializada mundialmente. El crecimiento de la demanda por carne de aves continuará liderando el aumento en el consumo de carnes, debido a su estatus como la fuente más económica y más accesible de proteínas de origen animal. Sin embargo, mientras en algunos países la disminución en los costos de alimentación ha sido un estímulo importante en el aumento de la producción, en otros casos, las enfermedades, principalmente la influenza aviar, han limitado su crecimiento. Los principales países productores son EEUU, China y Brasil, en tanto Brasil y EEUU, lideran las exportaciones. Por su parte, Japón, Arabia Saudita, UE, México y Rusia son los principales importadores. La República Argentina mantiene un espacio en el mercado internacional ocupando el 8º lugar como productor y 8º como exportador. La faena nacional de aves en establecimientos habilitados por el SENASA alcanza cerca de 722 millones de cabezas anuales, y considerando la faena provincial y municipal se calculan aproximadamente 800 millones de cabezas. Su distribución porcentual por provincias es: Entre Ríos 50,96 %, Buenos Aires 34,83%, Córdoba 4,63%, Santa Fe 4,61%, Rio Negro 3,31% y el resto del país con el 1,66 %. 4 �El consumo ha experimentado un importante incremento desde 2003 (20 kg. per cápita) llegando un consumo per cápita en el año 2019 de 43,33 Kg/ persona/año. Diversas razones motivaron el aumento del consumo. Por un lado, la reducción del precio al consumidor y su relación con el precio de la carne vacuna se combinaron favorablemente otorgándole mayor competitividad. La significativa disminución del precio fue el resultado de la reducción del costo industrial -vía incorporación de tecnología-, la fuerte integración de la cadena y la incidencia que tuvo la apertura del comercio exterior. Por otro lado, contribuyeron a aumentar el consumo las cualidades dietéticas y nutricionales de la carne aviar, sumadas al desarrollo de nuevos productos semi-listos o preparados que respondieron a los cambios en los hábitos de vida del consumidor. Durante el 2019, se exportaron a 60 países. De acuerdo con el volumen, las exportaciones se distribuyeron principalmente entre los siguientes países: 26% China, 11% Sudáfrica, 7% Chile, 3% Hong Kong, 0.2% Alemania, el 52% restante corresponde a otros países como Omán, Angola, Emiratos Árabes, Bélgica, Vietnam, Singapur, Cuba, etc. 2.2. Características de la producción de carne aviar en la República Argentina El ciclo avícola productivo de carne (línea pesada) comienza con la importación de reproductores abuelos de un día de edad de países cuyos Certificados Veterinario Internacional (CVI) son acordados previamente. Actualmente en el país hay 4 líneas genéticas de abuelos (ROSS, COBB, ARBOR ACRES y HUBBART), comercializado por cinco firmas, las cuales obtienen sus reproductores padres y a su vez le comercializan a más de 70 empresas. 5 �En la Argentina, la producción de pollos parrilleros se realiza, en un 98%, mediante sistemas de producción integrados. Estos sistemas responden a un modelo de integración vertical de procesos. El grado de integración es variable entre empresas según las etapas de producción que controlan directamente (reproducción de abuelos y padres, incubación, engorde, fabricación de alimentos, faena de aves, procesado, etc.). Las empresas avícolas, también denominadas “empresas integradoras”, realizan la etapa de engorde en granjas propias o contratan el servicio de productores granjeros. Esta última situación es la más implementada, en la cual la empresa aporta las aves, el servicio veterinario, el alimento, la faena y comercialización de los productos y el granjero recibe una remuneración, por ave faenada, por el aporte de las instalaciones, la mano de obra, la electricidad y la calefacción. Un pequeño porcentaje de la producción de pollos parrilleros se lleva a cabo a través de productores independientes, que realizan las etapas de cría y engorde y la adquisición de insumos por cuenta propia. El Centro de Empresas Procesadoras Avícolas (CEPA) agrupa a los productores argentinos de carne de aves y representa a 32 empresas, de las cuales 27 son exportadores. Se proyecta de acá al 2025 un crecimiento de alrededor del 30% en las exportaciones de pollo a nivel mundial, siendo Asia del Este, la Unión Europea, Arabia Saudita, México, Sub-Sahara Africana, Norte y Medio Este Africano los países y regiones que más van a crecer. El sector enfrenta permanentes cambios en el escenario global, donde muchos de los países importadores se están reconvirtiendo en productores de pollo teniendo como eje la seguridad y soberanía alimentaria. 6 �2.3. Situación de la producción de huevo mundial y en la República Argentina La producción mundial de huevos también ha mostrado un dinamismo notable en las últimas décadas. Este crecimiento no ha sido homogéneo, ya que mientras que en la década de los 90 los países desarrollados contribuían con 52% de la producción global, en 2015 ya los países menos desarrollados o emergentes aportaban más del 60%, siendo China la principal causa de este cambio. Dentro de este escenario, Asia contribuye con 62,1% de la producción global y Europa, con 14,3%, mientras que Centro y Sudamérica aportan el 9,8%. En Sudamérica la producción ha aumentado exponencialmente, donde Brasil lidera la producción de huevos en la región, con 47,4% del total. Lo sigue Colombia, con 14,5% de participación, y más atrás se ubican Argentina, Perú y Chile. Estos cinco países abarcan el 87% de la producción de la región. El 97% va a consumo interno y el 3% restante se exporta a más de 56 países habilitados. El consumo ha experimentado un importante y sostenido incremento desde 2002 con 129 a 284 unidades per cápita en 2019, ubicando a la Argentina como el 5º consumidor de huevos del mundo. 2.4. Características de la producción de huevo en la República Argentina El ciclo avícola productivo de huevo (línea liviana), comienza con la importación de reproductores padres de un día de edad de países cuyos certificados (CVI) sean acordados previamente, principalmente desde Brasil, 7 �y dependiendo de la situación sanitaria por influenza aviar, desde España y Alemania. A diferencia de la producción de pollos, el sistema de producción de huevos no se halla integrado verticalmente. Los productores de huevos adquieren los insumos y realizan la venta del producto por cuenta propia. La compra de las gallinas ponedoras, el alimento, los aspectos sanitarios, el transporte de insumos, las instalaciones y la mano de obra son gerenciadas por el productor. La etapa de recría se realiza en galpones a piso o a jaula y la etapa de postura es llevada a cabo en su mayoría en galpones con jaulas. Aproximadamente el 90% de los productores compran la pollita bb y realizan la etapa de recría y producción en la misma granja. La producción de huevo se concentra principalmente en las provincias de Buenos Aires 39.3%, Entre Ríos 26.7%, Córdoba 8.3% y Mendoza 7.6%. Las empresas productoras de huevos son agrupadas en la Cámara Argentina de Productores Avícolas (CAPIA) que agrupa a más de 400 empresas a lo largo del país. Representa actualmente el 80% del sector y tiene como principal misión auspiciar el desarrollo y consolidar la industria avícola. La avicultura de postura en la Argentina tiene mucho para ofrecer, posee un potencial enorme, el cual depende exclusivamente de los actores que la componen para fijar las metas a las que quiera llegar. 3. ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA El Programa de Sanidad Aviar tiene como objetivo disminuir en forma significativa el impacto negativo de las enfermedades de las aves 8 �domésticas que afectan la producción, comercialización y salud pública del país. En base a este criterio, se determinan las denominadas “Enfermedades bajo programa”. A continuación, se detallarán los componentes más relevantes de estas enfermedades (etiología, patogenia, epidemiología, cuadro clínico), la situación país y normativa relacionada, lo cual va a permitir comprender las actividades llevadas a cabo por el Programa, detalladas en los siguientes módulos. 3.1. El virus de la influenza aviar pertenece a la familia Orthomyxoviridae, es un virus RNA segmentado y envuelto. De acuerdo con sus nucleoproteínas y proteínas matrices, se clasifican en 3 tipos A, B y C. A su vez, atendiendo a sus 2 antígenos de superficie Hemoaglutinina (H) y Neuraminidasa (N), se subclasifican en subtipos. Estos virus exhiben una gran variabilidad antigénica y capacidad de mutación, así como un amplio espectro de virulencia. Las variaciones de los antígenos principales H y N son las causas de los cambios en la epizootiología de la influenza tipo A. Los virus de la influenza aislados de aves pertenecen sin excepción al tipo A, y si bien encontramos subtipos de H1 a H18 y N1 a N11 (198 combinaciones posibles), en las aves están presentes del H1 al H16 y N1 al N9, siendo el resto encontrados recientemente en murciélagos (H17-H18 y N10- N11). Entre los virus de la influenza de las aves y de los mamíferos existen relaciones de parentesco antigénico. La OIE define la influenza aviar de declaración obligatoria como “una infección de aves de corral, causada por cualquier virus de influenza tipo A perteneciente al subtipo H5 o H7 o por cualquier virus de influenza aviar con un índice de patogenicidad intravenosa (IPIV) superior a 1,2 en pollos 9 �de 6 semanas de edad, o que cause una mortalidad del 75% por lo menos, en pollos de 4 a 8 semanas de edad infectados por vía intravenosa” Cabe aclarar esta definición, ya que solo son de denuncia obligatoria los casos en aves de corral (en aves industriales o traspatio, pero NO en silvestres) y con aislamiento o detección viral (con aislamiento o detección por RT PCR, NO solo serología positiva). Es decir, que “la denuncia a la OIE, y consecuente pérdida del estatus del país se da si el caso ocurre en aves de corral y hay detección/aislamiento viral”. Históricamente, los problemas más severos de influenza aviar han sido causados por virus de los subtipos H5 y H7, los que inicialmente pueden presentarse como de baja patogenicidad y después, por mutación en su hemoaglutinina, se transforman en virus de alta patogenicidad. En este siglo, los brotes más importantes de IA han sido producidos por virus de los subtipos de H5N1, H5N2, H5N3, H5N8, H5N9, H7N1, H7N3, H7N4 y H7N7. Los virus pertenecientes al subtipo H9, se han presentado en ocasiones con mediana patogenicidad. Es una enfermedad altamente contagiosa, que tiene como principales huéspedes a gallinas, pollos y pavos, aunque es probable que todas las especies aviares sean susceptibles a la infección. La importancia epidemiológica de las aves silvestres radica en que las mismas pueden portar y distribuir el virus sin provocar en ellos enfermedades. Corresponde dar particular importancia a las aves acuáticas silvestres y, especialmente a aves del orden anseriforme (patos, gansos y cisnes), en cuyo tracto digestivo se multiplican estos virus, para ser expulsados con las heces y difundirse ampliamente en el medio ambiente acuático. También los patos domésticos pueden estar infectados en forma inaparente con virus de la influenza, y contagiar a otras especies de aves domésticas. 10 �Los signos y síntomas son muy variables dependiendo de la patogenicidad del virus. El virus de influenza de baja patogenicidad (IABP) causa infecciones entéricas o respiratorias, produciendo una enfermedad leve o moderada. Los signos de la enfermedad pueden ser plumaje erizado, reducción de la producción de huevos, o trastornos leves en el sistema respiratorio y, generalmente, cursan sin la manifestación de lesiones graves y características. El virus de influenza de alta patogenicidad (IAAP) causa infecciones sistémicas, produciendo enfermedad grave. Al tratarse de una enfermedad hiperaguda, se suele registrar una alta mortandad con ausencia casi total de signos o lesiones. En la República Argentina la influenza aviar es de declaración obligatoria, es una enfermedad exótica, de la cual no se han detectado casos ni aislado virus hasta la fecha. Desde el año 1998, el SENASA ha implementado acciones y actividades dirigidas a la prevención de la influenza aviar (IA). Una de las primeras medidas que se adoptaron fue la puesta en marcha de las técnicas diagnósticas por serología para determinación de anticuerpos contra influenza tipo A. Estas medidas obedecieron en un comienzo, más al propósito de ofrecer garantías sanitarias a los países importadores de productos avícolas argentinos, que a una preocupación por el posible ingreso de esta enfermedad, ya que hasta el momento, la influenza aviar era una enfermedad de presentación esporádica en algunos países del mundo, en su mayoría del hemisferio norte. 11 �Ante la extraordinaria difusión geográfica, en particular de la cepa A/H5N1 del virus de IA, el SENASA desarrolló e implementó diversas acciones de prevención contra la enfermedad. El país cuenta con la Resolución SENASA N° 73/2010, que ha adoptado la definición de la enfermedad acorde al Capítulo correspondiente de la OIE y obliga su notificación, vigilancia y eventual control y erradicación. Anualmente, se implementa un plan de prevención que incluye el control de las importaciones, la vigilancia epidemiológica, el control de la bioseguridad de establecimientos avícolas comerciales, la capacitación a agentes del organismo y la difusión e información a actores de la actividad avícola, entre otras actividades programadas. Frente a la aparición de sospechas o casos de estas enfermedades, los agentes del SENASA implementan actividades relacionadas a la investigación inmediata de la sospecha o eventual control y erradicación. 3.2. La enfermedad de Newcastle (ENC) es considerada en todo el mundo como una de las enfermedades más importantes en aves de corral debido a la alta mortalidad que puede producir y a las repercusiones económicas que derivan de las restricciones de comercio y embargos en las zonas y países donde se han producido brotes. Es una infección vírica aviar, producida por un virus RNA monocatenario de la familia Paramyxoviridae, subfamilia Paramyxovirinae. De los 9 serotipos existentes, es el paramixovirus-1 (PMV-1) el denominado Enfermedad de Newcastle, siendo de declaración obligatoria cuando “su índice de patogenicidad intracerebral (IPIC) es superior a 0,7 en pollitos (Gallus gallus) de un día de edad o se ha demostrado (directamente o por deducción) la presencia de múltiples aminoácidos básicos en el virus, en el extremo C-terminal de la proteína F2 y un residuo de fenilalanina en la posición 117, la cual está en el extremo N-terminal de la proteína F1. Por 12 �«múltiples aminoácidos» se entiende la presencia de al menos tres residuos de arginina o lisina entre las posiciones 113 y 116. La imposibilidad de demostrar la presencia de este modelo característico de residuos de aminoácidos exigirá la caracterización del virus aislado mediante una prueba de determinación del IPIC”. (Organización Mundial de Sanidad Animal. OIE, 2014). La Enfermedad de Newcastle (ENC) fue descubierta en Newcastle-uponTyne, Inglaterra en 1926 (Doyle) y hoy es endémica de muchos países. El virus de la ENC se ha detectado en más de 250 especies de aves, en 27 de los 50 órdenes de aves que existen. Todas las aves parecen ser susceptibles a la infección, aunque el grado de la enfermedad varía según la especie y en función de la cepa viral. Los miembros del orden Phasianiformes (aves gallináceas), en particular los pollos y gallinas, son altamente susceptibles a la ENC, según los estudios realizados a nivel experimental y en observaciones a campo. Los patos y los gansos son considerados potenciales reservorios del virus de la enfermedad de Newcastle (VEN) y presentan generalmente infecciones inaparentes, sin embargo son capaces de albergar el virus y actuar como diseminadores. Los VEN encontrados comúnmente en aves silvestres, acuáticas silvestres migratorias y otras aves acuáticas, generalmente son de baja patogenicidad para los pollos, similares a los virus clasificados como entéricos asintomáticos o lentogénicos. En general, las aves silvestres muestran pocos o ningún síntoma, incluso tras ser infectadas con cepas virulentas del VEN. La importancia que tienen las aves acuáticas es que pueden actuar como reservorios del VEN y como fuente de infección en aves de corral, pudiendo originar, eventualmente, brotes de EN en estas especies. Muy 13 �esporádicamente cepas patógenas son encontradas en aves silvestres que pueden jugar un papel de mayor importancia en la difusión del VEN una vez que la infección se ha producido en aves de corral. Las palomas (orden Columbiformes) son muy susceptibles a la ENC y los virus lentogénicos o mesogénicos del VEN son endémicos en sus poblaciones. Pueden transmitir el VEN a las aves domésticas. Las vías más frecuentes de transmisión del VEN son el contacto directo de aves, o el contacto indirecto con alimentos contaminados, subproductos contaminados, agua, transporte por personas y otros fómites. Como se indicó anteriormente, la infección es normalmente transmitida por contacto directo de aves enfermas y también por aves sin síntomas clínicos que poseen el virus. Las aves vacunadas que están clínicamente sanas también pueden excretar el virus después de estar expuestas. Existen numerosas vías de introducción potencial del VEN en un país o un área libre de enfermedad, éstas incluyen: el comercio legal de aves domésticas, el comercio legal de aves exóticas, el comercio legal de productos avícolas (huevos, carne y derivados), la migración de aves silvestres, la transmisión mecánica (movimientos de personas y objetos contaminados), la vía aerógena, a través de vacunas contaminadas, por un acto bioterrorista y mediante el comercio ilegal de aves y subproductos avícolas. En la República Argentina, la Enfermedad de Newcastle fue diagnosticada por primera vez en el año 1961, estando presente desde ese año hasta 1987 en el que se registró el último foco en pollos parrilleros, del Departamento Uruguay de la Provincia de Entre Ríos. Actualmente, la República Argentina es un país libre de enfermedad de Newcastle. 14 �Como contención se utilizó el sacrificio sanitario, la vacunación en anillo y la posterior vigilancia epidemiológica. Desde entonces y hasta el presente no se han registrado nuevos casos de la enfermedad debido, fundamentalmente, a los estrictos programas de vacunación que se efectúan en todo el país y a la eficacia de las vacunas utilizadas. Durante los años 1996 y 1997, se realizó un estudio retrospectivo sobre la enfermedad de Newcastle en la Argentina, concluyendo el mismo con la declaración de “país libre de enfermedad de Newcastle” por medio de la Resolución N° 446/1997 de la ex Secretaría de Agricultura, Ganadería y Pesca de la Nación, la cual fue comunicada a la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE) en ese mismo año. La República Argentina ha sido reconocida oficialmente como país libre de enfermedad de Newcastle velogénico viscerotrópico por la Unión Europea, Canadá, Chile y los Estados Unidos. El SENASA ha establecido estrictas normas de control y de vigilancia epidemiológica activa y pasiva implementándolas en forma permanente para la enfermedad en todo el país, tendientes a salvaguardar la situación epidemiológica alcanzada mediante la Resolución Nº 683 del 31 de Octubre de 1996 del ex - Servicio Nacional de Sanidad Animal. La principal herramienta de prevención de la enfermedad es la ejecución de un estricto programa de vacunación en todo el país. Cabe aclarar que la vacunación contra enfermedad de Newcastle en aves domésticas es de carácter voluntario y se realiza como parte de los programas de vacunación de rutina a cargo de las empresas privadas. Gran parte de los productores optan por vacunar contra la enfermedad en forma preventiva. Los planes de vacunación abarcan las aves en producción industrial o intensiva. Las explotaciones de tipo doméstico (aves de 15 �traspatio) de gallináceas no vacunan, excepto cuando las aves de raza u ornamentales asisten a ferias y exposiciones rurales. Sin embargo, cabe aclarar que la Resolución de la ex SAGPyA N° 723/2000, establece la vacunación obligatoria de las palomas de raza mensajera en todo el territorio nacional contra la enfermedad de Newcastle, ya que son una de las especies aviares de mayor susceptibilidad y resultan de alto riesgo para la diseminación de esta enfermedad, ya que la actividad que desarrollan involucra un puente de contacto entre aves susceptibles (silvestres y comerciales). Actualmente, la cobertura vacunal alcanza el 85 % de la población avícola comercial del país. Esto se establece por la relación de vacunas comercializadas por año, en relación a la cantidad de aves existentes durante ese mismo año y la cantidad de dosis que se administran. Por lo general, los lotes de pollos de engorde reciben una dosis (o eventualmente dos dosis) de vacunas vivas y/o inactivadas. Las aves reproductoras y las gallinas de postura de huevo comercial son vacunadas durante la cría y recría con un mínimo de 3 a 4 aplicaciones de vacuna a virus vivo atenuado, seguida generalmente por una vacuna aplicada antes de la producción. En algunas compañías se utilizan vacunas durante la fase de producción (a partir de la semana 19 de vida y cada 90 días). La legislación vigente autoriza para su uso vacunas elaboradas a partir de cepas lentogénicas exclusivamente, con un índice de patogenicidad intracerebral (IPIC) inferior a 0.4. El uso de cepas mesogénica y velogénicas (viscerotrópicas o neurotrópicas) para la elaboración de vacunas se encuentra prohibido. La Resolución Senasa N° 130 del 16 de marzo de 2021, establece las características que deben reunir las vacunas contra la enfermedad de Newcastle 16 �en la cual se autoriza la importación y utilización de vacunas vivas e inactivadas contra la Enfermedad de Newcastle elaboradas con cepas lentogénicas y/o recombinantes con fracción Newcastle. Esta norma abroga a la Resolución Senasa N° 1086/2019. Asimismo, se autoriza a los laboratorios nacionales y multinacionales a elaborar y/o comercializar vacunas a virus vivo e inactivado contra la ENC utilizando exclusivamente cepas lentogénicas con un Índice de Patogenicidad Intracerebral (IPIC) igual o menor a CERO COMA SIETE (0,7) en la elaboración. Dentro de las vacunas a virus vivo, son usadas principalmente las elaboradas con cepas lentogénicas tipo B1 (B1 y La Sota). También están aprobadas, aunque de menor utilización, las cepas: Clon 30, VG/Georgia, Ulster, C2, Ulster y PHY LMV 42. Para esta enfermedad, se implementa un monitoreo anualmente programado que incluye la vigilancia epidemiológica (activa y pasiva) dirigida especialmente a aves de traspatio no vacunadas. 3.3. La salmonelosis es una de las enfermedades infecciosas más comunes en el mundo, que afecta tanto a seres humanos como animales. Es causada por dos especies de Salmonella (S. entérica y S. bongori). El género Salmonella está incluido dentro de la familia enterobacteriaceae y son bacilos gran negativos lactosa y urea negativas, móviles o inmóviles. La especie S. entérica se divide a su vez en 6 subespecies, siendo la subespecie entérica la más importante. Las cepas de Salmonella a su vez se clasifican en más de 2.000 serovariedades, según la clasificación KaufmanWhite, basada en la diversidad de los siguientes antígenos: lipopolisacáridos (LPS) que se corresponden con los antígenos somáticos O y las proteínas flagelares, correspondientes a los antígenos H. 17 �Algunos serovares son específicos de especie, como S. gallinarum -que a su vez incluye dos biovares, S. Gallinarum biovar gallinarum y biovar pullorumy es el único serovar inmóvil. El biovar gallinarum (tifosis aviar) afecta a aves jóvenes, caracterizándose por una diarrea verdosa y, en aves adultas, la caída significativa de la producción. El biovar pullorum (pullororsis) afecta a aves jóvenes causando una diarrea blanca, sin embargo las aves adultas cursan generalmente como portadores asintomáticos. Otros serovares pueden afectar a distintos huéspedes, recibiendo el nombre de salmonellas paratíficas o paratifoideas. Los serovares S. Typhimurium, S. Enteritidis y S. Heidelberg son ejemplos de salmonellas paratíficas, se caracterizan por poseer la capacidad de afectar a más de una especie. La infección con serovariedades paratíficas de Salmonella pueden cursar de manera subclínica, dificultando su detección. La capacidad de Salmonella de sobrevivir y multiplicarse en macrófagos, evadiendo la respuesta humoral, les permite persistir en el hospedador, dando lugar a huéspedes asintomáticos. Las distintas serovariedades presentan características diferenciales en cuanto a su capacidad de colonización y virulencia. La presencia de una serovariedad en el tracto digestivo de las aves estaría excluyendo la posibilidad de que otra serovariedad relacionada ocupe ese nicho, estableciéndose de esta manera una competencia entre serovariedades dentro de cada individuo. En un estudio llevado a cabo con aislamientos de Salmonella de origen humano, se demostró que la capacidad de invasión también difiere entre las serovariedades, siendo S. Enteritidis y S. Heidelberg las que presentaron mayor capacidad invasiva (Jones et al, 2008). 18 �Durante las últimas décadas y a nivel mundial, ha habido un aumento de enfermedades zoonóticas transmitidas por alimentos procesados tales como la Salmonelosis. El control de esta enfermedad es actualmente una de las mayores preocupaciones de los sectores de sanidad animal y salud pública. Las Salmonellas paratíficas (ej. S. entérica var. Enteritidis y var. Typhimurium) son las principales causas de gastroenteritis bacterianas en humanos a nivel mundial –especialmente en países desarrollados– y se asocian frecuentemente al consumo de productos avícolas contaminados. Su presencia en huevos y carne de aves afecta la seguridad de los alimentos y constituye una barrera sanitaria que limita la exportación. La prevención y el control de estos patógenos requiere, por un lado, comprender sus complejos ciclos de transmisión y, por el otro, implementar actividades de vigilancia epidemiológica para la identificación de casos. A fin de garantizar la inocuidad de los alimentos de origen aviar, se debe controlar la introducción y multiplicación de estos microorganismos a lo largo de la cadena productiva avícola, es decir “desde la granja a la mesa”, en todos los procesos que suponen producción, transformación, distribución y consumo. Por tal razón, producir alimentos avícolas libres de estos patógenos y en particular de las serovariedades que producen ETAs en el hombre, es una prioridad del SENASA, la cual se traduce en menores costos para las empresas avícolas y en un escenario más favorable para la comercialización de estos alimentos, máxime teniendo en cuenta que las barreras sanitarias imperan sobre las arancelarias. Asimismo, el Código Sanitario para los Animales Terrestres de la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE) en su capítulo 6.5 recomienda medidas para la prevención, la detección y el control de las infecciones de aves de corral por Salmonella, complementando a su vez al 19 �Código de Prácticas de Higiene para la Carne y al Código de Prácticas de Higiene para los Huevos y Ovoproductos del Codex Alimentarius, considerando que una estrategia de reducción de los organismos patógenos en las granjas, es la primera etapa del proceso que contribuirá a reducir la presencia de agentes patógenos transmisibles por los alimentos en el producto avícola final. Ante esta situación, entre los años 2009 y 2013, se ha realizado un muestreo en las granjas avícolas de pollos de engorde y gallinas de postura, con el objetivo de estimar la prevalencia de Salmonellas no específicas de especie y con importancia en Salud Pública, posibles contaminantes del producto avícola en la etapa final de su procesado. Los resultados obtenidos permitieron dar sustento a la intervención del SENASA, elaborando la Resolución SENASA N° 86/2016 que puso en marcha el “Programa de vigilancia y control de la contaminación por Salmonellas sp en granjas avícolas comerciales”, con el objetivo de obtener una reducción continua en la prevalencia de Salmonellas paratíficas en las aves y en el medio ambiente de dichas granjas, con el fin de proteger la salud del patrimonio avícola nacional y procurar la seguridad alimentaria e inocuidad de los alimentos de origen aviar. Cabe aclarar que las Salmonellas bajo programa son S. Enteritidis, S. Typhimurium y S. Heidelberg. RESUMEN DE LAS ACTIVIDADES DEL PROGRAMA DE CONTROL DE SALMONELLA EN GRANJAS COMERCIALES. 20 �El muestreo está a cargo del sector privado, el veterinario acreditado es el responsable de la toma de muestra y posterior seguimiento. Las muestras obtenidas deben ser enviadas a los laboratorios que trabajan en adhesión con el Plan Nacional de Sanidad Avícola (PNSA), para la realización del diagnóstico bacteriológico (determinación de Salmonella spp.) Podrán encontrar los mismos en el siguiente link: https://www.argentina.gob.ar/sites/default/files/2019lista_de_laboratorios_adheridos_al_programa_de_sanidad_aviar.pdf En aquellos casos en los que se determine la presencia de Salmonella spp., se procederá a la tipificación para determinar la serovariedad mediante la tipificación serológica o por pruebas moleculares (PCR). Se considera granja positiva cuando se detecte la presencia de Salmonella ser. Enteritidis, S. ser. Typhimurium y/o S. ser. Heidelberg (distintas de las cepas vacunales) en el ambiente. En este caso, el veterinario acreditado del establecimiento, el responsable técnico del laboratorio, o bien, el Programa de Sanidad Aviar, comunicarán inmediatamente al veterinario oficial local con jurisdicción en el establecimiento en cuestión. 21 �En las granjas de Pollo de engorde se procederá a dar de baja la autogestión del establecimiento, se permitirá la faena del lote (en caso de estar en granja) y se bloqueará el ingreso de animales, hasta tanto se regularice la situación. El veterinario acreditado debe presentar un descargo a la oficina local de las medidas que implementará para solucionar dicha contaminación. Una vez presentado el mismo, el veterinario de la Oficina local procederá a inspeccionar la granja, a fin de corroborar el cumplimiento de las medidas dispuestas mediante acta de constatación y planilla de inspección y podrá identificar las medidas que considere insuficientes y/o deficientes. Una vez cumplimentado se permitirá el ingreso de aves y el alta la autogestión en caso de considerarlo pertinente. En las granjas de gallinas de huevos para consumo se procederá a dar de baja la autogestión del establecimiento y se bloqueará el ingreso de animales, hasta tanto se regularice la situación. El veterinario acreditado debe presentar un descargo a la oficina local de las medidas que implementará para solucionar dicha contaminación. Una vez presentado el mismo, el veterinario de la Oficina local procederá a inspeccionar la granja, a fin de corroborar el cumplimiento de las medidas dispuestas mediante acta de constatación y planilla de inspección e identificar las medidas que considere insuficientes y/o deficientes. Las medidas implementadas pueden ser respaldadas con el uso de vacunas vivas y/o inactivadas contra S. Gallinarum y/o S. Enteritidis u otra serovariedad oportunamente aprobadas por el SENASA, a fin de alcanzar una reducción efectiva en la diseminación de Salmonellas y/o inhibición de su crecimiento en huevos. 22 �Una vez cumplimentado se permitirá el ingreso de aves y el alta la autogestión en caso de considerarlo pertinente. Para una mayor comprensión, el Programa de Sanidad Aviar ha elaborado un Manual de procedimientos, el mismo se encuentra como material complementario así también en el siguiente link: https://www.argentina.gob.ar/sites/default/files/ 2._manual_de_procedimientos_operativos_vigilancia_y_control_de_salmonell a_spp._en_granjas_avicolas_comerciales_res._senasa_ndeg_86.2016._version_2018_0.pdf En aves reproductoras, la vigilancia y control de Salmonellas tíficas (Salmonella Gallinarum, S. Pullorum), paratíficas (S. Enteritidis S. Typhimurium y S. Heidelberg) y micoplasmosis (Micoplasma Gallisepticum y Micoplasma Sinoviae), se llevan a cabo en forma obligatoria desde el año 2002, en el marco del Plan Nacional de Sanidad Avícola, cuya legislación es la Resolución SENASA Nº 882 Esta vigilancia que también la realiza el sector privado mediante los laboratorios adheridos, y a su vez es fiscalizado y auditado anualmente por el Organismo. 3.4. Micoplasmosis cabe mencionar que los agentes causales son microorganismos que, por su tamaño, se encuentran entre las bacterias y los virus. El Mycoplasma gallisepticum es responsable de la enfermedad respiratoria crónica y el Mycoplasma sinoviae de la sinovitis infecciosa. Esta enfermedad esta enmarcada bajo la Resolución SENASA 882/2002, bajo un criterio de coparticipación del sector privado y el sector oficial. Las normas técnicas del plan establecen la cantidad de muestras, la frecuencia de los muestreos, el tipo de muestras para cada categoría y las pruebas de laboratorio que se deben emplear para cada determinación. En 23 �forma ordinaria, las empresas remiten las muestras extraídas por el veterinario acreditado de la empresa a laboratorios adheridos al Plan, los cuales se encuentran autorizados por SENASA para procesar las muestras correspondientes al mismo. La base técnica utilizada para el diseño de este programa es el control de las micoplasmosis y salmonelosis aviares, en base al remplazo de planteles contaminados por planteles libres y la aplicación de medidas de bioseguridad en las cabañas de reproducción y plantas de incubación. Para una mayor comprensión, el Programa de Sanidad Aviar ha elaborado un Manual de procedimientos en relación a la normativa 882/2002, el mismo se encuentra como material complementario así también en el siguiente link: https://www.argentina.gob.ar/sites/default/files/ 1._manual_de_procedimientos_operativos_programa_de_control_de_micopla smosis_y_salmonelosis_en_aves_reproductoras_res._senasa_ndeg_882.2002-version_2018.pdf Con el objetivo de verificar el cumplimiento del Plan Nacional de Sanidad Avícola (PNSA), el SENASA realiza anualmente auditorias en plantas de incubación (PI) de huevos fértiles. En las mismas se toman muestras de dos lotes de los nacimientos del día previsto de visita, en caso de ser plantas de baja producción se podrá tomar muestra de un solo lote. De cada lote se recogerán 20 huevos picados no nacidos desechados dentro del cascarón, los que serán colocados dentro de una bolsa contenedora y enviados al laboratorio central del SENASA para su diagnóstico. 3.5. Otras Enfermedades: Si bien hay otras enfermedades importantes en la producción avícola nacional, el SENASA no las incluye dentro de su programa pero actúa o interviene en casos de epizootias, colaborando con el sector privado para su control. 24 �La Laringotraquítis Infecciosa (LTI) es una enfermedad endémica y de presentación esporádica, afectando principalmente a pollos de engorde. Para su intervención cuando así lo requiera, el SENASA elaboró la Resolución SENASA N° 333 del 2015 que contiene el plan de contingencia de dicha enfermedad. La Bronquitis Infecciosa (BI) también es otra de las principales enfermedades que se incrementan año tras año y el SENASA participa en su control. A nivel sanitario, estas y otras enfermedades aviares tales como la enfermedad de Gumboro (bursitis infecciosa), cólera aviar, enfermedad de Marek, viruela aviar, anemia infecciosa, síndrome de caída de la postura, encefalomielitis aviar, infecciones por adenovirus, Micoplasmosis aviar (M. gallisepticum y M. synoviae) y Tifosis aviar son enfermedades endémicas y de aparición esporádica en las aves de producción industrial, controladas con el uso de vacunas aprobadas por el SENASA pero de aplicación voluntaria por parte de los empresas productoras. Es importante destacar que la mejor herramienta para controlar y/o evitar el ingreso en una explotación avícola de agentes patógenos, es el cumplimiento de todas las medidas de bioseguridad y la aplicación de las buenas prácticas de producción y de manufactura. Asimismo, hay que hacer hincapié en el concepto que, en la patología aviar moderna, es hablar de “enfermedades multicausales” o multifactoriales: durante los meses de invierno aumentan los problemas de manejo de temperatura y ventilación en los galpones de crianza, se incrementa la concentración de amoníaco y por lo tanto, existe una situación de estrés ambiental que desencadena en cuadros respiratorios, donde los mismos virus vacunales pueden desencadenar una enfermedad multicausal. 25 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Módulo 1: Situación actual de la producción avícola: Enfermedades bajo programa. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource [201?] Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Coordinación Técnica de Capacitación y Desarrollo y Carrera del personal Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0105 Abstract A summary of the resource. El presente módulo trata sobre la situación actual de la producción avícola, las enfermedades bajo programa. Table Of Contents A list of subunits of the resource. 1. VETERINARIO PRIVADOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y BIENESTAR AVIAR 1.1. Objetivo de la capacitación 2. SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA 2.1. Situación de la producción de carne aviar mundial y en la República Argentina 2.2. Características de la producción de carne aviar en la República Argentina 2.3. Situación de la producción de huevo mundial y en la República Argentina 2.4. Características de la producción de huevo en la República Argentina 3. ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA 3.1. Influenza aviar 3.2. Enfermedad de Newcastle (ENC) 3.3. Salmonelosis 3.4. Micoplasmosis 3.5. Otras Enfermedades https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/28f7c7d0950a409bf5980d7d63d7ad81.pdf d5187891fb4743e58d77f75f9a3ed5bc PDF Text Text CURSO VETERINARIOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y BIENESTAR AVIAR MÓDULO 3 ▪ ACTUACIÓN ANTE LA SOSPECHA Y CONFIRMACIÓN DE ENFERMEDADES EXÓTICAS ▪ COMPARTIMENTACIÓN �ÍNDICE 1. Control y erradicación 1.1. Sospecha de enfermedades de denuncia obligatoria 1.2. Implementación del plan de contingencia ante la confirmación de enfermedades exóticas. 1.3 Sacrificio sanitario 1.3.1. Gasificación con dióxido de carbono (CO2) 1.3.2 Método de espuma de alta hermeticidad 1.3.3 Dislocación cervical 1.4 Eliminación de cadáveres 1.4.1 Enterramiento 1.4.2 Incineración 1.4.3 Compostaje 1.5 Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos avícolas 2. Sistema de Compartimentación 2 �1. CONTROL Y ERRADICACIÓN 1.1. Sospecha de enfermedades de denuncia obligatoria El Sistema de Registro y Notificación de Enfermedades Denunciables de los Animales es de aplicación obligatoria en todo el territorio de la República Argentina. El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), es la autoridad de aplicación del Sistema. La base normativa de la notificación de enfermedades está fundada en la Resolución Senasa Nº 153/2021, la cual tiene por objetivo adecuar a la normativa internacional vigente en cada materia sobre los sistemas de notificación de enfermedades animales, de vigilancia epidemiológica y seguimiento epidemiológico continuo, análisis de riesgo, emergencias sanitarias y un dispositivo reglamentario que contemple todos los aspectos de protección y lucha contra las enfermedades. Esta norma abroga las Resoluciones N° 234/1996 del entonces Servicio Nacional de Sanidad Animal, la Resolución Senasa N°422/2003 y la Resolución Senasa N° 540/2010. La Resolución Senasa 153/2021 agrupa todas aquellas enfermedades de denuncia obligatorias en tres grupos: GRUPO I NOTIFICABLES quedan incluidas aquellas enfermedades que deben notificarse de manera obligatoria cuya sospecha o confirmación debe ser informada dentro de las 24 hs, quedando comprendidas las enfermedades transfronterizas de los animales, aquellas enfermedades para las cuales la República Argentina posee estatus oficial de libre otorgado por la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE), las enfermedades consideradas exóticas en Argentina, y las enfermedades prevalentes que requieren intervención inmediata del Senasa para proteger la salud pública y animal, según lo establecido en el programa oficial de prevención, control y/o erradicación. En este grupo se encuentran incluidas: Influenza Aviar, Enfermedad de Newcastle, Clamidiosis en aves de corral y Laringotraqueitis infecciosa aviar. GRUPO II y III REPORTABLES en estos dos grupos quedan incluidas aquellas 3 �enfermedades cuya confirmación de casos deben ser reportadas de manera inmediata (brote epidémico) en menos de 24 hs. o bien deberán realizar un reporte con una frecuencia que determine el SENASA. En estos grupos se encuentran incluidas: GRUPO II: Micoplasmosis aviar (Mycoplasma gallisepticum y M. sinoviae), Pullorosis (S. pullorum), Salmonelas móviles (S. enteritidis, S. tiphymurium y S. heidelberg), Tifosis aviar (S. gallinarum). GRUPO III: Bronquitis infecciosa aviar, Bursitis infecciosa (Enfermedad de Gumboro). Esta norma también establece parámetros productivos que permitirán detectar precozmente posibles manifestaciones asociadas a signos clínicos relacionados con la enfermedad de Newcastle e Influenza Aviar, los cuales se fundan en las siguientes observaciones y criterios. Observaciones clínicas y patológicas en las aves. 1. Reducción de la ingesta de alimento y agua superior al 20%, sin justificar. 2. Reducción de la producción de huevos superior al 5% durante más de dos días, sin justificar. 3. Un índice de mortalidad semanal superior a un 3%, sin justificar. 4. Todo indicio clínico o lesión post-mortem que sugiera la presencia de IA /ENC. Observaciones epidemiológicas. 1. Si las aves han estado en contacto directo o indirecto con una explotación avícola que, se haya demostrado infectada con el virus de la influenza aviar /enfermedad de Newcastle 2. Si una explotación de cría o recría ha distribuido aves que se haya demostrado que estuvieran infectados con el virus de la influenza aviar/ enfermedad de Newcastle 3. Si existe la posibilidad de que las aves hayan estado expuestos al virus, por ejemplo, debido a la entrada en la explotación de personas, vehículos, etc. 4 �El Articulo 6 de la mencionada norma establece la Obligatoriedad de notificar para toda autoridad nacional, provincial o municipal, profesionales veterinarios, transportistas, entes sanitarios, personas responsables o encargadas de cualquier explotación ganadera, industrial o doméstica, universidades, organismos de investigación, zoológicos, parques o reservas naturales nacionales, provinciales o municipales y laboratorios diagnósticos estatales o privados, o cualquier persona humana o jurídica, la notificación y reporte ante el Senasa de la sospecha o confirmación de caso de todas las enfermedades, síndromes y eventos listados en la presente norma, en todas las especies de animales domésticos y de la fauna silvestre. La Resolución Senasa Nº 153/2021 establece los procedimientos de notificación frente a una sospecha incluyendo la protocolización y registro de su ocurrencia temporal y geográfica. El sistema se activa con la denuncia de un productor, veterinario privado, transportista, etc. Este puede realizarla en una Oficina Local, preferentemente de la jurisdicción en donde se encuentra el predio con el o los animales sospechosos, a través de la App “Notificaciones Senasa” que se encuentra disponible en Play Store o también se puede realizar enviando un correo a notificaciones@senasa.gob.ar . La denuncia de una presunción de enfermedad es registrada en la Oficina Local con una planilla de "Registro de enfermedad denunciable de los animales", llenando en forma completa los datos requeridos. Dentro de las DOCE (12) horas de registrada una denuncia, el Veterinario Local deberá proceder a cumplimentar la Intervención Sanitaria en el predio denunciado, protocolizando dicha visita de acuerdo al formato establecido en la Resolución Senasa Nº 153/2021. Según el art. 4º de la Ley N° 3959, ley fundamental para las políticas sanitarias de los animales: Todo propietario o persona que de cualquier manera tenga a su cargo el cuidado o asistencia de animales atacados por enfermedades contagiosas o sospechosos de tenerlas, está obligado a hacer 5 �inmediatamente la declaración del hecho a la autoridad local que los reglamentos sanitarios determinen. Asimismo, los veterinarios de la actividad privada que se encuentran en permanente contacto con el productor pecuario facilitando la difusión de los diferentes programas sanitarios, integran el Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica (Resolución Nº 234/96) que les establece también la responsabilidad ante el conocimiento de cualquier evento sanitario. Esta responsabilidad de productores y profesionales, personal de transporte u otros, es la inmediata denuncia ante el veterinario local del Senasa, quien debe actuar inmediatamente según procedimiento ya detallado. Pero también la responsabilidad de productores, veterinarios y otros, hasta que actúe el veterinario oficial, es la determinada en los siguientes artículos de la Ley mencionada: Art. 5. - Sin perjuicio de esta declaración y aún antes de que las autoridades hayan intervenido, desde el momento en que el propietario o su encargado hayan notado los síntomas primeros de la enfermedad contagiosa, deberán proceder al aislamiento del animal enfermo, separándolo de los sanos en cuanto sea posible. Art. 6. - La misma declaración y aislamiento son obligatorios de los animales muertos o que se supongan muertos de enfermedades contagiosas, debiendo sus despojos ser enterrados o destruidos en la forma que el Poder 6 �Ejecutivo determine en sus reglamentos. Art. 7. - En el momento en que la autoridad reciba la denuncia del caso o tenga conocimiento de la existencia de la enfermedad, procederá a asegurarse del cumplimiento de las medidas prescriptas en los artículos 5 y 6 proveyendo lo necesario a su ejecución, si no hubiesen sido cumplidas, y disponiendo, cuando sea posible, la visita y examen de los animales enfermos y de los muertos, en su caso, por el perito de que pueda disponer, para verificar la naturaleza de la enfermedad.” Específicamente para la Influenza Aviar, la Resolución SENASA N° 73/2010 y para la enfermedad de Newcastle la Resolución SENASA N° 683/96, adoptan la definición de la enfermedad acorde al Capítulo correspondiente de la OIE y obligan su notificación, vigilancia y eventual control y erradicación. Los Planes de Contingencia, respaldados por las resoluciones antes mencionadas, consideran: Frente a la aparición de signos clínicos y/o mortandad en aves que puedan ser atribuibles a influenza aviar de notificación obligatoria o enfermedad de Newcastle, el Senasa implementará rápidamente acciones tendientes a confirmar o descartar la presencia de activad viral. Entre estas actividades se incluyen: • Interdicción del predio o establecimiento bajo sospecha y de los establecimientos vecinos, si por razones geográficas o de contacto se justificara. • Censado de todas las aves del establecimiento bajo sospecha (vivas, muertas y enfermas) y aislamiento de las mismas. 7 �• Toma de muestras y envío al laboratorio oficial. La toma de muestras se realizará por parte de los Veterinarios del Senasa, teniendo en consideración los siguientes criterios: - Preferentemente extraer muestras de SUERO E HISOPADOS (traqueal y/o cloacal) de aves enfermas o aves recientemente muertas (o moribundas y sacrificadas en forma benéfica), en un número total de 20 (o de la totalidad si la cantidad de aves es menor a 20). - De hallar aves recientemente muertas (menos de 6 horas de acuerdo a las condiciones climáticas) o moribundas (y sacrificadas por el veterinario de Senasa), podrá enviarse el ave entera en número mínimo de 3 a 5 aves,en bolsas de polietileno que no pierdan su contenido. - Se recomienda no realizar necropsias. En caso de realizarla el envío de órganos debe ser en bolsa de polietileno estéril o recipiente estéril: tráquea, pulmón, bazo, hígado e intestino (tonsilas cecales). Los intestinos se deben acondicionar en forma separada al resto de los órganos. - Aves con signos nerviosos: encéfalo o directamente la cabeza del ave. - En todos los casos, las muestras deberán ser acompañadas del protocolo de sospecha de enfermedad denunciable y de un informe de la investigación realizada en terreno, así como de las medidas de control a las que fueron sometidos los animales afectados durante dicha investigación (cuarentena, prohibición del movimiento, disposición de cadáveres, etc.). • Prohibición del ingreso y salida de las aves que se encuentran en el lugar. 8 �• Restricción de movimientos de vehículos, implementos, alimentos, huevos, subproductos o desechos tales como cama de pollo o guano, aves muertas, y todo material que en forma potencial sea capaz de transmitir la enfermedad, de manera de evitar la diseminación de la misma. • Desinfección de vehículos a la entrada y salida de los mismos. • Adecuada manipulación y eliminación diaria en el predio de aves muertas. • Incremento de las medidas de bioseguridad en general y de las medidas básicas de higiene personal tales como lavado de manos, cambio de ropa y desinfección del calzado. • El Senasa mantendrá, integrará y operará el Dispositivo Nacional de Emergencia de Sanidad Animal establecido por Resolución N° 779 del 26 de julio de 1999 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA, y expedirá las normas oficiales que establezcan las medidas de seguridad que deberán aplicarse al caso particular en el que se diagnostique la presencia de una enfermedad o plaga exótica de los animales. Estas medidas se cumplirán hasta que se garantice la ausencia de enfermedad por métodos clínicos y de diagnóstico de laboratorio. 9 �RESUMEN DE LA ACTUACIÓN ANTE LA SOSPECHA 10 �1.2. Implementación del plan de contingencia ante la confirmación de enfermedades exóticas. Si se confirmara por las pruebas de laboratorio un foco de influenza aviar de notificación obligatoria o enfermedad de Newcastle patógeno, se implementarán procedimientos destinados al control y rápida erradicación de la enfermedad, para lo cual se combinan diferentes estrategias, dependiendo a su vez de la patogenicidad de la cepa viral, las mismas incluyen: • Se activa el SISTEMA NACIONAL DE EMERGENCIAS SANITARIAS (SINAESA) Res. SENASA N° 779/99, lo que implica la reunión de sus integrantes, la comunicación interna y externa del alerta a fin de que se extremen las medidas de vigilancia en todo el país y que se implementen las medidas sanitarias correspondientes. • Se realizará una delimitación de tres zonas: Zona de foco: comprende el establecimiento afectado (puede involucrar más de uno). Zona de perifoco: de un radio mínimo de TRES (3) kilómetros, alrededor de la zona de foco. Zona de vigilancia: de un radio mínimo de SIETE (7) kilómetros, alrededor de la zona de perifoco. 11 �A continuación se describen las medidas que se deben aplicar según la zona: En la« zona de foco» se aplicarán las siguientes medidas: • Continúa la interdicción del predio, establecido durante la sospecha de la enfermedad. • Conformación de un equipo de trabajo encargado de realizar las tareas de la vigilancia epidemiológica. • Sacrificio sanitario in situ de todas la aves del establecimiento • Destrucción y enterramiento de cadáveres, huevos, restos de alimentos, cama usada, guano, etc. • Limpieza y desinfección de las instalaciones y sus alrededores, implementos, vehículos de transporte y de todo material que pueda estar contaminado utilizando para tal fin técnicas y desinfectantes autorizados oficialmente. 12 �• Vacío Sanitario de un período de espera o vacío sanitario de 21 a 30 días por lo menos. • Centinelización se instalarán en los galpones o predios lavados y desinfectados, aves centinelas. • Investigación epidemiológica: el Senasa garantizará que se realice la investigación epidemiológica correspondiente a fin de establecer el origen de la infección inicial y detectar una posible difusión de la enfermedad, indagando, el tiempo transcurrido desde el ingreso del agente etiológico hasta la aparición de los signos, los posibles contactos establecidos entre las aves afectadas y otras y/o personas, movimientos registrados en los establecimiento. Información a recabar con el fin de extremar las medidas de control y prevenir la difusión de la enfermedad. • Vacunación: el Senasa evaluará la necesidad de implementar un plan de vacunación de las aves de corral u otras, en explotaciones o locales que se encuentren o no en las zonas afectadas. De adoptarse como medida de control, la vacunación contra influenza aviar, la misma se realizará con las vacunas autorizadas por el Senasa y exclusivamente bajo la supervisión del mismo, utilizando registros de vacunación y documentación mediante actas. • Comunicación a la OIE y a los países de la región: la Dirección Nacional de Sanidad Animal del Senasa efectuará las comunicaciones correspondientes dentro de los plazos determinados a la Organización Mundial de Sanidad Animal, a todos los países y particularmente a los estados miembros del Mercosur y a la República de Chile, las novedades registradas en la República Argentina referentes a la influenza aviar de declaración obligatoria y a la evolución de las mismas mediante un informe técnico completo y detallado sobre los hechos registrados y las medidas implementadas. En la «zona de perifoco» se aplicarán las siguientes medidas: 13 �• Localización y censado de todas las explotaciones avícolas, incluidos los predios de aves de traspatio. • Inspección clínica de las aves y vigilancia epidemiológica de todos los establecimientos/predios de aves de la zona. • Desinfección adecuada de todas las entradas y salidas de esos lugares. • Los movimientos de aves (para faena o cría) y huevos (para consumo o incubación) se realizarán únicamente bajo la autorización del Senasa, por lo que se establecerá un control de tránsito dentro de la zona. • Se deberá proceder a faena controlada, con la correspondiente identificación de la carne procedente de las mismas. • El transporte de aves de un día o huevos para incubación, se realizarán de preferencia a establecimientos dentro de la zona de perifoco o de vigilancia o a un establecimiento con control oficial. • El transporte de huevos para consumo, se realizarán preferiblemente a un establecimiento elaborador de ovoproductos o deberán ser identificados para su comercialización previa desinfección de los mismos. • En caso de ser necesario se implementará el sacrificio de las aves. • Estará prohibida la realización de ferias, exposiciones o mercados en los cuales se concentren aves domésticas u otras. • No habiéndose registrado otras novedades, las medidas en la «zona de perifoco» se mantendrán durante 21 días como mínimo a partir del día en que finalizó la desinfección del establecimiento afectado. Luego de este período la zona de foco pasará a formar parte de la «zona de vigilancia». En la «zona de vigilancia» se dispondrán las siguientes medidas: • Localización y censado de todas las explotaciones avícolas o locales en los que se encuentren aves. 14 �• Inspección clínica y vigilancia epidemiológica en determinados establecimientos/predios de aves de la zona. • Control de los desplazamientos y traslados dentro y fuera de la zona. • En lo referente a las aves que se trasladen a faena, y a los huevos para incubación, podrán ser trasladados con autorización del Senasa, con identificación de las carnes y desinfección de los huevos, previo al traslado. • Los huevos para consumo podrán ser transportados a un establecimiento elaborador de ovoproductos o deberán ser identificados para su comercialización previa desinfección de los mismos. • Estará prohibida la realización de ferias, exposiciones o mercados en los cuales se concentren aves domésticas u otras. • De no haberse registrado novedades, las medidas adoptadas en la «zona de vigilancia», se mantendrán durante un período de 30 días como mínimo, a partir de haber se realizado la desinfección en el establecimiento infectado. 1.3 Sacrificio sanitario La legislación del Senasa establece que la erradicación de la influenza aviar de declaración obligatoria debe realizarse mediante el sacrificio sanitario obligatorio de las aves enfermas o sospechosas y sus contactos, y su posterior eliminación, con el fin de detener la replicación del virus y evitar la difusión de la enfermedad. Dado que no siempre la enfermedad cursa con alta mortalidad, esta medida deberá aceptarse como imprescindible para controlar la diseminación del virus en el caso de presentación de un brote de influenza aviar de baja patogenicidad de declaración obligatoria (H5/H7). Los criterios principales, para el sacrificio, en términos de bienestar animal, son que el método sea indoloro, consiga una rápida inconciencia y muerte, 15 �requiera una mínima inmovilización, evite la excitación, sea apropiado para la especie, sea irreversible y minimice el estrés animal. El método de sacrificio debe garantizar la seguridad de los operarios, así como de otras especies animales que se encuentren en la explotación y no debe tener consecuencias adversas sobre el medio ambiente. El sacrificio sanitario se realizará lo más rápido posible (24 – 48 hs.) luego de la confirmación de la enfermedad y dentro de la misma explotación infectada o lo más cerca posible. Métodos para el sacrificio de aves El Senasa determinará para cada caso los procedimientos de sacrificio que correspondan aplicar, pudiéndose implementar también la matanza por faena sanitaria, según las condiciones prácticas que se detecten, el número y especies de animales afectados y la patogenicidad del subtipo viral encontrado. Por lo tanto no se considera definitiva la lista de los procedimientos posibles enumerados a continuación. Son factibles los siguientes métodos químicos y físicos para sacrificio de aves: 1. Gasificación con dióxido de carbono (CO2) 2. Sistema de espuma de alta hermeticidad. 3. Dislocación cervical. 4. Electrocución. 5. Gasificación con nitrógeno o argón. 6. Gasificación con mezclas de gases. 7. Agentes inyectables. 8. Gasificación con monóxido de carbono (CO). 9. Gasificación con ácido cianhídrico (HCN). Si bien se permiten varios sistemas, los aconsejados y más convenientes son la utilización de dióxido de carbono y el sistema de espuma de alta hermeticidad, considerándolos humanitarios, prácticos y eficientes. 1.3.1 Gasificación con dióxido de carbono (CO2) 16 �Siempre que sea posible se utilizará, preferentemente, el sacrificio de las aves mediante gasificación con CO2. Este método de eutanasia para aves es muy rápido y eficaz, fácil de utilizar y con riesgos mínimos para los operarios. El CO2 es un gas incoloro, no inflamable, no explosivo y que no genera efectos adversos al medio ambiente. A concentraciones superiores al 60% actúa como agente anestésico y produce depresión del sistema nervioso central con rápida pérdida de la conciencia y muerte. La bibliografía recomienda situar las aves en una atmósfera de CO2 mayor al 70%, ya que pierden la conciencia muy rápido debido al efecto narcótico del gas. Sin embargo en condiciones prácticas parece ser suficiente la exposición a una concentración mínima del 55% al 60% del volumen del compartimiento. La concentración incidirá en la velocidad de muerte de las aves. El CO2 se vende en tubos en estado líquido (-72°C), por lo cual requiere válvula especial de liberación, con resistencia eléctrica. El procedimiento consiste en crear en el piso una cámara de fumigación con láminas de polietileno (6mt x 40mt = 240mt2 = 3200 aves) y, en caso de aves a jaula, las mismas pueden ser sacrificadas ubicándolas en contenedores cerrados. Se debe tener la precaución de mantener su concentración constante por al menos 3 minutos, luego de 20 minutos de exposición al gas hay que asegurarse que los animales estén muertos. 17 �1.3.2 Método de espuma de alta hermeticidad. Es un método eficiente, que hace posible un sacrificio sanitario rápido y seguro para la erradicación de enfermedades, permite mejorar el bienestar animal durante el proceso de sacrificio sanitario y disminuye el riesgo potencial de exposición humana, debido que se requieren de 2 a 3 operarios. El proceso completo de despoblación toma entre dos y tres horas. Necesita grandes cantidades de agua para su utilización. 18 �Emplea una tecnología que combina el agua y espuma con burbujas de CO2. La misma es efectiva solo para aves criadas en el piso y ha sido probada como un método de despoblación para: pollos, codorniz, patos y pavos, existiendo diferencias en el tiempo de deceso entre especies, siendo de aproximadamente 3 a 5 minutos en pollos y 10 minutos para patos y pavos. Las espumas a base de agua utilizadas para la despoblación deben ser de fácil disponibilidad, biodegradable, compatible con los métodos de eliminación de canales y de ningún riesgo para la salud humana. La aplicación debe realizarse de una manera que perturbe a las aves lo menos posible y evite el amontonamiento o el hacinamiento. La espuma se aplica al 1%, por lo tanto, si para 10 m2 se necesitan 160 a 180 litros de agua se utilizará de 1.6 a 1.8 litros espuma. Se debe considerar que para sacrificar pavos se debe utilizar el doble, debido a la altura a la que debe alcanzar la espuma. Los concentrados de espuma pueden usarse con agua potable, dura o salada, pudiendo haber diferencias de rendimiento, siendo el agua potable la recomendada. Los sistemas de suministro de espuma deben producir espuma que tenga la consistencia y densidad apropiadas para ocluir completamente la vía aérea superior de las aves domésticas; de modo que cuando se sumerge en la espuma, la oclusión de las vías respiratorias se produce de manera rápida y abrumadora, de modo que las aves no luchan indebidamente. En este momento, el tamaño de burbuja deseado de la espuma basada en agua usada para la despoblación de aves de corral no debe exceder 1,58 cm y preferiblemente debería ser menor. En sólo 15 minutos, la máquina elimina 15.000 pollos alojados en un galpón de 100 metros de largo por 12 de ancho. El equipo de sacrificio es conducido a la puerta del galpón. Se comienza a rociar espuma densa con altura ajustable. Cabe aclarar que no mata a las aves por contacto, no ahoga las aves y no desinfecta las aves. Produce un bloqueo del aire, por tal motivo la cabeza de las aves debe estar cubierta 19 �hasta la muerte. Para que el sistema funcione, debe haber una cobertura de 15 a 30 cm de espuma sobre las cabezas de las aves. La espuma a base de agua debe demostrar un tiempo de persistencia de no menos de 30 minutos (independientemente de las condiciones climáticas o la exposición solar) para asegurar que todas las aves han sido sacrificadas correctamente. En términos de tiempo hasta la muerte y porcentaje total de la población muerta cuando la espuma a base de agua es utilizado en cualquier tipo o edad de aves de corral, el sistema de espuma utilizado debe dar como resultado la muerte del 95% de las aves dentro de los 7 minutos o menos después de que las aves hayan sido completamente sumergidas en la espuma. 1.3.3 Dislocación cervical Para la eutanasia de un número reducido de aves puede realizarse el sacrificio mediante la dislocación del cuello (utilizando pinzas de Burdizzo, tijeras o las manos). La pinza de Burdizzo tiene particular utilidad para el sacrificio de aves de corral con cuello fuerte (patos, gansos, etc.). La técnica consiste en separar el cráneo y el cerebro de la médula espinal aplicando una presión a la base posterior del cráneo. 1.4 Eliminación de cadáveres Existen varios métodos para eliminar las aves muertas, desechos y otros desperdicios. Preferentemente se debe proceder al enterramiento en el mismo establecimiento u otro lugar adecuado para este fin, aprobado por el Senasa. Cuando no es posible o conveniente el enterramiento, la mejor opción es elaborar compostas o bien la incineración. Los huevos u otro material orgánico contaminante (guano, cama de galpón, restos de alimentos, productos, basura, etc.) deberán recogerse con cuidado a fin de que se elimine junto con las canales. 20 �1.4.1 El enterramiento Es el procedimiento más adecuado para la eliminación de animales y otros elementos de riesgo, ya que generalmente es cómodo, económico, rápido y seguro. 1.4.2 Incineración La incineración es el método menos recomendable para la eliminación de una gran cantidad de aves, principalmente por su elevado costo y por el tiempo que se requiere para hacerlos cenizas. 1.4.3 Compostaje El compostaje es un proceso de descomposición controlada de la materia orgánica. La descomposición ocurre en un ambiente aerobio en presencia de determinadas condiciones de pH, temperatura y humedad, en la cual microorganismos mesófilos y termófilos elevan la temperatura por un tiempo determinado permitiendo así la inactivación viral. 1.5 Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos avícolas La cama, las deyecciones, los huevos u otros deberán tratarse mediante un método idóneo para eliminar el virus. Dicho método deberá incluir una de las siguientes manipulaciones: • Se enterrarán con los cadáveres a una profundidad que impida el acceso a parásitos, aves silvestres u otros animales. • Se incinerarán o tratarán con vapor de agua a temperatura de 70 °C o mayor. • Se amontonarán y humidificarán (si resultara necesario para facilitar la fermentación), se cubrirán para mantener el calor de forma que se alcance una temperatura de fermentación mínima de 20°C y se mantendrán cubiertos durante 42 días. • En el caso de haber utilizado como método de sacrificio la espuma, la cama o guano debe enterrarse en forma separada de las aves sacrificadas. 21 �2. Sistema de Compartimentación La eventual presentación de enfermedades tales como la Influenza Aviar y enfermedad de Newcastle en nuestro país ocasionaría graves consecuencias sanitarias y económicas incluyendo un elevado número de muertes de aves por la enfermedad y por sacrifico, generando dificultades en toda la cadena productiva aviar, y restricciones a las exportaciones de productos avícolas. El sistema de compartimentación se rige bajo el marco de la normativa Resolución Senasa N°484/ 2017. La compartimentación son los procedimientos que utiliza un país para definir en su territorio, subpoblaciones de animales de estatus sanitario distintos a efectos del control de enfermedades o de comercio internacional. Es un procedimiento aceptado y recomendado por la OIE para facilitar el comercio, para mejorar la sanidad de los animales a través de medidas de bioseguridad eficaces, facilitando el control de enfermedades ante su introducción y para reducir la probabilidad y el impacto de los focos de enfermedades como la influenza aviar y la enfermedad de Newcastle. Los compartimentos se definen como una subpoblación de animales definida esencialmente por métodos de gestión y explotación relacionados con la bioseguridad (Código Sanitario de los Animales Terrestres, Capítulo 4.3). Se componen de explotaciones y unidades productivas que forman parte de un compartimento, tales como plantas de incubación, planta de alimento, granjas de reproductoras o cualquier otra infraestructura asociada. Las empresas avícolas que deseen inscribirse como “Compartimento libre de influenza aviar y enfermedad de Newcastle” deben presentar ante la Dirección Nacional de Sanidad Animal, la siguiente documentación: 22 �a) Solicitud de inscripción: cuyo contenido se aprueba como Anexo I de la citada Resolución. b) Manual de Buenas Prácticas de Manejo elaborado conforme con lo establecido en el Anexo II, de la citada Resolución. Las empresas avícolas que se encuentren interesadas en obtener la certificación, deben estar habilitados de conformidad con lo dispuesto en la Resolución Senasa Nº1699/2019 o inscriptos en los registros del Senasa, según corresponda de acuerdo a la explotación productiva que realicen, y deben cumplir con los planes sanitarios requeridos por este servicio Una vez analizada y aprobada la documentación remitida por la firma, el Programa de Sanidad Aviar, de la Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal dependiente de la Dirección Nacional de Sanidad Animal otorgará el “Certificado de Compartimento libre de Influenza aviar y enfermedad de Newcastle” . 23 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Módulo 3: Actuación ante la sospecha y confirmación de enfermedades exóticas. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria. Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource [201?] Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Coordinación Técnica de Capacitación y Desarrollo y Carrera del personal Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0107 Abstract A summary of the resource. El Sistema de Registro y Notificación de Enfermedades Denunciables de los Animales es de aplicación obligatoria en todo el territorio de la República Argentina. El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), es la autoridad de aplicación del Sistema. La base normativa de la notificación de enfermedades está fundada en la Resolución Senasa Nº 153/2021, la cual tiene por objetivo adecuar a la normativa internacional vigente en cada materia sobre los sistemas de notificación de enfermedades animales, de vigilancia epidemiológica y seguimiento epidemiológico continuo, análisis de riesgo, emergencias sanitarias y un dispositivo reglamentario que contemple todos los aspectos de protección y lucha contra las enfermedades. Esta norma abroga las Resoluciones N° 234/1996 del entonces Servicio Nacional de Sanidad Animal, la Resolución Senasa N°422/2003 y la Resolución Senasa N° 540/2010. Table Of Contents A list of subunits of the resource. 1. Control y erradicación 1.1. Sospecha de enfermedades de denuncia obligatoria 1.2. Implementación del plan de contingencia ante la confirmación de enfermedades exóticas. 1.3 Sacrificio sanitario 1.3.1. Gasificación con dióxido de carbono (CO2) 1.3.2 Método de espuma de alta hermeticidad 1.3.3 Dislocación cervical 1.4 Eliminación de cadáveres 1.4.1 Enterramiento 1.4.2 Incineración 1.4.3 Compostaje 1.5 Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos avícolas 2. Sistema de Compartimentación Bienestar Animal Veterinarios https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/24a34852e5386ac8454d836c82db6140.pdf b52f0a57929d7b58f9aedb34ab6609cc PDF Text Text MANUAL DEL USUARIO SISTEMA DE PESCA �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Página 1 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Tabla de contenido INTRODUCCIÓN.............................................................................................................................................. 3 1.- Descripción del proceso de carga de Anexos............................................................................. 4 2.- Ingreso al Sistema de Pesca ............................................................................................................ 6 3.- Menú principal........................................................................................................................................ 8 3.1 Carga de Datos ........................................................................................................................................ 8 3.1.1 Anexo I ....................................................................................................................................... 8 3.1.2 Anexo II ................................................................................................................................... 10 3.1.3 Anexo III .................................................................................................................................. 14 3.1.4 Anexo IV .................................................................................................................................. 16 3.1.5 Anexo V .................................................................................................................................... 19 3.1.6 Cierre de Movimientos ........................................................................................................ 21 3.1.7 Certificados Anulados ......................................................................................................... 24 3.1.8 Certificados Complementarios ......................................................................................... 25 3.1.9 Modificación o Eliminación de Anexos .......................................................................... 26 3.2 Carga de Archivos ........................................................................................................................ 27 3.2.1 Mis Archivos Importados ................................................................................................... 27 3.2.2 Cargar Archivo .................................................................................................................... 27 3.2.3 Info para Importación ...................................................................................................... 28 3.3 Impresiones ..................................................................................................................................... 30 3.1.1 Impresión de Anexo .......................................................................................................... 30 3.3.2 Impresión de Estadística Mensual ............................................................................... 30 3.4 Establecimientos ........................................................................................................................... 31 3.5 Ayuda ................................................................................................................................................ 31 APÉNDICE ...................................................................................................................................................... 32 Página 2 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 INTRODUCCIÓN El Sistema de Pesca se creó para llevar el registro de Ingreso, Egreso y Stock de productos de la pesca en establecimientos terrestres. El mencionado Sistema se encuentra a disposición del Servicio de Inspección Veterinaria destacado en los establecimientos de pesca, a través del usuario habilitado por SENASA para cada Inspector. El acceso a la información registrada en el Sistema de Pesca se encuentra online, ya que el Sistema se desarrolló para ser utilizado en cualquier lugar donde se cuente con acceso a Internet. El Sistema de Pesca se encuentra en la Intranet del SENASA, como parte de las aplicaciones provistas por el organismo y con el fin de integrar la información que el sistema provea con otras áreas o dependencias y sus respectivas aplicaciones. Página 3 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 1.- Descripción del proceso de carga de Anexos Los Anexos pueden agruparse en dos grupos: aquéllos que afectan al stock, y aquéllos que NO afectan al stock.   Anexos I y II: NO afectan al stock.  Anexos III, IV y V: SI afectan al stock. El siguiente diagrama explica la operatoria: Notar que los ingresos a stock son por Anexo V (ingreso de producción, ingreso de otros establecimientos, devoluciones), cuando se tilda la opción “Enviar ingreso directamente a stock -Anexo V-‟, como el texto lo indica, se envía cada entrada por Anexo V directamente al stock, de esta manera el Anexo II marcará aquellos productos enviados al stock. De no tildar esta opción, el ingreso no se reflejará en el stock. Los egresos son por Anexo III, Anexo IV y Anexo V (proceso, egresos varios – decomisos, robos, etc.-). De este modo, si se registra un ingreso, de por ejemplo, 100 kg. de filete de merluza por Anexo II, tildando la opción “Enviar ingreso directamente a stock – Anexo V”, este registro afectara en el stock. De no tildar esta opción, luego se debe registrar el ingreso por Anexo V para actualizar el stock. Siguiendo con el mismo ejemplo esta opción, podría aplicarse a situaciones donde no siempre la correspondencia es exactamente igual; puede ocurrir que estos 100 kg. ingresen directamente al stock de productos terminados sin más, aunque también podría desarrollarse algún proceso debiéndose registrar una parte un día y otra al día siguiente, etc. Página 4 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Ejemplo: Detallaremos ahora cómo se procede para registrar un proceso interno. Imaginemos que ingresan desde otra planta 1000 kg de calamar entero congelado, para depósito para posterior expedición RUBRO XXXIII (Deposito Frigorífico de Pescado y Mariscos Frescos y Congelados). La secuencia seria; 1. Ingreso por Anexo II como RUBRO XXXIII. 2. En el Anexo II tildar la opción “Enviar ingreso directamente a stock Anexo V-‟ para que se actualice el stock de productos terminados. A partir de este momento la mercancía es parte del stock. De no realizarse proceso alguno, es posible registrar la salida por Anexo III o IV, desde el RUBRO XXXIII. Si fuera necesario registrar un proceso, debemos seguir la siguiente secuencia: a. Sale del stock la cantidad de calamar que vamos a procesar, en nuestro ejemplo 500 kg. Esto se realiza desde la pantalla del Anexo V, con el input “egreso para procesamiento interno”, RUBRO XXXIII b. Una vez concluido el proceso, debemos registrar el ingreso desde el RUBRO XLVI (Procesamiento de Pescado y Mariscos Frescos y Congelados) por Anexo II. Como tipo de amparo debemos optar por “remito interno”, y como establecimiento de origen será el propio. c. En el Anexo II tildar la opción “Enviar ingreso directamente a stock Anexo V-‟. Para finalizar el tema stock, podemos expresar al stock de un producto específico con la siguiente fórmula:    Stock = Ingresos – Egresos   Ingresos = Ingresos de producción + Ingresos de otros establecimientos + Devoluciones + (ingresos opcionales desde + Anexo I y Anexo II)   Egresos = Anexo III + Anexo IV + Egresos varios Página 5 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 2.- Ingreso al Sistema de Pesca La operación sobre el Sistema de Pesca se realiza por medio de un navegador web común, como por ejemplo Google Chrome, Internet Explorer o Mozilla Firefox (se recomienda utilizar este último). El ingreso al Sistema de Pesca se realiza a través del sitio de AFIP, Sección “Ingreso con clave fiscal‟ (https://auth.afip.gov.ar/contribuyente/). Es necesario tener clave fiscal para poder ingresar. Para poder adherir al Sistema de Pesca. La idea es la siguiente: _ El apoderado de la firma debe ingresar con clave fiscal a AFIP y adherir al Sistema de Pesca. En este momento, debe ser capaz de operar sobre el sistema tal como venía operando cualquier usuario externo que se logueaba directamente en el Sistema de Pesca (esto es, antes de que se implementara el acceso desde AFIP). _ Normalmente, el apoderado (representado) deseará delegar la carga de datos en una o más personas (representantes). Para ello, debe delegar el servicio a cada uno tal como se explica en el instructivo „Cómo adherir, delegar o aceptar un servicio‟. _ El representante debe aceptar el servicio tal como se explica en el instructivo ya mencionado. Es obligatorio que tanto el REPRESENTADO (el que hace la designación) como el REPRESENTANTE (el que acepta la designación) adhieran al servicio de Sistema Pesca. En caso de que alguno de los usuarios no figurase en el Sistema de Pesca, verificar que la adhesión a dicho servicio se haya realizado correctamente. Página 6 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Servicio de administración de firmas: Además del servicio “Sistema Pesca‟, existe disponible en AFIP otro servicio relacionado llamado “Sistema de Pesca Adam‟ que permite administrar las firmas y sus representantes. Por defecto, cuando el apoderado de la firma o representado delega el servicio “Sistema de Pesca‟ en algún representante, éste tiene acceso a todos los establecimientos pesqueros de la firma. Si existiere intención de restringir los establecimientos operables por un representante específico, el representado debe adherir a este servicio, de manera similar al servicio anterior. Sesiones: Si no se realizan operaciones desde el inicio de sesión, el sistema cancela la sesión automáticamente pasado cierto tiempo. Si temporalmente se deja de usar el sistema, se recomienda cerrar sesión y volver a ingresar al Sistema. Una vez que haya ingresado al Sistema de Pesca, debe indicar el Establecimiento del cual desea actualizar la información; para ello presione el botón que está a la derecha del nombre del Establecimiento para acceder al Menú Principal. Cerrar Sesión: Permite cerrar la sesión y salir del Sistema de Pesca. Se encuentra en el encabezado de la pantalla, en el sector derecho. Página 7 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 3.- Menú principal Elementos que componen el Menú Principal:   En la barra principal del menú podemos ver, a la derecha, los datos de la cuenta de usuario. Estos son el nombre de usuario y el Establecimiento para el cual se está operando en esta sesión.  En la izquierda de la barra principal se encuentran los submenúes que se detallan en las páginas siguientes. 3.1 Carga de Datos Aquéllas plantas que no tenga un sistema propio deben ingresar manualmente la información. Acceder al menú Carga de datos, allí encontrará las opciones para la carga de datos de los cinco Anexos, Certificados anulados y Certificados complementarios. 3.1.1 Anexo I El Anexo I permite registrar la información correspondiente a los ingresos de materia prima provenientes del barco fresquero de pesca marítima, pesca continental, fluvial, acuicultura, pesca, captura o recolección de pescadores artesanales. Página 8 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Debe ingresar a la opción Anexo I, Alta, del menú Carga de datos y completar la información allí solicitada.         (*) Nro. Remito comercial: identificación del remito que acompaña la mercadería.  (*) Fecha de Ingreso: podrá ingresarse manualmente con el formato dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario.  (*) Rubro: seleccionar uno de la lista, de acuerdo a los que correspondan al establecimiento.  Patente Transporte: identificación del vehículo utilizado como transporte.  Puerto de Desembarco: seleccionar uno de la lista.  (*) Barco: indicar Nombre, Nro. Matrícula o Nro. Registro SENASA.  El Detalle debe tener al menos un elemento. Cada elemento del detalle está formado por: o Especie: seleccionar uno de la lista (Abadejo, Bagre, Salmón, etc.). o Producto: seleccionar uno de la lista (entero. Eviscerado, etc.). o Cantidad de Cajones: indicar la cantidad de cajones a ingresar. o Kg. por cajón: indicar la capacidad de cada cajón. o Peso Neto: se calculará automáticamente de acuerdo a la cantidad de cajones y kg. por cajón ingresados. o Lote: texto que identifica el ítem del detalle. Nota: Los campos indicados con (*) a la izquierda de la descripción de los campos, indican que los mismos son obligatorios. Se pueden agregar todos los renglones de detalle necesarios. Al finalizar, presionar el botón “Registrar”. Si desea continuar generando certificados, clickear en el input “Número de amparo‟. Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia su texto por “EXITO‟. Luego de ingresar el peso neto, el renglón del detalle se agrega a la lista en la parte inferior de la pantalla. En caso de error, se puede eliminar presionando el botón “Eliminar” a la derecha del renglón. En este Anexo, el origen del producto puede ser: Barco, Establecimiento piscicultor o Río. Página 9 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 En los casos en que el origen es barco o establecimiento piscicultor, se debe seleccionar en el listado de barcos el ítem correspondiente. En este listado se encuentran tanto barcos como establecimientos piscicultores. En la casilla a la izquierda del listado se pueden ingresar el número de matrícula del barco o el número de Renspa del establecimiento piscicultor como atajo. En el caso de pesca de río, se debe seleccionar en el listado de barcos la opción “PESCA DE RÍO”, cuyo atajo es “rio‟. Al seleccionarla, se habilita el listado de puertos, que normalmente está deshabilitado, para elegir el puerto de río correspondiente. El puerto se ingresa únicamente cuando se trata de pesca de río. En pesca de mar sólo se ingresa el barco. IMPORTANTE: En caso de tildar la opción „Enviar ingreso directamente a stock -Anexo V-‟, como el texto indica, se envía cada entrada en el detalle al Anexo V. El Anexo I marca aquellos productos enviados al stock. 3.1.2 Anexo II El Anexo II permite registrar la información correspondiente a los ingresos de productos provenientes de plantas habilitadas. Debe ingresar a la opción Anexo II, Alta, del menú Carga de datos y completar la información allí solicitada. En esta pantalla se ingresa un certificado junto con su detalle.     (*) Fecha de ingreso: podrá ingresarse manualmente con el formato dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario.  (*) Tipo de amparo: seleccionar uno de la lista (CE, Remito, Anexo, etc.).  (*) Número de amparo: se debe ingresar un texto. Página 10 de 35 �SENASA – Sistema Pesca       Manual Versión 2.1.0 El Tipo y Número de Amparo debe corresponderse con Certificado Sanitario válido, entregado por SENASA. En caso de no serlo, el Sistema mostrará un mensaje que indica que el Certificado no es válido y le impedirá continuar registrando el Anexo hasta que ingrese un Tipo y Número válido.  Transporte: se debe ingresar un texto.  (*) Tipo de origen: seleccionar una opción de la lista (Planta, Importación). La opción seleccionada determina el próximo dato a ingresar. Si el tipo seleccionado es „planta‟, se selecciona de la lista de plantas. Si el tipo seleccionado es „importación‟, se selecciona un país y se ingresa el Establecimiento.  (*) Rubro: seleccionar uno de la lista, de acuerdo a los que correspondan al Establecimiento.  Establecimiento de origen: se debe seleccionar uno de la lista. Si ya se conoce el número oficial, se puede ingresar a la izquierda de la lista; al presionar la tecla Enter se selecciona automáticamente en la lista.  País de origen: se selecciona uno de la lista.  Establecimiento extranjero de origen: se ingresa un texto.  El Detalle debe tener al menos un elemento. Cada elemento del detalle está formado por: o Especie: se selecciona de una lista. Si ya se conoce el código se puede seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento. o Producto: se selecciona de una lista. . Si ya se conoce el código se puede seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento. o Temperatura: se selecciona de una lista. o Número de cajones: se ingresa un número entero positivo. o Kgs. Cajón: se ingresa un número real positivo. Es opcional, sirve para calcular el peso neto. En caso de ingresarlo, el peso neto se calcula automáticamente a partir de este campo y el nro. de cajones. o Peso neto: se ingresa un número real positivo. o Lote: texto que identifica el ítem del detalle. Nota: Los campos indicados con (*) a la izquierda del label, son campos obligatorios. Se pueden agregar todos los renglones de detalle necesarios. Al finalizar, presionar el botón “Registrar”. Si desea continuar generando certificados, clickear en el input “Número de amparo‟. Página 11 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia su texto por “EXITO‟. Luego de ingresar el peso neto, el renglón del detalle se agrega a la lista en la parte inferior de la pantalla. En caso de error, se puede eliminar presionando el botón “Eliminar” a la derecha del renglón. IMPORTANTE: En caso de tildar la opción “Enviar ingreso directamente a stock -Anexo V-“, como el texto indica, se envía cada entrada en el detalle al Anexo V. El Anexo II marcará aquellos productos enviados al stock. 3.1.2.1 Recepción de Anexos Esta operación permite registrar la información correspondiente a los ingresos de productos provenientes de plantas habilitadas, que fueron registrados como anexos de salida desde la planta de origen. Es decir, si una planta A registra un anexo III de salida, con destino a un establecimiento B, este último podrá visualizar esta información desde esta recepción. Si la información es correcta, podrá confirmar y generar automáticamente un anexo II, previamente ingresando algunos datos, como la fecha de ingreso de la mercadería. Caso contrario podrá rechazar el ingreso. Debe ingresar a la opción Anexo II, Recepción, del menú Carga de datos, en la misma se visualiza los últimos ingresos de mercadería. Para ver el detalle de la información del anexo recibido, y posterior aprobación o rechazo se deber seleccionar en el icono de aprobar / rechazar. Página 12 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 En la siguiente pantalla se visualiza los datos del anexo recibido. A continuación debe proceder a completar los datos Fecha de ingreso, Rubro, y número de cajones. IMPORTANTE: En caso de tildar la opción “Enviar ingreso directamente a stock -Anexo V-“, como el texto indica, se envía cada entrada en el detalle al Anexo V. El Anexo II marcará aquellos productos enviados al stock. Si el anexo es correcto, se procede con la aprobación, presionando el botón “Aprobar recepción”, realizado esto genera un anexo II, visualizando en pantalla el siguiente mensaje: Caso contrario, si la decisión es rechazar la operación, se deber presionar el botón “Rechazar recepción”, luego de confirmar la operación se ingresa el motivo del rechazo. Realizado esto se visualiza el siguiente mensaje: Página 13 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 3.1.3 Anexo III El Anexo III permite registrar la información correspondiente a los egresos de materia prima o productos en proceso Antes de comenzar a realizar regularmente la carga de datos, se debe cargar el stock inicial de productos, por única vez. Este stock inicial debe cargarse como un ingreso de producción para cada uno de los productos en stock. Debe ingresar a la opción Anexo III, Alta, del menú Carga de datos. En esta pantalla se ingresa un certificado junto con su detalle.            (*) Fecha de ingreso: podrá ingresarse manualmente con el formato dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario.  (*) Tipo de amparo: seleccionar uno de la lista (CE, Remito, Anexo, etc.).  (*) Número de amparo: se debe ingresar un texto. El Tipo y Número de Amparo debe corresponderse con Certificado Sanitario válido, entregado por SENASA. En caso de no serlo, el Sistema mostrará un mensaje que indica que el Certificado no es válido y le impedirá continuar registrando el Anexo hasta que ingrese un Tipo y Número válido.  Transporte: se debe ingresar un texto que identifique al transporte.  (*) Tipo Destino: seleccionar una opción de la lista (Planta, Exterior, Consumo Interno).  (*) Rubro: seleccionar uno de la lista, de acuerdo a los que correspondan al Establecimiento.  Establecimiento Destino: seleccionar uno de la lista.  País destino: seleccionar uno de la lista.  Provincia destino: seleccionar uno de la lista.  Localidad destino: seleccionar uno de la lista.  Página 14 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 El Detalle debe tener al menos un elemento. Cada elemento del detalle está formado por: o Especie: se selecciona de una lista. Si ya se conoce el código se puede seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento. o Producto: se selecciona de una lista. . Si ya se conoce el código se puede seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento. o Temperatura: se selecciona de una lista. o Número de cajones: se ingresa un número entero positivo. o Peso neto: se ingresa un número real positivo. o Lote: texto que identifica el ítem del detalle. Nota: Los campos indicados con (*) a la izquierda del label, son campos obligatorios. Se pueden agregar todos los renglones de detalle necesarios. Al finalizar, presionar el botón “Registrar’. Si desea continuar generando certificados, clickear en el input “Número de amparo‟. Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia su texto por “EXITO‟. Luego de ingresar el peso neto, el renglón del detalle se agrega a la lista en la parte inferior de la pantalla. En caso de error, se puede eliminar presionando el botón “Eliminar” a la derecha del renglón. 3.1.3.1 Consulta Envíos Se tiene la opción de visualizar el estado de los egresos realizados con anexo III que tienen destino a otro establecimiento, teniendo la información si el anexo enviado fue aprobado o rechazado desde la planta destino. Debe ingresar a la opción Anexo III, Consulta Envíos, del menú Carga de datos. Página 15 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 En el caso de rechazado, es posible visualizar el motivo del mismo, seleccionando el icono . Se visualiza la siguiente pantalla que muestra el historial de los estados de envío. 3.1.4 Anexo IV El Anexo IV permite registrar la información correspondiente a los egresos de productos pesqueros elaborados. Antes de comenzar a realizar regularmente la carga de datos, se debe cargar el stock inicial de productos, por única vez. Este stock inicial debe cargarse como un ingreso de producción para cada uno de los productos en stock. Debe ingresar a la opción Anexo IV, Alta, del menú Carga de datos.  (*) Fecha de egreso: podrá ingresarse manualmente con el formato dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario. Página 16 de 35 �SENASA – Sistema Pesca        Manual Versión 2.1.0  (*) Tipo de amparo: seleccionar uno de la lista (CE, Remito, Anexo, etc.).  (*) Número de amparo: se debe ingresar un texto. El Tipo y Número de Amparo debe corresponderse con Certificado Sanitario válido, entregado por SENASA. En caso de no serlo, el Sistema mostrará un mensaje que indica que el Certificado no es válido y le impedirá continuar registrando el Anexo hasta que ingrese un Tipo y Número válido.  Transporte: se debe ingresar un texto que identifique al transporte.  (*) Tipo Destino: seleccionar una opción de la lista (Planta, Exterior, Consumo Interno).  (*) Rubro: seleccionar uno de la lista, de acuerdo a los que correspondan al Establecimiento.  El Detalle debe tener al menos un elemento. Cada elemento del detalle está formado por: o Especie: se selecciona de una lista. Si ya se conoce el código se puede seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento. o Producto: se selecciona de una lista. . Si ya se conoce el código se puede seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento. o Temperatura: se selecciona de una lista. o Número de cajones: se ingresa un número entero positivo. o Peso neto en Kgs: se ingresa un número real positivo. o Lote: Texto que identifica el ítem del detalle. Nota: Los campos indicados con (*) a la izquierda de la descripción del campo, los mismo son campos obligatorios. Se pueden agregar todos los renglones de detalle necesarios. Al finalizar, presionar el botón “Registrar”. Si desea continuar generando certificados, clickear en el input “Número de amparo‟. Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia su texto por “EXITO‟. Luego de ingresar el peso neto, el renglón del detalle se agrega a la lista en la parte inferior de la pantalla. En caso de error, se puede eliminar presionando el botón “Eliminar” a la derecha del renglón . 3.1.4.1 Consulta Envíos Se tiene la opción de visualizar el estado de los egresos realizados con anexo IV que tienen destino a otro establecimiento, teniendo la información si el anexo enviado fue aprobado o rechazado desde la planta destino. Debe ingresar a la opción Anexo III, Consulta Envíos, del menú Carga de datos. Página 17 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 En el caso de rechazado, es posible visualizar el motivo del mismo, seleccionando el icono . Se visualiza la siguiente pantalla que muestra el historial de los estados de envío. Página 18 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 3.1.5 Anexo V El Anexo V permite registrar la información correspondiente a las existencias de productos terminados. Antes de comenzar a realizar regularmente la carga de datos, se debe cargar el stock inicial de productos, por única vez. Este stock inicial debe cargarse como un ingreso de producción para cada uno de los productos en stock. Debe ingresar a la opción Anexo V, Alta, del menú Carga de datos.    (*) Especie: se selecciona de una lista. Si ya se conoce el código se puede seleccionar automáticamente como vimos en el establecimiento.  (*) Producto: se selecciona de una lista. . Si ya se conoce el código se puede seleccionar automáticamente como vimos en el establecimiento.  (*) Temperatura: se selecciona de una lista.  (*) Rubro: seleccionar uno de la lista, de acuerdo a los que corresponda al establecimiento.       (*) Fecha de movimiento: podrá ingresarse manualmente con el formato dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario  Ingreso de otro Establecimiento (en Kgs.): indicar cantidad.  Ingreso de producción – elab. propia - (en Kgs.): indicar cantidad.  Egreso para reproceso interno (en Kgs.): indicar cantidad.  Egresos Varios (en Kgs.): se selecciona de una lista.  Ingreso devoluciones (en Kgs.): indicar cantidad. De los últimos cinco campos, tres de ingresos y dos de egresos, se debe ingresar al menos uno, excepto para el movimiento nulo (ver a continuación). En el caso de registrar Egresos Varios, se debe seleccionar un motivo. Al finalizar, presionar el botón “Registrar”. Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia su texto por “EXITO‟. Para rehabilitarlo y seguir cargando, se debe clickear en cualquiera de los cinco inputs de ingreso/egreso. Página 19 de 35 �SENASA – Sistema Pesca 3.1.5.1 Manual Versión 2.1.0 Movimiento Nulo Dado que el Anexo V es un resumen de los movimientos de stock en un período específico, y es posible que haya en stock productos que no tienen ningún movimiento en dicho período, estos productos sin movimientos no aparecen en el Anexo V. Para evitar esto, se permite el ingreso del movimiento nulo de un producto específico, cuya semántica es dejar explícita la ausencia de movimientos de un producto en un período. Luego de ingresarlo, el producto (y su stock actual) aparecerán en el resumen de Anexo V, y ese movimiento no modifica la cantidad de kgs. en stock. Operativamente, sólo se debe seleccionar el producto, dejar todo en cero, y registrar. Página 20 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 3.1.5.2 Establecimiento suspendido En los anexos II, III y IV existe la posibilidad de ingresar movimientos utilizando un listado de establecimientos suspendidos accesible luego de clickear el link „Suspendido‟. El usuario se hace cargo declarando que el establecimiento se encontraba activo en el momento del movimiento. 3.1.6 Cierre de Movimientos El cierre de movimientos se define como una operación obligatoria para declarar y confirmar que se ha terminado de cargar todos los datos de un determinado año, mes y establecimiento. Para realizar un cierre de movimientos, debe ingresar a la opción Cierre de movimientos, Alta, del menú Carga de datos. Página 21 de 35 �SENASA – Sistema Pesca   Manual Versión 2.1.0  (*) Año: ingresar el año que corresponde.  (*) Mes: seleccionar el mes que corresponde.  Observaciones: se puede ingresar algún comentario respecto al cierre realizado. Al finalizar, presionar el botón “Cerrar Movimientos‟. Se visualizará una ventana, en donde se debe confirmar la operación. Si la operación se realizó correctamente, el sistema informará el siguiente mensaje:  El cierre fue generado correctamente. Nota:    El cierre de movimientos es una operación obligatoria mensual.  Sólo se permite registrar un cierre por mes.  Una vez registrado un cierre para un mes, no podrá registrar operaciones de ingreso y egresos de productos, salvo que el agente supervisor rechace el cierre generado. Para consultar el historial de los cierres registrados debe ingresar en el Menú Carga de Archivos, opción Cierre de movimientos, Consultar. Puede ingresar los parámetros de búsqueda (año, mes y tipo de estado). Al presionar el botón “Consultar‟, el sistema visualizará un listado con los cierres registrados para el establecimiento elegido. Si presiona “Cancelar‟, el Sistema regresa a la pantalla anterior. Página 22 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Una vez realizada la consulta, puede seleccionar un cierre y ver los detalles del mismo, haciendo click en el icono dentro de la columna “Acciones”. El sistema visualizará el detalle del cierre del mes seleccionado, como se muestra en el siguiente ejemplo: Estados del cierre: Los estados por las cuales puede pasar un cierre de movimientos, se describen a continuación: Generado: La planta genera el cierre de información mensual. Aprobado: El supervisor aprueba el cierre mensual. Cuando el cierre se aprueba no es posible realizar altas, bajas y modificaciones de anexos y movimientos para el mes aprobado. Rechazado: El supervisor rechaza el cierre mensual. En ese caso, la planta puede realizar altas, modificaciones y eliminaciones sobre la información del mes rechazado. Regenerado: Cuando el supervisor rechaza un cierre, la planta puede realizar modificaciones sobre la información mensual. Una vez finalizadas las modificaciones, la planta debe volver a “Regenerar” el cierre. Nota: Cuando un cierre mensual es rechazado por el agente supervisor, en este caso, el sistema habilita el botón “Regenerar”. Esta acción permite volver a registrar el cierre mensual luego de realizar modificaciones en el ingreso y egreso de productos para el mes y establecimiento en cuestión. Al “regenerarse” el cierre, se espera que el agente supervisor apruebe o rechaze dicho cierre. La siguiente imagen representa el detalle de un cierre de mes que fue rechazado. Página 23 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Nota: Si la planta no genera el cierre mensual, no podrá cargar información del mes siguiente. Una vez generado el cierre (o regenerado), se libera la carga de nueva información. 3.1.7 Certificados Anulados Para registrar certificados anulados debe ingresar en la opción Certificados anulados, Alta, del menú Carga de datos.    (*) Fecha: podrá ingresarse manualmente con el formato dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario.  (*) Tipo de amparo: seleccionar uno de la lista (CE, Remito, Anexo, etc.).  (*) Número de amparo: se debe ingresar un texto. Al finalizar, presionar el botón “Registrar‟. Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia su texto por “EXITO‟. Para rehabilitarlo y seguir cargando, se debe clickear el input “Número de amparo”. Página 24 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 3.1.8 Certificados Complementarios Para registrar certificados complementarios debe ingresar en la opción Certificados complementarios, Alta, del menú Carga de datos.       (*) Fecha de ingreso: podrá ingresarse manualmente con el formato dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario.  (*) Tipo de amparo: seleccionar uno de la lista (CE, Remito, Anexo, etc.).  (*) Número de amparo: se debe ingresar un texto.  (*) Tipo de Amparo a complementar: seleccionar uno de la lista (CE, Remito, Anexo, etc.).  (*) Nro. de Amparo a complementar: se debe ingresar un texto.  Observaciones: se debe ingresar un texto, en caso de ser necesario. Al finalizar, presionar el botón “Registrar‟. Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia su texto por “EXITO‟. Para rehabilitarlo y seguir cargando, se debe clickear el input “Número de amparo”. Nota: Sólo se pueden complementar remitos ingresados por Anexo IV. Se provee un autocompletado del Nro. de amparo a complementar teniendo en cuenta los remitos ingresados por Anexo IV dentro de los últimos 45 días. Página 25 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 3.1.9 Modificación o Eliminación de Anexos Para modificar o eliminar Anexos el mecanismo es similar para todos los anexos. Debe seleccionar en el menú Carga de datos, el Anexo a consultar o eliminar y clickear en la opción Modificar. Ingresar el rango de fechas a consultar, y luego presionar el botón ”Consultar‟. El Sistema muestra un listado de Certificados ingresados en las fechas especificadas.  En caso que desee modificar, presionar el primer botón que se encuentra a la derecha del certificado a modificar. El sistema muestra una pantalla similar a la de carga de datos para modificar los datos que desee. Al finalizar, presionar el botón “Modificar‟.  En caso que desee eliminar un certificado, debe presionar el botón rojo que se encuentra a la derecha del certificado desea. Página 26 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 3.2 Carga de Archivos Para aquéllas plantas que tenga sistema propio y no desean ingresar manualmente la información ingresar en el Menú “Carga de archivos”. Encontrará las siguientes opciones:    Mis Archivos importados: muestra los archivos importados en un rango de fechas.  Cargar Archivo: ingresa al Sistema de Pesca la información registrada en el sistema en planta.  Info para importación: describe los requerimientos para la importación de archivos. 3.2.1 Mis Archivos Importados Para consultar los archivos importados debe ingresar en el Menú Carga de Archivos, opción Mis archivos importados, luego indicar el rango de fechas que contiene los archivos a consultar, las mismas podrán ingresarse manualmente con el formato dd/mm/aaaa o bien seleccionado la fecha desde el botón Calendario. Al presionar el botón “Consultar‟, el sistema muestra un listado de los archivos importados en las fechas de lo contrario los cambios se perderán. Si presiona “Cancelar‟, el Sistema regresa a la pantalla anterior. 3.2.2 Cargar Archivo En la opción Cargar archivo del menú Carga de archivos, debe seleccionar el Anexo para el cual se quiere realizar la importación, a continuación, debe indicar la ubicación física del archivo en la computadora a través del botón “Examinar‟. Página 27 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Al presionar el botón “Consultar‟, el sistema muestra un listado de los archivos importados en las fechas de lo contrario los cambios se pierden. Si presiona “Cancelar‟, el Sistema regresa a la pantalla anterior. 3.2.3 Info para Importación En la opción Info para importación del menú Carga de archivos se encuentran los formatos de los archivos y las tablas de referencia necesarias para exportar/importar archivos: Para realizar la exportación/importación de archivos la persona responsable de sistemas de la planta (o el proveedor de software) debe recibir los dos archivos de la pantalla Info para importación, que describen el formato de los archivos y las tablas de referencia necesarias. Con esta información, el responsable en sistemas debe programar un módulo de exportación de datos en el sistema que la planta usa actualmente (en general, sistemas desktop). Página 28 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Una vez programado el módulo de exportación, el sistema de la planta permite obtener archivos con el formato propuesto por SENASA. Estos archivos pueden ser guardados en la PC del usuario de planta. El usuario de planta, luego de hacer la exportación de los archivos desde el sistema de la planta y guardarlos en su PC, debe ir a Carga de archivos en el sistema de SENASA, y registrar el archivo seleccionado. Opcionalmente, puede corroborar que la importación se haya realizado de manera correcta, en la pantalla Mis Archivos Importados, o más detalladamente imprimiendo el/los anexos involucrados. Nota: Un archivo se procesa de manera transaccional, es decir, sólo se procesa exitosamente si no existe ningún error en ninguna línea. Si existiera algún error, el archivo se descarta completamente. El Sistema de Pesca informa, en caso de error, en qué línea se produjo y cuál es la naturaleza de dicho error. Página 29 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 3.3 Impresiones 3.1.1 Impresión de Anexo Para la impresión de los Anexos debe seleccionarse la opción Anexos del menú Impresiones. A continuación debe indicar el anexo que se desea imprimir, el rubro y el rango de fechas en que se ingresaron los datos. Al presionar el botón “Imprimir Anexo‟, el sistema genera un archivo con formato .pdf. (Ver modelo de impresión de un Anexo en el Apéndice). Si presiona “Volver‟, el Sistema regresa a la pantalla anterior. 3.3.2 Impresión de Estadística Mensual Para la impresión de la estadística mensual debe seleccionar la opción Estadística Mensual del menú Impresiones. A continuación debe indicar la planilla (Estadística mensual de fábricas de pescado o Parte mensual de certificaciones emitidas), el rubro, el mes y el año en que se ingresaron los datos. Página 30 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Al presionar el botón “Imprimir planilla‟, el sistema genera un archivo con formato .pdf. (Ver modelo de impresión de una Estadística Mensual en el Apéndice). Si presiona „Volver‟, el Sistema regresa a la pantalla anterior. 3.4 Establecimientos Rubros En la opción Establecimientos -> Rubros del menú principal se permite ver los rubros pesqueros declarados por el establecimiento ante SENASA. 3.5 Ayuda En la opción Ayuda del menú, se encuentra la explicación de cómo utilizar el Sistema de Pesca, a tales efectos el sistema le ofrece un archivo en formato .pdf, en versión comprimida, el que podrá almacenar en su PC y consultarlo cada vez que lo necesite. Página 31 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 APÉNDICE Modelo de Impresión de Anexos Ejemplo de Impresión de Anexo II. Página 32 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0 Modelo de Impresión de Estadística Mensual Se distinguen cuatro áreas de datos:     Entrada de materia prima: Anexo I + Anexo II (los ingresos con remito interno por reproceso desde el establecimiento propio NO se consideran).  Elaboración de productos: Ingreso de producción por Anexo V.  Ingreso de otros establecimientos: Ingreso de otros establecimientos por Anexo V.  Salida de productos elaborados: Anexo III + Anexo IV.   Página 33 de 35 �SENASA – Sistema Pesca Manual Versión 2.1.0      Modelo de Impresión de Parte Mensual de Certificaciones emitidas El parte es resultado de: Anexo III + Anexo IV + Certificados anulados + Certificados complementarios Nota: Si bien se discrimina por rubro al realizar la impresión, tanto los certificados anulados como los complementarios aparecen para todos los rubros, dado que los certificados no tienen rubro asociado. Página 34 de 35 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Manual del usuario: Sistema de Pesca Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource [2020] Relation A related resource <a href="https://digesto.senasa.gob.ar/items/show/541">Resolucion 26/2019</a> Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S. 0146 Abstract A summary of the resource. El Sistema de Pesca se creó para llevar el registro de Ingreso, Egreso y Stock de productos de la pesca en establecimientos terrestres. Table Of Contents A list of subunits of the resource. <div>Tabla de contenido INTRODUCCIÓN</div> <div>1.- Descripción del proceso de carga de Anexos</div> <div>2.- Ingreso al Sistema de Pesca</div> <div>3.- Menú principal</div> <div>3.1 Carga de Datos</div> <div>3.1.1 Anexo I</div> <div>3.1.2 Anexo II</div> <div>3.1.3 Anexo III</div> <div>3.1.4 Anexo IV</div> <div>3.1.5 Anexo V</div> <div>3.1.6 Cierre de Movimientos</div> <div>3.1.7 Certificados Anulados</div> <div>3.1.8 Certificados Complementarios&nbsp;</div> <div>3.1.9 Modificación o Eliminación de Anexos</div> <div>3.2 Carga de Archivos&nbsp;</div> <div>3.2.1 Mis Archivos Importados <br />3.2.2 Cargar Archivo</div> <div>3.2.3 Info para Importación</div> <div>3.3 Impresiones</div> <div>3.1.1 Impresión de Anexo</div> <div>3.3.2 Impresión de Estadística Mensual</div> <div>3.4 Establecimientos</div> <div>3.5 Ayuda&nbsp;</div> <div>APÉNDICE</div> ESTABLECIMIENTO INSPECCION VETERINARIA Pesca https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/dfc29cdb2194cf087e89a3ca816fd47d.pdf 0d7b18dcde18fdc0a1ff662bc5a0b142 PDF Text Text La lectura del presente material es necesaria para la REACREDITACIÓN de Vacunadores. ESTATUS SANITARIO EN ARGENTINA Y LA REGION SITUACIÓN ACTUAL DE LA FIEBRE AFTOSA EN LA REPÚBLICA ARGENTINA - ORGANIZACIÓN MUNDIAL DE SANIDAD ANIMAL (OIE): Con respecto a la Fiebre Aftosa, la OIE reconoce las siguientes zonas libres que en conjunto ocupan todo el territorio nacional:   2 zonas libres con vacunación: - Centro – Norte - Cordón fronterizo 3 zonas libres sin vacunación: - Patagonia (conformada por Patagonia Norte B y Patagonia Sur), - Patagonia Norte A - Valles de Calingasta (Provincia de San Juan) Este estatus sanitario es reconfirmado anualmente por nuestro país. Mapa N°1. Zonas Libres de Fiebre Aftosa reconocidas por OIE �Ubicación: Centro – Norte: Límites políticos de las Provincias de Santiago del Estero, Santa Fe, Córdoba, San Luis, La Pampa, Buenos Aires (excepto el partido de Patagones), Entre Ríos, La Rioja, San Juan (excepto los Valles de Calingasta), Mendoza, Jujuy, Tucumán y Catamarca. También el territorio de las provincias de Misiones, Corrientes, Salta, Formosa y Chaco (exceptuando, en todas estas provincias la franja que conforma el Cordón fronterizo). Cordón fronterizo: Ocupa una franja de alrededor de 25 km de ancho a lo largo de la frontera. Por cuestiones operativas se divide en Frontera Norte A (abarca parte de las provincias de Salta y Formosa) y Frontera Norte B (parte de las provincias de Chaco, Corrientes y Misiones). Mapa N° 2: Zonas libres con vacunación CENTRO NORTE CORDÓN FRONTERIZO Patagonia: Comprende a Patagonia Sur y Patagonia Norte B. �MapaN° 3: Zona libre sin vacunación PATAGONIA Patagonia Norte A: Comprende parte de las Provincias de Rio Negro, Neuquén y Buenos Aires (Partido de Patagones): - Provincia de RIO NEGRO: Área delimitada: al norte por el Río Colorado, límite político con la Provincia de LA PAMPA; al oeste por el límite político con la Provincia del NEUQUEN; al este por el límite político con la Provincia de BUENOS AIRES y al sur por el Río Negro. El límite sur de esta región está dado por la margen sur del Río Negro a excepción del Valle Azul situado en la margen sur de dicho río, en el Departamento El Cuy, los establecimientos linderos sobre la margen sur de ese río en el Departamento Avellaneda, al este de la Ruta Provincial Nº 250 desde Pomona hasta El Solito, al este de la Ruta Provincial Nº 2 desde El Solito hasta San Antonio Oeste, y la zona sur de los Departamentos Conesa y Adolfo Alsina. - Provincia de BUENOS AIRES: Solo el Partido de Patagones, ubicado al sur del río Colorado, está reconocido por OIE como libre de aftosa �SIN vacunación, el resto de la provincia de Buenos Aires se encuentra reconocida por OIE como libre de aftosa CON vacunación. - Provincia del NEUQUEN: Área delimitada desde Picún-Leufú (Ruta Nacional Nº 237) hasta Cutral-Có (Ruta Nacional Nº 22), desde Cutral-Có hasta Añelo por Ruta Provincial Nº 17, el cruce de las Rutas Provinciales Nros. 7 y 8 - Puente Dique Ballester, Puente CentenarioCinco Saltos, Puente Neuquén (Ruta Nacional Nº 22), Puente Las Perlas sobre el Río Limay. Mapa N° 4: Zona libre sin vacunación PATAGONIA NORTE A Valles de Calingasta: Es una pequeña zona de altos valles andinos de pastoreo que se encuentra en la provincia de San Juan. Estos valles solo son accesibles para el pastoreo desde Chile, dado que el limite político entre este país y Argentina no está dado por las altas cumbres, sino por la divisoria de aguas, lo que hace que desde el lado argentino entre los valles y el resto de la provincia de San Juan se interponga una barrera montañosa de más de 4.000 ms de altura, lo que la hace inaccesible para el ganado de Argentina �Mapa N° 5: Zona libre sin vacunación VALLES DE CALINGASTA - REGIONALIZACIÓN SEGÚN UNION EUROPEA (UE): Mapa N°. Regionalización según UE Condiciones para exportar carne a UE según la zona de procedencia: � Regiones AR-1 y AR-3:Carne fresca incluida la carne picada de bovino doméstico (comprende las especies de los géneros Bison y Bubalus y sus cruzas) y de ciervos no domésticos de criadero, con garantíasde maduración, medición de pH y deshuesado de la carne fresca, excepto los despojos.  Regiones AR-2 y AR-4:Carne fresca incluida la carne picada de bovino doméstico (comprende las especies de los géneros Bison y Bubalus y sus cruzas), de ciervos no domésticos de criadero y en estado silvestre, de ovinos y caprinos domésticos. SITUACIÓN ACTUAL DE FIEBRE AFTOSA EN SUDAMÉRICA Mapa N°7. Estatus oficial de FA en Sudamérica - OIE �ULTIMOS FOCOS EN ARGENTINA, CONO SUR Y SUDAMERICA - ARGENTINA: Hace más de 12 años que no se presentan casos. Los primeros días del mes de febrero de 2006, el veterinario privado que atiende el Establecimiento Agropecuario “San Juan” (Foco Nº 1) ubicado a 25 Km. de la frontera con el Paraguay, en el Departamento de San Luis del Palmar de la Provincia de Corrientes, denuncia ante el Veterinario Local del SENASA haber visto bovinos con lesiones vesiculares en dicho predio. El Veterinario Oficial constata la existencia de 70 bovinos con signología clínica sin registro de mortandad. Mapa N°8. Foco Corrientes 2006 Se tomaron de inmediato las siguientes medidas: inspección clínica de los animales, inmovilización de la hacienda, toma y remisión de muestras al �laboratorio, delimitación de las eventuales áreas focal-perifocal-vigilancia y la convocatoria del Equipo Regional de Emergencia. El Laboratorio Oficial del SENASA realizó el diagnóstico primario por medio de los ensayos ELISA SI y Fijación de Complemento 50 % (tejido epitelial) y EITB (serología) confirmando virus de la fiebre aftosa tipo “O” el día 8 de febrero, completándose, posteriormente los estudios de caracterización virológica, inmunológica y molecular del virus aislado. A partir de la confirmación se realizó la comunicación oficial a los Organismos Internacionales (OIE - CVP – PANAFTOSA), entidades agropecuarias, industria agroalimentaria, países vecinos y con relación comercial. Se declaró la EMERGENCIA SANITARIA (Resolución SENASA Nº 35/06) y se dispuso el sacrificio sanitario de los animales enfermos y contactos (Resolución SENASA Nº 36/06). El 21 de febrero (Foco Nº 2) se detecta un bovino con lesiones cicatrizales, en la boca y en las patas, compatibles con fiebre aftosa en un predio lindero al lote afectado dentro del área focal del Foco Nº 1. Se trató de un único bovino sin marca que indicara propiedad. El dueño delestablecimiento no reconoció su propiedad y no había registro de su existencia en el acta de vacunación e inspección del área perifocal de fecha 11 de febrero de 2006. Las lesiones cicatrizales no permitieron tomar muestras epiteliales, pero sí se tomaron muestras de LEF- Probang del bovino afectado (y de tres de sus contactos) de ninguna de las cuales se recuperó virus. El suero fue reactivo a las pruebas para Proteínas No estructurales (PNE) ELISA 3 ABC/EITB. Ningún animal del predio presentó signos clínicos de enfermedad y en el muestreo serológico del establecimiento no se detectaron animales reactores a PNE. Se procedió al sacrificio sanitario del animal afectado y sus contactos directos (Resolución SENASA Nº 91/06). �Se considera erradicada la enfermedad el 1º de marzo de 2006, día en que finalizó el sacrificio sanitario de los animales involucrados. La OIE restituye la condición de Zona libre que practica la vacunación en la 75 ª Sesión General de Mayo de 2007. Cuadro N°1. Resumen del foco de San Luis de Palmar 2006 Número San Luis del Palmar Corrientes - Foco 1 de animales en la unidad de producción Número de animales infectados en la unidad de Animales Sacrificados producción Bovinos 4.098 70 4.098 Ovinos 100 0 100 Caprinos 235 0 237 Suinos 5 0 5 San Luis del Palmar 1.400 Corrientes - Foco 2 (bovinos) 1 (bovino) 415 (bovinos) CONO SUR:Hace más de 6 años que no se presentan casos en el Cono sur. Los últimos 2 focos se presentaron en San Pedro, Paraguay, uno en septiembre del 2011 y el otro en enero de 2012. Ambos se presentaron en bovinos y fue debido al serotipo O. Mapa N° 9. Foco Paraguay 2011 - 2012 �- SUDAMERICA: El último foco se presentó en octubre del 2018 en Colombia. Por este motivo OIE le suspendió el estatus de libre de FA a este país. Anteriormente, en junio y julio del 2017, se habían presentado los primerosfocos en Colombia. Todos fueron por serotipo O y se reportaron casos en bovinos y porcinos (esta especie en el foco de octubre 2018) Pueden consultar el informe técnico que realizo PANAFTOSA del brote del 2017: https://www.paho.org/panaftosa/index.php?option=com_docman&vi ew=download&slug=notatecnica-fiebreaftosa-colombia-2017503&Itemid=518 Mapa N° 10. Foco Colombia_Junio 2017 �Mapa N° 11. Ubicación focos de fiebre aftosa tipo O – Municipios de Sogamoso, San Diego y Maicao - Colombia_Octubre2018 Figura N°1. Linea de tiempo de confirmación de focos – Colombia 2018 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Módulo II: Estatus sanitario en la Argentina y la Región - Fiebre Aftosa Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource [2020] Language A language of the resource Es Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0098 Abstract A summary of the resource. Módulo diseñado para el curso Reacreditación de veterinarios privados. El presente módulo (Nº 2) informa sobre la situación actual de la fiebre aftosa en Argentina y en Sudamérica, de acuerdo a la OIE. También señala la regionalización según la Unión Europea, para exportación de carne a ese destino. Inlcluye una breve descripción de los últimos focos en Argentina y en la Región del Cono Sur. Type The nature or genre of the resource Literatura Gris Fiebre Aftosa https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/d39d0260714e2db17830d3c6c3e9a24a.pdf 69b2b9a9cb7c7f72ea281723b778b1f2 PDF Text Text CURSO DE REACREDITACION DE VACUNADORES Programa Nacional de Fiebre Aftosa PROGRAMA NACIONAL DE FIEBRE AFTOSA DIRECCION NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL �FIEBRE AFTOSA Es una enfermedad de curso agudo, la más contagiosa de los mamíferos, que afecta a biungulados (bovinos, bubalinos, ovinos, caprinos, porcinos), caracterizada principalmente por vesículas en boca, pezuñas y mamas. Tiene gran impacto en la producción animal, limitaciones en el comercio internacional y local, impacto social a nivel de producciones familiares y grandes costos en la gestión de riesgo por parte de las autoridades sanitarias. Consecuencias directas e indirectas: • • • Pérdidas de producción (tambo, engorde, cría) Costos de campañas de control y erradicación Pérdidas de mercados de productos agropecuarios �FIEBRE AFTOSA En la historia de la enfermedad en Argentina se han presentado los serotipos A, O y C.  La infección con un serotipo no confiere inmunidad contra otros serotipos.  Entre cepas de un mismo serotipo existe inmunidad cruzada, la que es distinta en intensidad y duración para cada una de ellas. �Características del virus  Poder inmunógeno:  Prolongado en infecciones naturales por enfermedad.  Menor duración por vacunas.  Variabilidad: Gran capacidad de mutación, supervivencia ante diferentes condiciones, principalmente el tipo A.  Viabilidad: Permanencia en el medio externo, resiste según las condiciones por ej: protegido por materia orgánica. (Fuente: Cottral y Wittman). Sensible a cambios de pH y temperatura.  Patogenicidad: Diferentes presentaciones: lesiones típicas y cuadros atípicos que dependen del nivel inmunitario del huésped y el mecanismo de transmisión.  Virulencia: Se pueden observar ondas epidémicas que dependen del equilibrio entre el estado inmunitario de la población y la dosis infecciosa (actividad viral). �Características del virus SUPERVIVENCIA DEL VIRUS DE LA FIEBRE AFTOSA Leche: 4,5 días Saliva: 11 días Sangre: 5 días Semen: 10 días Fuente: Cottral 1969 �SUPERVIVENCIA DEL VIRUS DE LA FIEBRE AFTOSA EN PRODUCTOS MANTENIDOS ENTRE 1° y 7°C Músculo Bovino: 3 días Porcino: 1 día Medula osea Bovina: 210 días Porcina: 42 días Fuente: Cottral 1969 �Características del virus SUPERVIVENCIA DEL VIRUS DE LA FIEBRE AFTOSA Corrales: 35 días Tierra: Verano Invierno 3 días 28 días Pasturas: Verano 1-7 días Invierno 50 días Heces secas: Verano 30 días Invierno 160 días (Cottral GE, Persistence of FMD virus in animals, their products, and the environment, OIE Bulletin 71(3-4), 1969) �Características del virus TIEMPO DE SUPERVIVENCIA DEL VIRUS DE LA FIEBRE AFTOSA EN SUSPENSIONES DE CULTIVOS DE TEJIDO A DIFERENTES pH pH Tiempo 2.2 4 6 menos de 15 seg. menos de 15 seg. 2 minutos. 7 varias semanas 9 1 semana 10 14 horas 12.5 menos de 15 seg. Fellowes ON, Chemical inactivation of FMD virus, Annals of the N Y Academy of Sciences, 1960 �Características del virus TIEMPO DE SUPERVIVENCIA DEL VIRUS DE LA FIEBRE AFTOSA EN MEDIO SIMPLE A DISTINTAS TEMPERATURAS Temperatura Tiempo 60 ºC 56 ºC 50 ºC 5 seg. menos de 30 min. 1 hora 37 ºC 1 día 4 ºC 2 ºC 8 a 10 semanas 4 meses menos de 4 ºC más de 1 año A. Donaldson, pers. Comm. �EPIDEMIOLOGIA DE LA ENFERMEDAD Especies Susceptibles �EPIDEMIOLOGÍA DE LA ENFERMEDAD Afecta a los animales biungulados (pezuña hendida) El bovino es el principal huésped, aunque algunas cepas están adaptadas específicamente a cerdos domésticos, ovinos, cabras y búfalos. Todos los animales silvestres de pezuña hendida también son susceptibles, incluyendo ciervos, antílopes, jabalíes, elefantes y jirafas. Los Camélidos sudamericanos como alpacas y llamas no tienen importancia epidemiológica. Fuente: El Búfalo africano (Syncerus caffer) es la única especie de fauna silvestre que puede jugar un papel importante en la epidemiología de la fiebre aftosa �EPIDEMIOLOGIA DE LA ENFERMEDAD Transmisión Fuentes de virus  Animales en período de incubación.  Con signos clínicos.  Con infecciones subclínicas. Por sus secreciones y excreciones Aire espirado, saliva, líquido de las vesículas. Heces, orina. Leche Hasta 4 días antes de los síntomas Semen Otra fuente : Carne y productos cárnicos no tratados (mantenidos en pH >6). �EPIDEMIOLOGIA DE LA ENFERMEDAD Transmisión Transmisión directa: Es la forma más importante de transmisión. Ocurre cuando hay transferencia inmediata o mediata del virus entre un animal infectado y sus contactos susceptibles Transmisión indirecta: El virus puede ser transmitido por vía mecánica por medio de objetos, personas o animales no susceptibles que hayan estado en contacto con animales infectados o con sus secreciones y/o excreciones (vehículos, cueros, calzado, manos, desperdicios alimenticios, perros, gatos, aves silvestres y roedores, etc.). �EPIDEMIOLOGIA DE LA ENFERMEDAD Transmisión Vías de ingreso  Vía Respiratoria (aerosoles)  Vía Digestiva (leche, orina, heces, saliva, productos cárnicos)  Vía Reproductiva (semen) �EPIDEMIOLOGIA DE LA ENFERMEDAD Transmisión Inhalación de aerosoles infecciosos: en zonas templadas pueden transportarse hasta 60 kilómetros por tierra y 300 km en el mar. Ingestión de leche contaminada en terneros. Inseminación artificial con semen contaminado. Consumo de productos cárnicos no tratados Contaminados, especialmente en cerdos (alimentación con deshechos de frigorífico/basurales a cielo abierto). Los seres humanos pueden albergar virus de fiebre aftosa en su tracto respiratorio durante 24-48 horas, lo que lleva a la práctica común de los 3-5 días de cuarentena personal para el personal expuesto en las instalaciones de investigación. �EPIDEMIOLOGIA DE LA ENFERMEDAD Transmisión Escala logarítmica Producción de virus por día Producción de virus por especie Los cerdos producen la mayor disponibilidad de virus por aire �EPIDEMIOLOGIA DE LA ENFERMEDAD Transmisión En algunas circunstancias pueden mantenerse algunos animales como PORTADORES (CARRIERS). Sólo se ha demostrado la presencia del virus por análisis de líquido esofágico - faringeo. No hay antecedentes de que se haya originado un brote a partir de Portadores. BOVINOS 24 meses OVINOS / CAPRINOS hasta 9 meses PORCINOS NO �EPIDEMIOLOGIA DE LA ENFERMEDAD Modo de Transmisión POR MOVIMIENTO DE ANIMALES INFECTADOS (forma más usual)  Animales durante el período de incubación.  Animales clínicamente enfermos.  Animales subclínicamente infectados (x baja susceptibilidad, inmunidad parcial, etc.)  Animales portadores : bovinos, ovinos, caprinos. Los porcinos no permanecen como portadores. Mapa de redes de movimientos en Argentina Fuente: DEYAR �EPIDEMIOLOGIA DE LA ENFERMEDAD Modo de Transmisión POR CONTACTO CON PERSONAS CONTAMINADAS ó CONTACTO CON OBJETOS CONTAMINADOS TRANSMISION MECANICA – FOMITES Instrumental veterinario: jeringas, agujas, mochetas, etc. Vehículos y maquinarias. Otras especies no susceptibles. Ej: equinos. Alimentos: Forrajes, granos, etc. OTROS TRANSMISION POR EL VIENTO ESCAPE VIRAL DE LABORATORIO �Signos clínicos  DECAIMIENTO - LETARGIA INAPETENCIA  FIEBRE  BABEO  RENGUERA Y MANQUERA  LESIONES: vesículas y/o erosiones en boca, patas, ubre.  MUERTE SÚBITA : aftosa cardíaca en animales jóvenes. �Signos clínicos ESPECIE BOVINOS PORCINOS OVINOS Y CAPRINOS SIGNOS Fiebre, inapetencia, retardo o cese de la rumia, reducción de la producción láctea. Vesículas en mucosa bucal, nasal, espacio interdigital, rodete coronario, lengua, ubres. Sialorrea. Cojera. Muerte súbita en animales jóvenes debido a miocarditis. Fiebre, anorexia, zonas hiperémicas en las bandas coronarias, zonas interdigitales, hocico, pezones y piel de glándula mamaria. Posteriormente estas zonas se transforman en vesículas. Cojera. Desprendimiento de pezuña. Escasa intensidad de lesiones. Vesículas cavidad bucal, rodete coronario y pezones. Decaimiento �LESIONES MADUREZ APROXIMADA DE LAS LESIONES Apariencia Antigüedad 1- Vesículas sin romper 0 a 2 días 2- Vesículas recién rotas, con epitelio aún adherido a los bordes de la lesión 2 a 3 días 1 2 �LESIONES MADUREZ APROXIMADA DE LAS LESIONES Apariencia 3- Vesículas rotas, sin epitelio o necrótico y bordes de tejido fibroso sin marcar. Antigüedad más de 3 y menos de 7 días �LESIONES MADUREZ APROXIMADA DE LAS LESIONES Apariencia 4- Lesiones abiertas con bordes de tejido fibroso cicatricial marcados. Antigüedad más de 8 a 10 días �LESIONES Madurez aproximada de las lesiones Vesículas sin romper 0 a 2 días Vesículas recién rotas, con epitelio aún adherido a los bordes de la lesión 2 a 3 días Vesículas rotas, sin epitelio o necrótico y bordes de tejido fibroso sin marcar Lesiones abiertas con bordes de tejido fibroso cicatricial marcados más de 3 y menos de 7 días más de 8 a 10 días �Diagnóstico diferencial ENFERMEDADES MAS FRECUENTES  IBR (B): Erosiones, úlceras, pústulas. Fiebre, rinitis, conjuntivitis, vulvovaginitis y aborto.  DVB (B): Erosiones, úlceras. Fiebre, estomatitis, diarrea.  Actinobacilosis-micosis (BP): Granulomas, abscesos, fístulas. Osteítis. Fibrosis lingual y sialorrea.  Pietín (BOC): Ulceras, necrosis. Cojera.  Festucosis (B): Necrosis (podal). Ptialismo, taquipnea (acaloramiento), anorexia.  Fotosensibilización (BOC): Rinitis, úlceras (morro), ptialismo.  Obstrucción bucal/esofágica (B): Ptialismo, disfagia, anorexia.  Pique(Tunga Penetrans)(BOC): Heridas interdigitales. Cojera.  Estomatitis Vesicular (BOPE, HOMBRE): vesículas, pápulas, erosiones y úlceras alrededor de la boca, pero también pueden estar presentes en las patas, ubre y el prepucio. Referencias: B: BOVINO, O: OVINO, C: CAPRINO, P: PORCINO �Diagnóstico diferencial ENFERMEDADES MENOS FRECUENTES:  Ectima Contagiosa (OC): Vesículas, pústulas, costras. Fiebre, babeo, anorexia.  Viruela Bovina (B): Vesículas, pústulas, costras. Mastitis. Fiebre.  Micotoxicosis (BOCP): Babeo, disnea, decaimiento, anorexia, baja de producción.  Intoxicación medicamentosa (BOCP): Babeo, disnea, temblores.  BOCOPA (eucaliptus) (B): Ulceras, necrosis (morro, boca, podal, cola). Referencias: B: BOVINO, O: OVINO, C: CAPRINO, P: PORCINO, E: EQUINO �IMAGENES �BABEO �BABEO �VESICULAS EN LENGUA �ÚLCERA EN PALADAR �EROSIONES EN LENGUA Y CAVIDAD BUCAL �EROSIONES EN LENGUA �VESICULAS EN ESPACIO INTERDIGITAL �EROSIONES EN PEZUÑA �VESICULAS EN UBRE �EROSIONES EN HOCICO Porcinos �VESICULAS EN PEZUÑAS Porcinos �MIOCARDITIS EN CERDO �MIOCARDITIS �Estatus sanitario en la región sudamericana �SITUACIÓN EN ARGENTINA Zonificación OIE 2 Zonas libres CON vacunación: • Zona libre con vacunación CENTRO NORTE. • Zona libre con vacunación CORDÓN FRONTERIZO. 3 Zonas libres SIN vacunción: • Zona libre sin vacunación PATAGONIA • Zona libre sin vacunación: PATAGONIA NORTE A. • Zona libre sin vacunación VALLES DE CALINGASTA. �PLAN NACIONAL DE ERRADICACIÓN DE LA FIEBRE AFTOSA (Resolución Senasa Nº 5/2001) Objetivo: Erradicar la Fiebre Aftosa del Territorio Nacional, lograr el reconocimiento internacional y mantener esta condición en el tiempo.     PRINCIPALES ESTRATEGIAS Regionalización Vacunaciones Estratégicas y Sistemáticas Vigilancia Epidemiológica Activa y Pasiva Otras Estrategias �Regionalización Debido a la variedad de ecosistemas, características productivas y circuitos comerciales en donde se debe implementar la inmunización sistemática se hizo necesaria la adaptación de la estrategia a cada región (número de campañas anuales categoría de animales, áreas/zonas de aplicación) A partir de la distribución de establecimientos ganaderos con densidad bovina, se planteó el esquema actual de vacunación, considerando que la zona central y norte del país concentra el 90 % del stock bovino/bubalino del país y de establecimientos ganaderos. En esta zona se realizan 2 campañas anuales de vacunación en todos los establecimientos: Una de todas las categorías y la otra de categorias menores (ternero/a, vaquillona, novillo, novillito y torito) �VACUNACIONES ESTRATEGICAS Y SISTEMATICAS Recordar que: La vacunación es un proceso que comienza con la elaboración de la vacuna y finaliza cuando esta aplicada en el animal y se genera la respuesta inmune. �VACUNACIONES ESTRATEGICAS Y SISTEMATICAS Características generales de la vacuna:  Formulada con adyuvante oleoso y saponina (larga inmunidad).  Inactivada con etilenimina binaria (BEI).  Tetravalente: O1 Campos, A24 Cruzeiro, A Argentina 2001 y C3 Indaial  Dosis : 2 ml – SC o IM  Producción nacional – 3 Laboratorios privados: Biogenesis-Bagó, Asociación Cooperativas Argentinas (ACA) y Centro de Diagnostico veterinario (CDV).  Controles de calidad a través del Laboratorio Oficial de SENASA de todas las series producidas (esterilidad, inocuidad, estabilidad físicoquímica, potencia, pureza: ausencia de Proteínas No Estructurales). �VACUNACIONES ESTRATEGICAS Y SISTEMATICAS Para definir una vacunación existe una doble condición referidas a: el momento en que se realiza y la cantidad de bovinos que involucra. a) En cuanto al momento, se considerará: - Vacunación Sistemática: Es la que se programa y ejecuta regularmente en cada jurisdicción, en las fechas establecidas para cumplir con los períodos de vacunación (Campañas de vacunación), de acuerdo al Plan Local oportunamente aprobado por el SENASA. Se registran en el SIGSA como “Acta de vacunación sistemática” total o parcial. - Vacunación Estratégica: Es la que se realiza fuera de las campañas de vacunación con algún motivo determinado, pudiendo ser: egreso, ingreso, revacunación, vacunación de oficio y anillo. Se registran en el SIGSA como “Acta de vacunación estratégica” �VACUNACIONES ESTRATEGICAS Y SISTEMATICAS b) En relación a la CANTIDAD DE BOVINOS involucrados por establecimiento tenemos: - Parcial: Se realiza cuando la vacunación se efectúa en más de un acto vacunal abarcando parte de las existencias de bovinos/bubalinos de una unidad productiva. - Total: Cuando involucra a todas las existencias bovinas del predio en el momento de realizar la vacunación. �VACUNACIONES ESTRATEGICAS Y SISTEMATICAS Características de la provisión, mantenimiento y trasporte de la vacuna: • • • • Mantenimiento de la cadena de frío en todas las etapas. (Resolución Senasa Nº 33/2002) Transporte: La vacuna acondicionada, es enviada desde el laboratorio productor directamente a los Centros y Subcentros de frío de los Entes autorizados, hasta su aplicación. Recepción: El Ente y personal del Senasa verifican y registran el estado del sensor térmico y luego la cantidad de frascos, cantidad de dosis, marca, número de serie, vencimiento,etc. Almacenamiento: la vacuna se almacena (entre 2 - 8ºC) sólo en los Centros y Subcentros de frío del Ente, el cual debe realizar controles diarios para garantizar la temperatura recomendada. Aplicación: Trasladar las dosis requeridas según la programación diaria, desde los centros de frío, en cajas térmicas con suficiente cantidad de refrigerante para mantener las condiciones en las dosis excedentes, hasta su devolución al final del día para su control y destrucción. �Aplicación – Desinfección del material - Control diario de retiro vacunas - Registro de dosis sobrantes y utilizadas �Circular N°6/2015 �VACUNACIONES ESTRATEGICAS Y SISTEMATICAS Registro de la vacunación Acta de vacunación (Resolución Senasa Nº 879/2002) DOCUMENTA EL ACTO DE LA VACUNACIÓN (El Acta de vacunación se confecciona por triplicado: una vez finalizada la vacunación, se debe completar en el establecimiento y entregar el original al propietario o encargado de los animales, una copia para la oficinal local y otra para el Ente Sanitario para su registro en el SIGSA) Recomendaciones: Completar todos los ítems en letra clara de imprenta con datos precisos, posteriormente verificar la exactitud de los datos consignados. Tener en cuenta que la información del Acta se utiliza para: 1.Realizar el seguimiento y la cobertura de la vacunación de cada plan 2.Realizar la actualización del stock de las diferentes especies en los establecimientos 3. Autorizar al establecimiento el movimiento de animales (condiciones de vacunación) �Encabezado preimpreso. Sólo se debe completar lugar y fecha Tipo de vacunación y cantidad de bovinos/bubalinos que involucra Número de Campaña del año y categorías que involucra y año Datos del propietario de los animales Datos del establecimiento Número de cada una de las categorías vacunadas Datos de la vacuna antiaftosa utilizada Datos de la vacunación de brucelosis Datos de existencias de otras especies no vacunadas Firmas aclaraciones y DU del vacunador y el propietario o responsable de los animales �Importante! Cumpla y haga cumplir estas instrucciones: El vacunador es responsable de mantener la cadena de frío cuando retira la vacuna del Ente y debe devolver al final de la jornada los frascos vacíos y con sobrantes además de la/s acta/s de vacunación producto del trabajo realizado. (Resolución Senasa Nº799/2006) Es obligación del vacunador y el ganadero vacunar todas las categorías de bovinos/bubalinos que corresponda vacunar en la campaña (no se deben dejar de vacunar tropas que se pretendan movilizar a faena en el corto plazo) (Resolución Senasa Nº799/2006) El vacunador es responsable una vez finalizada la vacunación, de completar con letra legible todos los ítems del Acta de vacunación, verificar todos los datos consignados y por último firmar junto con el propietario y/o encargado de los animales y entregar la copia correspondiente (Resolución Senasa Nº 879/2002) �Recordar: • Informar la presunción o sospecha de alguna de las enfermedades de los animales establecidas por el SENASA como de DENUNCIA OBLIGATORIA. • Comunicar en forma inmediata la sospecha de enfermedades confundibles con FA a la oficina local del Senasa. • Notificar cualquier mortandad masiva de animales domésticos o no domésticos. �fiebreaftosa@senasa.gov.ar � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Curso de reacreditación de vacunadores. Programa Nacional de Fiebre Aftosa Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Sanidad Animal/ Programa Nacional de Fiebre Aftosa Relation A related resource Resolución SENASA 5/2001 Resolución SENASA 879/2002 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Presentación Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0102 Abstract A summary of the resource. El presente documento es una presentación en formato de diapositiva exponiendo los contenidos brindados en el curso de Reacreditación de vacunadores del Programa Nacional de Fiebre Aftosa. Los contenidos son: características del virus de la fiebre aftosa, serotipos presentados en Argentina, tiempo de supervivencia del virus, transmisión y signos clínicos según especie, diagnóstico diferencial, estatus sanitario en Sudamérica y Argentina (según OIE). Desarrolla las estrategias del Plan Nacional de Erradicación de la Fiebre Aftosa (Resolución Senasa 5/2001) y recomendaciones para la vacunación (Resolución Senasa 879/2002). Incluye fotografías ilustrativas para el diagnóstico de la enfermedad. Fiebre Aftosa https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/98be8874f0cc4537fabc1c8ea2ac7ab7.pdf 36938b47e0a7d024c2a92f38c01e7c01 PDF Text Text Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Enfermedades de las abejas M a n u a l de P r o c e d i m i e n t o s Dr. Marcelo de la Sota Dirección de Luchas Sanitarias Dr. Mariano Bacci Programa de Control de Enfermedades de las Abejas Dirección Nacional de Sanidad Animal Buenos Aires, 2005 Versión actualizada 2020 �SENASA Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Av. Paseo Colón 367 C1063ACD Ciudad de Buenos Aires - República Argentina. Tel. (054) (011) 4331-6041 y números rotativos. website: http://www.senasa.gov.ar email: apicultura@senasa.gov.ar Coordinación General: Dr. Marcelo Daniel de la Sota (Dirección Nacional de Sanidad Animal) email: mdelasot@senasa.gov.ar Responsables de los contenidos: Dr. Marcelo D. de la Sota (Dirección de Luchas Sanitarias) Dr. Mariano Bacci (Programa de Control de Enfermedades de las Abejas) email: mbacci@senasa.gov.ar Revisión de contenido: Dirección de Epidemiología y Coordinación General de Campo. Edición: Lic. Cristina del Llano (Coordinación de Gestión Técnica) Armado y diagramación: Area de Diseño Gráfico. Buenos Aires, junio de 2005. 2 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Autoridades Dr. Jorge Nástor Amaya Presidente Ing. Carlos Casamiquela Vicepresidente Dr. Jorge Horacio Dillon Director Nacional de Sanidad Animal Dr. Gastón Funes Director de Epidemiología Dr. Marcelo Daniel de la Sota Director de Luchas Sanitarias Dr. Josá Luis Antonelli Coordinador General de Campo Dr. Mariano Bacci Programa de Control de Enfermedades de las Abejas Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 3 �4 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Indice 1. LOQUE AMERICANA ................................................................................................... 11 1.1 Características......................................................................................................... 11 1.2 Presentación ............................................................................................................11 1.3 Patogenia ................................................................................................................11 1.4 Diagnóstico ..............................................................................................................12 1.5 Cuadro clínico ......................................................................................................... 12 1.6 Etiología ..................................................................................................................12 1.7 Proceso epizoótico ....................................................................................................13 1.8 Reservorios de gérmenes ......................................................................................... 13 1.9 Transmisión .............................................................................................................13 1.10 Población hospedadora ............................................................................................. 13 1.11 Prevención y lucha................................................................................................... 13 1.12 Tratamiento .............................................................................................................13 1.12.1 Recuperación del Material Vivo .......................................................................13 a. Trasiego Directo ................................................................................14 b. Trasiego Doble ..................................................................................14 1.12.2 Recuperación del Material Inerte.................................................................... 14 a. Calor - Fuego Directo ........................................................................ 14 b. Calor - Inmersión.............................................................................. 14 c. Calor y Presión ................................................................................. 14 d. Químicos .......................................................................................... 15 e. Irradiación ........................................................................................15 1.12.3 Eliminación del material inerte....................................................................... 15 1.12.4. Tratamiento medicamentoso ........................................................................ 15 1.13. Procedimientos ante la denuncia.................................................................................15 1.14. Procedimiento de atención de focos ........................................................................... 16 1.15. Toma y remisión de muestras ................................................................................... 16 2. LOQUE EUROPEA ....................................................................................................... 17 2.1 Características......................................................................................................... 17 2.2 Presentación ............................................................................................................17 2.3 Diagnóstico ..............................................................................................................17 2.4 Etiología ..................................................................................................................17 2.5 Reservorios de gérmenes ......................................................................................... 17 2.6 Población hospedadora ............................................................................................. 17 2.7 Prevención y lucha....................................................................................................18 2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos ...................................................... 18 3. VARRAOSIS ....................................................................................................... 18 3.1 Características......................................................................................................... 18 3.2 Presentación ............................................................................................................19 3.3 Daños Indirectos ......................................................................................................19 3.4 Etiología ..................................................................................................................19 3.5 Ciclo Biológico ..........................................................................................................20 3.6 Cuadro clínico ......................................................................................................... 20 3.7 Diagnóstico ..............................................................................................................20 Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 5 �3.7.1 Prueba del frasco ......................................................................................... 20 3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso .......................................................... 21 3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría ......................................................... 21 3.7.4 Método químico ........................................................................................... 21 3.8 Difusión .................................................................................................................. 22 3.9 Reservorios de parásitos ........................................................................................... 22 3.10 Transmisión ............................................................................................................ 22 3.11 Población hospedadora ............................................................................................. 22 3.12 Prevención y lucha ................................................................................................... 22 3.13 Tratamiento ............................................................................................................ 22 3.13.1 Control químico............................................................................................ 23 3.13.2 Formas de acción de los acaricidas ................................................................. 23 3.13.3 Formas de administración ............................................................................. 23 3.14 Control de la Varroasis ............................................................................................. 24 3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis ............................................................ 24 3.14.2 Plan estratégico ........................................................................................... 24 3.14.2.a Rotación de los Principios Activos ................................................... 25 3.14.2.b Evitar los Residuos ....................................................................... 25 3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación ................................................. 26 3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado ....................................................... 26 3.15 Plan de Curas .......................................................................................................... 26 3.16 Procedimientos ante la denuncia ................................................................................ 28 3.17 Procedimientos ante sospechas ................................................................................. 29 4. NOSEMOSIS ..................................................................................................... 29 4.1. Características ......................................................................................................... 29 4.2. Daños directos......................................................................................................... 29 4.3. Daños Indirectos...................................................................................................... 29 4.4. Etiología ................................................................................................................. 30 4.5. Población susceptible................................................................................................ 30 4.6. Patogenia ................................................................................................................ 30 4.7. Transmisión ............................................................................................................ 31 4.8. Diagnóstico ............................................................................................................. 31 4.9. Tratamiento y Control .............................................................................................. 32 4.10. Prevención .............................................................................................................. 32 4.11. Procedimiento ante la sospecha ................................................................................. 33 5. ASCOPHAEROSIS ............................................................................................ 33 5.1. Características ......................................................................................................... 33 5.2. Presentación ............................................................................................................ 33 5.3. Etiología ................................................................................................................. 33 5.4. Patogenia ................................................................................................................ 34 5.5. Factores predisponentes ........................................................................................... 34 5.6. Cuadro clínico .......................................................................................................... 34 5.7. Diagnóstico ............................................................................................................. 35 5.8. Tratamiento y prevención ......................................................................................... 35 6. APIARIOS ABANDONADOS .............................................................................. 36 6 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7. ENFERMEDADES EXOTICAS...................................................................................... 36 7.1 Introducción.............................................................................................................36 7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia ............................................................... 37 7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae ............................................................................37 7.3.1 Características generales y distribución .......................................................... 37 7.3.2 Agente etiológico ......................................................................................... 37 7.3.3 Ciclo biológico ..............................................................................................38 7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito........................................................................... 38 7.3.5 Signos clínicos ..............................................................................................38 7.3.6 Transmisión .................................................................................................38 7.3.7. Diagnóstico ................................................................................................. 7.3.7.a Diagnóstico clínico......................................................................... 7.3.7.b Diagnóstico químico ...................................................................... 7.3.7.c Diagnóstico diferencial ................................................................... 7.4 38 38 39 39 7.3.8 Toma de muestras ........................................................................................39 7.3.9 Tratamiento .................................................................................................39 7.3.9.a Manejo sanitario ........................................................................... 39 7.3.9.b Control químico ........................................................................... 39 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas).......................................39 7.4.1 Características generales y distribución .......................................................... 39 7.4.2 Ciclo biológico ..............................................................................................39 7.4.3 Diagnóstico ................................................................................................. 40 7.4.4 Daños......................................................................................................... 40 7.4.5 Toma de muestras ........................................................................................40 7.4.6 Transmisión .................................................................................................40 7.4.7 Control ....................................................................................................... 40 7.4.8 Medidas preventivas .....................................................................................40 INFORMACION ADICIONAL ................................................................................... 40 Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 7 �8 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Prefacio El presente Manual fue redactado por el responsable del Programa de Control de Enfermedades de las Abejas, Dr. Mariano Bacci, de la Dirección de Luchas Sanitarias, a cargo del Dr. Marcelo de la Sota, con la colaboración de la Comisión Nacional de Sanidad Apícola (CONASA). Cuenta con la revisión de la Dirección de Epidemiología y la Coordinación General de Campo, todas dependencias de la Dirección Nacional de Sanidad Animal del Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA). El presente documento se dirige principalmente a los agentes sanitarios acreditados (Inspector Asesor Sanitario Apícola), veterinarios de las Oficinas Locales de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, profesionales privados, sectores interesados y a las autoridades provinciales, municipales y nacionales locales; por tanto, se centra en aspectos operativos del Programa Nacional de Control de Enfermedades de las Abejas. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 9 �10 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Manu al d e Pr oc e d imie ntos Enfermedades de las Abejas Policía Sanitaria Las enfermedades de las abejas que se describen se encuentran incorporadas al grupo de enfermedades a las que se refiere el Artículo 4º y el 6º del Reglamento General de Policía Sanitaria, aprobado por Decreto de fecha 8 de noviembre de 1906, reglamentario de la Ley Nº 3959 de Policía Sanitaria de los Animales por Resolución de la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Pesca y Alimentación Nº 103 del 14 de octubre de 1998 que incluye a las enfermedades de las abejas denominadas Varroasis, Loque Europea y Nosemosis y la Nº 383 del 16 de agosto de 1990 que incorpora a la Loque Americana. Al mismo tiempo por Resolución SENASA Nº 422/2003 se incluyen la totalidad de las enfermedades apícolas consideradas por la Organización Mundial de la Sanidad Animal (OIE), por lo tanto son de aplicación para las mismas las regulaciones previstas en la Ley Nº 3959 y su Decreto reglamentario, entre las que se incluye la denuncia obligatoria, interdicción preventiva ante la presencia de casos, etc. 1. Loque Americana 1.1 Características La loque americana es una enfermedad de las crías de las abejas cuyo agente causal es el Paenibacillus larvae. Los síntomas principales son la coloración pardusca creciente y el aspecto pegajoso de las larvas situadas en el interior de las celdas, mostrando estas últimas los opérculos hundidos y porosos, de aspecto grasoso o conteniendo restos resecos de larvas: «escamas». La enfermedad no supone amenaza para la salud humana. 1.2 Presentación Fue detectada por primera vez en el país en el año 1989. Son muy pocos los países en el mundo reconocidos libres de esta enfermedad ante la OIE. 1.3 Patogenia Las esporas ingresan en la colmena por medio de abejas pecoreadoras que las traen en sus buches melarios, abejas pilladoras de colmenas infectadas, herramientas del apicultor, por la introducción de panales con cría infectados, alimentación con miel contaminada y cualquier intercambio de material proveniente de colmenas enfermas. Una vez dentro de la colmena, las esporas son llevadas a la cría por medio de las abejas nodrizas que las depositan junto con el alimento en las celdillas. Las larvas ingieren estas esporas que adoptan sus formas vegetativas, dadas las condiciones adecuadas que tiene el intestino, como pH y tenor de oxígeno. Cuando la larva deja de ser tal y alcanza su estado de prepupa, las bacterias que aún no fueron eliminadas por las heces, migran introduciéndose, gracias a sus flagelos, en las células endoteliales del intestino, llegan a la hemolinfa y se reproducen hasta provocar la muerte en este estado o en uno posterior (pupa). Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 11 �Si bien no se ha comprobado con exactitud la cantidad de esporas necesarias para provocar la enfermedad en una colonia, algunos autores consideran que para una larva de 48 hs de vida, son necesarias miles de esporas, mientras que para una larva de 24 hs, alcanza con solo diez o menos esporas. Hay publicaciones que indican que debe considerarse como dosis infectante a una concentración de 50.000 esporas por litro de miel. 1.4 Diagnóstico Se sospechará de la existencia de loque americana cuando se aprecien alteraciones en las larvas y aparezcan masas filamentosas y costras oscuras o negruzcas en el piso de las celdas de cría. El diagnóstico puede confirmarse en laboratorio. La técnica más utilizada en el país es la técnica de microscopía mediante cultivo bacteriológico. Existen medios de cultivo semi-específicos para el desarrollo de esporas de P. larvae. También se utilizan para el diagnóstico algunas tinciones tradicionales como Gram, Giemsa, Raquette, azul de metileno. Pueden utilizarse antisueros específicos de conejo para la precipitación o aglutinación, bacteriófagos específicos y el test de IF y la técnica molecular del PCR. 1.5 Cuadro clínico Los panales de cría de las colmenas afectadas presentan características particulares de la enfermedad. La cría es salteada y los opérculos se ven hundidos y roídos (por acción de las abejas limpiadoras que intentan sacar las crías ya muertas), en otras celdas se pueden observar las prepupas que han perdido su posición natural, se ven estiradas y sin brillo, el color va pasando del blanco brillante original a un amarillo pálido para convertirse más adelante en un material viscoso, pegajoso y amorfo, de color marrón. Los opérculos pierden su color café característico para tornarse castaño oscuros, casi negros. Transcurridos unos 10 ó 15 días desde la muerte de la larva, aparece la característica patognomónica de la enfermedad, un material viscoso que al introducir un palito dentro de la celda que lo contiene y luego al retirarlo, se estira hasta una longitud que supera los 2,5 cm, de ahí el nombre que se le ha dado a este material: “chicle”. Más adelante este “chicle” se seca y se fija fuertemente al fondo de la celda. En este momento se lo denomina “escama”. Cuando las abejas intentan limpiar las celdas, no hacen más que reiniciar el ciclo de la enfermedad, llevando estas esporas de una celda a otra. Otra característica de las colmenas infectadas es el olor nauseabundo que despiden. 1.6 Etiología El agente causal es una bacteria denominada Paenibacillus larvae, bacilo Gram+ esporulado. Sus formas vegetativas miden entre 2,3 a 5 micrómetros de largo por 0,5 a 0,6 micrómetros de ancho, móviles mediante flagelos perítricos. Sus esporas son ovaladas, miden 1,3- 1,5 por 0,6 –0,7 micrómetros y pueden visualizarse al microscopio sus movimientos brownianos, mediante la técnica de gota pendiente (Hanging drop) modificada, característica que diferencia a las esporas de esta especie de otros bacilos esporulados que afectan a las abejas. Sólo las esporas son infecciosas. Pese a la alta virulencia que de ordinario muestran para las larvas de abejas y a la gran infecciosidad, no siempre enferma la totalidad de la colonia. Mientras que la forma vegetativa es relativamente sensible a la desecación y a la luz solar, los esporos pueden sobrevivir en panales con crías putrefactas y restos de larvas durante décadas (se han desarrollado esporos al cabo de 67 años); también en la miel perduran durante años. 12 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �1.7 Proceso epizoótico La colmena cuenta con ciertas defensas, por lo que, para que se produzca la afección de las larvas por la loque americana, existen circunstancias distintas dependientes de la vitalidad de la población afectada, del inóculo (cantidad de esporas) y de ciertas condiciones externas. 1.8 Reservorios de gérmenes Son las colmenas y panales con la enfermedad latente o clínicamente manifiesta (chicles, escamas, larvas muertas). Emplazamientos abandonados y olvidados pueden ser causa de repetidos brotes de la enfermedad. También pueden serlo la miel y otros productos apícolas. 1.9 Transmisión Los reservorios de esporas son las principales fuentes de contagio. Su importancia varía de acuerdo con la fase de la enfermedad, el tipo de manejo con las abejas y las particularidades locales y regionales. El germen ingresa en forma de esporas por vía digestiva a las larvas susceptibles, traídas por las abejas nodrizas. Al limpiar las celdas, las abejas transmiten esporas a nuevas crías. También pueden transmitirse por miel almacenada y con el polen conservado con miel contaminada; la difusión se produce también entre colmenas y emplazamientos por el intercambio frecuente de abejas (deriva, abejas desorientadas en su vuelo, abejas pilladoras, etc.). Los enjambres deben tratarse siempre como material sospechoso por lo que se tomarán los recaudos correspondientes antes de incorporarlos al colmenar. También el propio apicultor disemina la enfermedad al trabajar con colmenas, panales y utensilios contaminados, cuando pretende aumentar la población con crías infectadas, al fusionar núcleos de abejas enfermas, al transportarlas y al hacerse cargo de enjambres desconocidos, etc. 1.10 Población hospedadora Son susceptibles las larvas de abejas, sobre todo las de 24 hs. La dosis infectante de esporas de P. larvae varía de acuerdo con la constitución de la colonia y la edad de la larva hospedadora. Se producen infecciones en larvas de 24 horas de vida con 10-25 esporos (30-50%). Mientras que larvas de 48 hs. necesitan miles de esporas para enfermar. Las abejas cuentan con varios mecanismos de defensa (seudorresistencia). La acción de criba ejercida por los embudos de válvula para los esporos y sus formas germinales eliminan gran cantidad de esporos de la miel; también se elimina material infeccioso cuando las larvas jóvenes infectadas son destruidas por las abejas, así como los residuos de larvas, antes de la multiplicación del germen (comportamiento de limpieza). 1.11 Prevención y lucha Para evitar el ingreso de esporas son necesarios el control escrupuloso y continuado del estado de salud de las abejas y sus crías. En el Código Zoosanitario de la OIE se fija el plazo de incubación en 15 días. La erradicación de la enfermedad resulta prácticamente imposible por razones económicas y organiza tivas y debido a su frecuente presentación encubierta (enjambres perdidos y naturales). Las medidas se concentran en proteger las zonas libres de loque, en identificar cuanto antes la enfermedad y en el correcto saneamiento del material infectado. 1.12 Tratamiento 1.12.1 Recuperación del Material Vivo Una vez que evaluamos la conveniencia de recuperar el material vivo, debemos decidir mediante qué método lo haremos. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 13 �Existen dos métodos para este procedimiento: Trasiego Directo o Cepillado y Trasiego Doble o Paqueteado. Elegiremos uno u otro de acuerdo a la época del año, posibilidad de recurrencia, disponibilidad de recursos y practicidad del método. También debe evaluarse la posibilidad de aplicar el mejor tratamiento de acuerdo a los materiales disponibles por el apicultor que estamos asesorando. Se debe entonces proceder de la mejor manera posible pero dejando bien claro cuál es el procedimiento más efectivo. a. Trasiego Directo Lo primero que debe hacerse es encontrar a la reina y mantenerla enjaulada fuera de la colonia. Luego debemos cepillar o sacudir las abejas de la colmena enferma dentro de una nueva alza previamente esterilizada o bien, de primer uso. Antes de iniciar la sacudida podemos rociar con agua a las abejas para facilitar el procedimiento y evitar que vuelen demasiado. Una vez sacudidas todas las abejas, incorporamos panales nuevos con sus láminas de cera estampada, un alimentador con jarabe, liberamos la reina, administramos o no, el tratamiento medicamentoso y protegemos con un «poncho» (pedazo de nylon que se coloca encima de los marcos y que sirve para recubrir la colmena y protegerla del frío). No es conveniente volver a abrir la colmena hasta los cinco o siete días posteriores. b. Trasiego Doble También se lo llama paqueteado. El método consiste en trasegar todas las abejas de la colmena a un portapaquete (caja pequeña con una abertura superior por donde se introducen las abejas). Si la cantidad de abejas trasegadas no alcanzan a pesar entre 1,2 kg a 1,5 kg, se debe reforzar con abejas de otras colonias. Previo al encierro de las abejas se debe encontrar a la reina y enjaularla. Este paquete se deja bien cerrado en un lugar oscuro y ventilado durante 48 hs, luego se abre y se introduce en una colmena nueva con panales nuevos con sus láminas de cera estampada y se deja abierto para que las abejas liberen a la reina y se vayan liberando también ellas por sí solas. También se aplica el tratamiento medicamentoso y se cubre con un «poncho». Este último método si bien es más trabajoso, más caro y es necesario más material y tiempo disponible, es el más efectivo en cuanto a la recurrencia de la enfermedad. Se ha comprobado que realizando un trasiego directo hay recurrencia del 20% mientras que por medio del paqueteado, se reduce al 3%. 1.12.2 Recuperación del Material Inerte Hay varios métodos para este procedimiento. Pueden clasificarse de la siguiente manera. a. Calor - Fuego Directo Pueden flamearse alzas, pisos y techos por medio de un soplete. El material debe quedar con aspecto corchoso en un espesor de aprox. 0,5 cm. b. Calor - Inmersión Puede introducirse el material de madera en bateas con cera microcristalina ó parafina de grado alimentario a una temperatura de 130-160ºC. Se deja actuar inmerso durante al menos 10 minutos. Este es uno de los métodos de mayor eficacia en la eliminación de esporos, siendo relativamente práctico y barato. c. Calor y Presión Para este método pueden utilizarse autoclaves espaciosos. Se esteriliza a una temperatura a 121ºC y con una presión de 2 atmósferas, durante 30 minutos. 14 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �d. Químicos No son muchos los productos químicos capaces de destruir a las esporas de Paenibacillus larvae. Sin embargo la soda cáustica al 10% sumergido durante 10 minutos lo logra en el material de madera. También el óxido de etileno, aunque su uso en muy engorroso, peligroso y caro por lo que no se lo recomienda. El Hipoclorito de Sodio al 1%, durante 15 minutos, resulta efectivo sobre superficies no porosas. e. Irradiación Es el método más efectivo, además permite la esterilización de los panales, inclusive aquellos con larvas muertas por la enfermedad en sus estadios de chicle o escama. Consiste en exponer al material a una fuente de Cobalto 60, durante un cierto tiempo y una determinada dosis, de manera que los rayos gamma produzcan la esterilización del medio y la inhibición de la actividad bacteriana. 1.12.3 Eliminación del material inerte Hay casos en los que no es conveniente conservar el material. Hay que proceder de la siguiente manera: debemos realizar un pozo de una circunferencia y profundidad considerables de acuerdo al material que vamos a quemar. Con una esponja o un trapo embebido en nafta o algún otro combustible, eliminaremos las abejas, se quemarán todos los panales de la colmena afectada, tomando las precauciones necesarias para no derramar la miel, luego se echarán al fuego los techos, entretapas, alzas y pisos. Una vez incinerados, se tapa el pozo para evitar el pillaje de los restos de cera y miel que pudieran quedar. Se debe realizar el procedimiento cuando la mayor cantidad posible de abejas está dentro de la colmena. 1.12.4. Tratamiento medicamentoso A partir del año 2017 no se dispone de productos veterinarios autorizados para uso en apicultura para el tratamiento de las enfermedades bacterianas de las abejas. Los antibióticos que estuvieron aprobados para uso en apicultura, no tienen la capacidad de destruir a los esporos del Paenibacillus larvae y dejan latente el potencial infeccioso de las colonias. Sólo destruyen su forma vegetativa. De ahí la importancia del tratamiento integral del material vivo e inerte sin el uso de antibióticos. El riesgo que implica el uso de antibióticos a las colmenas se evidencia en residuos de las drogas utilizadas en la cera, miel, polen y propóleos, afectando potencialmente la salud de los consumidores, y el perjuicio que acarrea a nuestro país la comercialización de dichos productos. 1.13. Procedimientos ante la denuncia Las medidas se concentran en proteger las zonas libres de loque, en identificar cuanto antes la enfermedad y en el correcto saneamiento del material infectado. Al recibir una denuncia se debe intervenir de inmediato el establecimiento que aloja al colmenar. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 15 �Este queda bajo vigilancia oficial y se procede a realizar la inspección correspondiente. En caso de ser necesario, se convoca a un Inspector Sanitario Apícola acreditado por SENASA como apoyo técnico del veterinario oficial. El colmenar afectado no podrá movilizarse hasta tanto finalicen las correspondientes acciones de saneamiento y transcurra el tiempo necesario para asegurarse de la no recurrencia de la enfermedad. Se llenará el Acta de Constatación detallando lo acontecido durante la inspección. Se deben tomar muestras de material sospechoso, en este caso, se tomará un trozo de panal de 5 cm x 20 cm, o bien un panal entero y se remitirá al Laboratorio Central de SENASA o al laboratorio que el Programa de Control de Enfermedades de las Abejas haya autorizado a ingresar a la red de Vigilancia Apícola, junto con la planilla de envío de muestras correspondiente. (Ver 1.15) Se debe aislar preventivamente el colmenar, evitando el tránsito de personas, precintando las colmenas e informando a los apicultores para que no salga ningún material del asentamiento. Una vez confirmado el diagnóstico, se establecerá en torno al emplazamiento infectado un círculo de aislamiento de 1,5 km de radio, en el cual deben examinarse todas las colmenas y existencias de panales. Para disminuir el riesgo de difusión de la enfermedad, se utilizará en las actuaciones ropas protectoras y utensilios propios exclusivamente del establecimiento investigado o se asegurará su posterior esterilizado. El propio apicultor colaborará en el control de sus panales, quien también evitará arrojar descuidadamente material infectado. Se cerciorará de que se cumplen en forma adecuada las medidas de desinfección y tratará de evitar todas aquellas circunstancias que contribuyan a extender la enfer medad, como por ejemplo, evitar pillaje, no retirar del lugar material infectado que no fue destruido, dejar abiertas las colmenas vacías y no consentir las deficiencias higiénicas. 1.14. Procedimiento de atención de focos Si la zona está reconocida libre de la enfermedad, se destruirá todo el material afectado incluyendo abejas y material inerte (Ver Punto 1.12.3) Si la enfermedad está presente en la región se evaluará qué acciones seguir en función del alcance de la patología dentro del colmenar (cantidad de colmenas afectadas sobre el total de colmenas) y la gravedad de la misma en las colonias afectadas. Otro de los parámetros a considerar es la disponibilidad de material inerte de recambio con el que se cuenta en el lugar. A partir de entonces se podrá tomar la decisión de recuperar el material vivo e inerte y de aplicar tratamiento medicamentoso o no. (Ver Punto 1.12) Se considera que el brote de enfermedad ha desaparecido cuando en los controles de resultados efectuados al cabo de 6-8 semanas y en la primavera u otoño siguiente en la región problema, ninguna colmena exhibe manifestaciones de la enfermedad. 1.15. Toma y remisión de muestras Como se mencionó anteriormente, en todos los casos de sospecha se deberán tomar muestras y remitirlas al laboratorio central de SENASA o al laboratorio que el Programa de Control de Enfermedades de las Abejas haya autorizado a ingresar a la red de Vigilancia Apícola. Se enviará un trozo de panal sospechoso de 5 cm x 20 cm, envuelto en papel absorbente y luego en una caja de cartón, o bien el panal entero para permitir al laboratorista tener una visión completa de las características del panal. Se evitará utilizar plásticos, polietileno y nylon para contener la muestra, pues estos materiales condensan la humedad y favorecen a la proliferación de colonias de hongos que puedan alterar la muestra. 16 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Junto a la muestra se debe enviar el formulario correspondiente al envío de muestras, firmado por el veterinario de SENASA y/o el Inspector Sanitario Apícola que recolectó la muestra, y todos los datos solicitados en cuanto a la región y una breve reseña de los síntomas observados en las colmenas. Hasta tener el resultado laboratorial, todo el material sospechoso y el acompañante permanecerán en el establecimiento. 2. Loque Europea 2.1 Características También se la llama Loque benigna. Es una enfermedad bacteriana de las larvas de abejas, muy dependiente de las condiciones ambientales y el desarrollo del nido de cría. En el suelo de las celdas las larvas afectadas mueren, luego se forman costras castañas, al principio esponjosas, para luego desecarse y adoptar textura viscosa-escamosa, poco adheridas, que van cambiando de color, del blanco brillante normal hasta castaño amarillento y pardo negruzco. Cuando la infección es leve y las poblaciones tienen buena vitalidad, pueden soportar la enfermedad hasta su autocuración. Es excepcional la pérdida de estas poblaciones. La enfermedad no supone ninguna amenaza para la salud del hombre. 2.2 Presentación La loque europea (o benigna) está ampliamente difundida en casi todo el mundo. En el país ha dismi nuido la frecuencia de su aparición, pero en cualquier punto del territorio puede presentarse. 2.3 Diagnóstico Surgirá la sospecha de esta enfermedad cuando se observen panales con cría salteada, larvas redondas o estiradas muertas, por lo general antes del operculado de las celdas. El diagnóstico se corrobora en laboratorio identificando el germen causal en los residuos de las larvas afectadas. Para la diferenciación con otras enfermedades de las larvas, pueden utilizarse también antisueros específicos, bacteriófagos y el test de IF. 2.4 Etiología El agente causal de la loque europea, Melissococcus pluton White, a diferencia de la bacteria responsable de la Loque americana, no tiene la capacidad de esporular. Secundariamente intervienen otros agentes bacterianos, entre otros, el Paenibacilus alvei y Enterococcus fecalis. 2.5 Reservorios de gérmenes Gracias a la imposibilidad del Melissococcus pluton White para esporular, el material infeccioso no perdura en el material apícola inerte. Los panales de cría con larvas afectadas representan el principal reservorio. Las abejas adultas de las colmenas afectadas actúan como transmisoras de la enfermedad. 2.6 Población hospedadora Son receptoras las crías de abeja, que por lo general mueren arrolladas en las celdas antes de ser operculadas. Factores de estrés, como por ejemplo manejo y cuidados deficientes, la falta de polen o la acción de sustancias nocivas, desequilibrios entre nodrizas y adultas, traslados de colmenas, etc. pueden provocar brotes de la enfermedad. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 17 �2.7 Prevención y lucha Las medidas a adoptar se asemejan en objetivos y realización a las citadas al tratar loque americana. Las medidas para la protección de territorios limpios, así como las requeridas en caso de brotes de loque europea, se corresponden en líneas generales con las de la loque americana, si bien la benignidad de la loque europea permite limitar el aislamiento a sólo el establecimiento afectado. De acuerdo con la información proporcionada por la OIE referente al tiempo de incubación, las poblaciones sospechosas deben someterse a cuarentenas superiores a 15 días. Mediante medidas de manejo apícola puede estimularse el comportamiento de limpieza de las abejas y la selección de líneas genéticas sobre la base de esta característica. Por lo demás, basta corrientemente con eliminar los panales afectados, y en los casos más graves, con practicar el método del trasiego o paqueteado. Si bien los antibióticos son eficaces contra el agente de la loque europea, se recomienda establecer medidas preventivas de manejo más que la utilización de los mismos. Las medidas en territorios con la enfermedad enzoótica coinciden en buena medida con las de la loque americana, aun cuando no es preciso por lo común crear ningún círculo de aislamiento en torno al establecimiento afectado, con lo que los movimientos de abejas con la vecindad resultan menos limitados. 2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos Debido a que se trata de una enfermedad de escasa importancia en pérdidas económicas, difícilmente es capaz de provocar la muerte de la colonia, que la bacteria que la causa no es capaz de esporular y por lo tanto no representa mayores riesgos de dispersión, no se trata de una enfermedad cuya denuncia merezca atención inmediata. Las medidas para la protección de territorios limpios, así como las requeridas en caso de brotes de loque europea, se corresponden en líneas generales con las de la loque americana, si bien la benignidad de la loque europea permite limitar el aislamiento a sólo el establecimiento afectado. 3. Varroosis 3.1 Características Se trata de una enfermedad parasitaria provocada por un ácaro llamado Varroa destructor. En países con apicultura desarrollada como es el caso de la Argentina, se considera que es la enfermedad más grave junto a loque americana. Los ácaros se alimentan de la hemolinfa de las abejas, se fijan a los esternitos de las abejas adultas, perforan la cutícula y las debilitan afectando su comportamiento y provocando desorientación en el vuelo. También afecta a las crías. Además puede transmitir o crear las condiciones adecuadas para la aparición de otras enfermedades bacterianas, fúngicas o virales. En colonias de abejas asiáticas la cantidad de ácaros adultos varía de 0 a 700 individuos y se genera un equilibrio donde coexisten el hospedador y el parásito. Además, las varroas no llega a provocar un gran daño debido a que las abejas toleran y logran limpiar las varroas de la cría y de ellas mismas. El ciclo reproductivo se lleva a cabo en las celdas de zángano. En cambio, la interacción entre varroa y Apis mellifera no se encuentra en equilibrio. En este tipo de abejas, tiene la capacidad de reproducirse tanto en celdas de zánganos como de obreras, la reproducción es mucho mayor y puede causar la muerte de la colonia. 18 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �3.2 Presentación La descripción de Varroa sobre Apis cerana data de 1904. Recién en 1963 se detecta a este parásito sobre abejas de la especie A. mellifera. A partir de este momento, por causa del intercambio comercial entre países de un continente y otro, llega a distribuirse por todo el mundo. En la Argentina se la detecta por primera vez en el año 1976 en colmenas de Laguna Blanca, en la provincia de Formosa. En el transcurso de los dos años posteriores, la varroosis se diseminó por todo el país. La intensidad de la dispersión de esta enfermedad hace que hoy sea considerada como enfermedad endémica en nuestro país. 3.3 Daños Indirectos Además de correr el riesgo de contaminación de los productos de la colmena a raíz de los tratamientos para el control del ácaro, es posible que las varroas transmitan debido a su mecanismo de succión, enfermedades de tipo viral, aunque de cierta manera también interviene en enfermedades micóticas y bacterianas. También existe evidencia de que el ácaro es capaz de transportar esporas fúngicas del agente causal de la cría yesificada, Ascophaera apis en su superficie y así diseminarlas por la colmena. Sin embargo, esta circunstancia desde el punto de vista epidemiológico, no es significativa, pues los cuerpos fructíferos se encuentran presenten todo el tiempo en la colmena esperando la aparición de factores predisponentes para desarrollar la enfermedad. Es aquí donde se cree que varroa juega un papel importante ya que produce el debilitamiento de la colmena y el consecuente desequilibrio que favorece la aparición de momias micóticas. En cuanto a las enfermedades bacterianas, se destaca la capacidad del ácaro para transportar esporas de Paenibacillus larvae. Aunque no interviene en la patogenia de la enfermedad. Debido a la forma de alimentación del ácaro, perforando la cutícula de las abejas y succionando su hemolinfa, se lo considera un agente ideal para la inoculación de partículas virales. Otro de los daños indirectos que pueden mencionarse es la acción de los pesticidas sobre colonias infestadas por varroosis. La varroa, al alimentarse del adulto, disminuye la concentración de proteínas y ácidos grasos en hemolinfa, hecho que hace aumentar la susceptibilidad de las abejas a las dosis de pesticidas que en otras circunstancias serían inocuas, y que provoque en presencia de una alta tasa de infestación, la muerte de la colonia. 3.4 Etiología Varroa destructor es un ácaro que presenta dimorfismo sexual. Esto quiere decir que la hembra y el macho se diferencian en forma y tamaño. Las hembras adultas tienen la forma de un escudo oval, el cuerpo deprimido dorsoventralmente, son de color pardo rojizo y de un tamaño que varía aproximadamente entre 1,2 mm de largo por 1,5 mm de ancho. Su cuerpo está recubierto de vellos delgados que cumplen la función de palpación y les permiten fijarse a las abejas adultas durante el vuelo. Tienen cuatro pares de patas gruesas y cortas cuyos tarsos finalizan con unas ventosas que les permite fijarse a superficies planas. Su aparato bucal está adaptado para picar y chupar. El período de vida de una varroa puede ser de algunos días o de varios meses, dependiendo de la temperatura, la humedad y de la actividad reproductiva. Los machos son más pequeños, miden de 0,4 a 0,8 mm y presentan un color blanquecino grisáceo o amarillento. Pueden encontrarse solamente en las celdas de las crías. Los machos tienen sus quelíceros adaptados para la transferencia de esperma, por lo que no pueden alimentarse. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 19 �3.5 Ciclo Biológico Cuando una hembra fecundada se desprende de una abeja, se dirige inmediatamente a una celda próxima a opercular (aparentemente el ácaro detecta algunos componentes de la hormona del operculado que segregan las larvas -9 días en la obrera y 10 días en los zánganos-). Este momento coincide con el 5º estadío del desarrollo larval (L5). La hembra fértil inicia el ciclo al entrar en la celda. Puede entrar una sola o con otras hembras. Una vez que alcanza el interior de la celda, se aloja en el alimento de la larva y se mantiene inmóvil hasta que ésta lo consuma. Luego, succiona la hemolinfa de la pupa y comienza la postura de un primer huevo. Cuando esto sucede ya han transcurrido entre 60 a 70 horas desde su ingreso a la celda. Este primer huevo dará origen a un ácaro macho; 30 hs. más tarde pondrá otro huevo que dará origen a un varroa hembra, a partir de este momento continuará su postura cada 30 hs. con huevos que originarán varroas hembra. Una vez que el macho alcanza la madurez sexual, fecunda a sus hermanas aún sexualmente inmaduras quienes conservan el esperma en su espermateca. Luego de la cópula, el macho muere al igual que las hembras inmaduras una vez que nace la abeja adulta. El ciclo de huevo a adulto es en la hembra de 8 a 9 días mientras que en el macho es de 6 a 7 días. Una hembra de varroa fecundada puede poner hasta 5 huevos en las celdas de obreras y hasta 7 en las de zánganos. La cantidad de ovoposiciones dependerá del tiempo que necesita la larva de la abeja para completar su ciclo y llegar a adulta. Es por ello que la cantidad de huevos varia de acuerdo a la especie de abeja y al tipo de individuo (zángano, obrera, reina). 3.6 Cuadro clínico Cuando los niveles de infestación son bajos, no hay manifestación evidente de la enfermedad. Cuando hay alto grado de parasitismo pueden verse abejas con alas y patas deformadas y el abdomen reducido. En los marcos del nido de cría pueden verse los opérculos roídos y cría salteada. Si una colmena entra a la invernada con niveles de infestación superiores al 5%, es muy probable que esa colonia muera, pues en otoño, se produce una mayor intensidad del parasitismo al achicarse la colonia. Muchas colonias en esta situación suelen fugarse de la colmena en pleno invierno dejando un puñado de abejas y las reservas. Los daños que ocasionan pueden clasificarse como directos e indirectos. Entre los primeros, si no se produce el enjambre o directamente la muerte de la colonia, se puede mencionar una reducción del peso de las abejas y reducción del tiempo de vida. Tienen más posibilidades de desorientarse al regresar a la colmena, se reduce las proteínas y los cuerpos grasos de la hemolinfa, por lo que aumenta la susceptibilidad de ciertos tóxicos. Si estuvieron parasitadas durante su desarrollo en la celda, además de nacer con deformidades y de menor tamaño, la glándula hipofaringea puede sufrir hipoplasia. En los casos de alto parasitismo, la abeja no logra nacer y permanece muerta en la celda. Dentro de los daños indirectos, puede mencionarse la posibilidad de contaminación de la miel y otros productos de las colmenas por medio de los acaricidas de síntesis. Además, como ya fuemencionado, puede transmitir enfermedades de tipo viral. 3.7 Diagnóstico Hoy es prácticamente imposible encontrar colmenas en las regiones de mayor producción que no tengan varroas parasitando las colonias. Es por ello que los métodos de diagnóstico se orientan a determinar de manera cuantitativa la presencia del parásito, estimando los porcentajes de infestación. 3.7.1 Prueba del frasco Es el método más utilizado para determinar el porcentaje de infestación de los apiarios. Se debe tener en cuenta que el ácaro presenta al igual que muchos ectoparásitos la característica 20 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �de agregación. Esto quiere decir que tendremos áreas dentro de la colmena con gran cantidad de ácaros y otras áreas libres de estos. Por lo que un grupo de abejas adultas tendrá un alto nivel de parasitismo y otro grupo niveles de infestación ínfimos. Esto puede corregirse tomando, en el momento de la recolección de la muestra, unas 300 abejas de ambas caras de tres panales diferentes de cada colmena. De esta manera nos aseguramos una muestra representativa. Se deben muestrear 6 colmenas cuando el apiario tiene hasta 50 colmenas o el 10% de las colmenas del apiario cuando éste tiene más de 50 colmenas. Una vez tomada la muestra mediante un frasco de boca ancha, se le introduce agua y un poco de detergente o alcohol al 70% para lograr el desprendimiento de los parásitos. Después de agitar el recipiente durante al menos cinco minutos, filtramos el contenido y contamos los ácaros y las abejas. La proporción de ácaros sobre la cantidad de abejas examinadas, nos da multiplicando por 100, el porcentaje de infestación. Ej. 12 ácaros y 300 abejas: 12/300 x 100= 4% de infestación. Es importante tener en cuenta que este tipo de diagnóstico sólo tendrá en cuenta el parasitismo en fase forética, es decir que no se estimará el nivel de infestación de la cría. Cuando se realiza entrada la temporada y el nido de cría está desarrollado, se estima que el 70% de los ácaros están dentro de la celda, por lo que el resultado arrojado se referirá solo al 30% de los ácaros que tiene esa colonia. Métodos similares pueden describirse con la utilización de éter. Otro se describe con la utilización de azúcar, logrando el desprendimiento de los ácaros al agitar el recipiente y a su conteo. La ventaja de estos métodos es que no es necesario matar a las abejas. 3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso Es un método utilizado para detectar la enfermedad y estimar el nivel de parasitismo de la colmena. Además, es el método que utilizaremos para determinar la eficacia que presenta el producto acaricida que estamos usando. El piso trampa para varroa, consiste en un piso móvil de madera cubierto por una malla metálica que permite el paso de los ácaros caídos, pero no el de las abejas para limpiarlo. En lugar de este piso comercializado por algunas firmas proveedoras de insumos, pueden utilizarse una cartulina o una bandeja de plástico o chapa, siempre provistas de malla que impida la limpieza por parte de las abejas. En cualquiera de los casos debe untarse alguna sustancia adhesiva como vaselina o aceite vegetal hidrogenado para que queden adheridos los ácaros caídos y después recolectarlos para el conteo (si se utiliza para pruebas de eficacia no debe colocarse sustancia adhesiva). Al retirar el piso y al contar los ácaros muertos en forma natural obtenemos una aproximación del parasitismo de esa colonia. 3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría Este método consiste en tomar un panal de cría operculada de la colmena en estudio. Luego, se desoperculan unas 100 a 150 celdas de cría, y se cuenta el número de ácaros presentes en las celdas. Se debe trazar una línea diagonal y desopercular las larvas sobre esa línea. Otra opción sería una guarda griega o un zigzag. Luego se hace la relación entre la cantidad de ácaros y el número de larvas inspeccionadas. De esta manera se obtiene un resultado sobre la cantidad de ácaros en cría. 3.7.4 Método químico Este método consiste en colocar en una colmena con piso trampa, tres principios activos farmacológicamente diferentes a la vez, y a las 24 hs. recolectar los ácaros caídos. Se supone que con ese Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 21 �choque químico se elimina el 100% de los varroa, dato que puede extenderse para estimar la población de las colonias vecinas. 3.8 Difusión La difusión de la varroosis se ve facilitada dentro de los apiarios por medio de los zánganos; por abejas perdidas, hecho que ocurre agravado por una disminución en el sentido de la orientación en caso de sufrir la parasitosis, y por pillaje. Entre aparios, además de transmitirse por los mismos mecanismos que dentro de un mismo apiario, se puede introducir la parasitosis con la incorporación de material biológico infestado (reinas, paquetes, enjambres y núcleos nuevos). La trashumancia contribuye también a la difusión de esta enfermedad, agravando las parasitosis en aquellos lugares en los que se concentran muchas colmenas en una determinada época del año. 3.9 Reservorios de parásitos Los enjambres silvestres y los apiarios abandonados son posiblemente, los más importantes núcleos de enfermedad. 3.10 Transmisión Las principales fuentes de contagio son las poblaciones enfermas, los panales de larvas infestados y abandonados, y los enjambres producidos a partir de ellos. La transmisión se produce a través de las abejas adultas sobre todo por los zánganos, por abejas adultas desorientadas y pilladoras. La diseminación biológica estará sujeta a la densidad de la población de abejas, la capacidad de vuelo de las mismas, características del entorno, distribución de los emplazamientos y el grado de infestación. La propagación se ve aumentada varias veces con la práctica de la trashumancia. 3.11 Población hospedadora Es receptora la totalidad de la población. Presentan mayor susceptibilidad las larvas de zánganos por razones físicas y biológicas. En las celdillas de obreras, la segunda mitad de la puesta a partir del 4º huevo ya no proporciona ninguna hembra de Varroa con posibilidades de vida, por lo que resulta una tasa de descendencia de 2,6 (cría de zánganos) y 1,3 (cría de obreras) ácaros hijos fértiles por ciclo de reproducción. Los 16 días de duración del período de incubación de las celdillas de abeja reina constituyen un tiempo demasiado corto para el completo desarrollo del Varroa. 3.12 Prevención y lucha La varroosis de las abejas es una enfermedad endémica en Argentina. En la actualidad es imposible erradicarla considerando la existencia inevitable de enjambres naturales. El sacrificio general de las poblaciones infectadas no proporciona ningún éxito en el saneamiento, ya que por lo regular, cuando se descubren los ácaros, ya están infestados otros emplazamientos. La estrategia se centra en combinar medidas en la explotación apícola con tratamientos acaricidas para reducir la población de parásitos, frenar su difusión, y con ello atenuar las pérdidas económicas. A tal efecto resultan imprescindibles el escrupuloso control del estado de salud de las abejas y la decidida y disciplinada colaboración de los apicultores trabajando conjuntamente a nivel regional. 3.13 Tratamiento Al incrementarse considerablemente durante los últimos diez años la prevalencia parasitaria, y a la progresiva disminución de la susceptibilidad de los ácaros a ciertos agentes químicos, las preguntas que se plantea el apicultor con el paso del tiempo es cuándo y con qué tratar. Nadie tiene hoy la «receta» precisa. 22 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Lo ideal para el control de la varroosis, sería contar con herramientas de tipo biológico. De esta manera evitaríamos los riesgos de contaminación de los productos de la colmena con agentes químicos y los riesgos de sus efectos tóxicos sobre las abejas y sus crías. Desafortunadamente, por las características del ciclo biológico de la varroa, no hay posibilidades de intervenir en su etapa reproductiva mediante, por ejemplo, la TIE: Técnica de Insecto Estéril o machos estériles, que evita la descendencia de las plagas en otras actividades productivas. Dentro de este tipo de control solo contamos, por el momento, para mantener baja la población de ácaros, sobre todo en pequeñas explotaciones debido a lo engorroso del método, la utilización de panales zanganeros. Hay estudios que confirman la eliminación de más del 60% de varroas mediante la incorporación y posterior eliminación una vez operculados, de dos panales zanganeros. Sin embargo se debe prestar especial atención a las colmenas en las que se aplica este método sin dejar más de quince días los panales zanganeros dentro de la cámara, pues nacería un número muy elevado de ácaros comprometiendo la viabilidad de la colonia. Por eso se recomienda utilizarlo sólo en explotaciones a pequeña escala y en apiarios de fácil acceso. Otro de los métodos que se está estudiando para evitar el uso de agentes químicos para el control de la varroosis, es el de seleccionar líneas genéticas con alto comportamiento higiénico, tolerantes a la varroosis. Este fenómeno consiste en implementar un sistema de selección y mejoramiento genético identificando y eligiendo para la reproducción de material vivo, las colonias que presentan una menor susceptibilidad a la enfermedad, dada por la capacidad de eliminar las varroas adultas y de detectar y remover las crías afectadas por el parásito. Sin embargo, es probable que todo este mecanismo de selección, lleve mucho tiempo hasta que pueda extenderse a las distintas regiones geográficas y que sean aplicables como única herramienta para el control del ácaro. Por el momento nos vemos obligados a la utilización de productos químicos, de síntesis u orgánicos. 3.13.1 Control químico Podemos definir como un producto «ideal» a aquel que no altera el funcionamiento interno de la colonia, que es práctica su aplicación, el que presenta mayor eficacia con la menor cantidad de aplicaciones, que no signifique un riesgo de contaminación de la miel y la cera, que no sea perjudicial para la salud humana y que sea de bajo costo. Existen varios métodos para el control de la varroosis mediante diferentes productos con distintas formas de acción y elaborados con diferentes principios activos. 3.13.2 Formas de acción de los acaricidas Sistémicos: Ingeridos por las abejas. Por medio de la hemolinfa, produce la muerte de los ácaros que se encuentran sobre las abejas adultas. El inconveniente en la utilización de los productos que actúan de esta manera, es que hay que repetir las aplicaciones por lo que tiende a ser menos práctico que los de contacto. De contacto: También eliminan solo las varroas de las adultas, pero quedan dentro de la colmena por más tiempo y permanecen activos durante todo el ciclo reproductivo de las varroas. Es por eso que con una sola aplicación de alguno de estos productos, basta. 3.13.3 Formas de administración Humos o gases: Son volteadores de ácaros que parasitan abejas adultas. Se aplican por medio de gasificadores de propano o con el ahumador. Por evaporación: Así actúan las sustancias orgánicas. Esto está íntimamente relacionado con la Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 23 �temperatura ambiente y las características de los soportes y dosificadores. Solución: Hay ciertos productos que se aplican puros en recipientes dentro de la colmena y gracias a la bioventilación producida por las abejas, se difunde. También puede mencionarse dentro de este grupo a los que se aplican en el jarabe para su acción sistémica. Tiras de liberación lenta: son tiras por lo general plásticas, que por el contacto con las abejas liberan lentamente las partículas del activo. 3.14 Control de la Varroosis El ácaro V. destructor causa anualmente serias pérdidas en la producción apícola del país. En muchos casos ocasiona la muerte de las colonias, pero en otros genera serias pérdidas de producción, debido a un debilitamiento general de las colmenas. Esto se hace más acentuado en áreas con escasez de polen donde el déficit proteico ocasionado suele causar la muerte de las colmenas; o en zonas donde los inviernos son poco rigurosos y la cría permanece durante todo el periodo facilitando una reproducción ininterrumpida del ácaro mientras disminuye paulatinamente la población de abejas. Por estos motivos, entrar a la invernada con alto número de abejas, buena cantidad de reservas y sobre todo un bajo número de ácaros es imprescindible para lograr un buen desarrollo de las colmenas durante la primavera. Existen muchas opciones de control en el mundo, pero es necesario diseñar estrategias de control en cada región o en cada país ya que tanto el ácaro como las características climatológicas, íntimamente vinculadas a su reproducción, son propias de cada lugar. Sin embargo, existe un consenso mundial sobre la necesidad de incorporar al plan de tratamientos contra el ácaro una aplicación de acaricidas hacia fin de la cosecha, llamado tratamiento de verano (Imdorf, et al. 1996; Elzen, et al, 2001). Este tratamiento permite disminuir la carga de Varroa a fines de verano e ingresar al otoño, momento de gran reproducción, con un reducido número de ácaros. Basadas en esta información, se detallan a continuación una serie de recomendaciones para implementar un plan de control estratégico tendiente a disminuir las poblaciones de Varroa en las colmenas y los riesgos de que permanezcan en la miel residuos de los productos utilizados. 3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis Usar los productos acaricidas autorizados por SENASA para ser utilizados en apicultura. Deben ser de origen conocido, contar con especificaciones de uso, vencimiento y formula completa. Determinar los porcentajes de infestación antes y después de la aplicación del tratamiento. Emplear la dosificación correcta. Alternar los distintos métodos de control utilizados, de manera de eliminar en el siguiente tratamiento a los ácaros que resistieron la acción del producto utilizado anteriormente. Respetar los tiempos de carencia de los productos acaricidas Realizar curas sistemáticas entre los apicultores de la región, utilizando productos que garanticen la disminución de los niveles de infestación y los mínimos riesgos de contaminación de los productos de las colmenas. 3.14.2 Plan estratégico. Manejo Integral La magnitud del alcance de la enfermedad dependerá principalmente de las condiciones ecológicas de cada región y de la movilización de colmenas, que por lo general, adelantan la reproducción del ácaro. Por eso se recomendarán dos o tres curas, según los casos. Las siguientes recomendaciones se basan en cuatro pilares fundamentales necesarios para asegurar el éxito de las estrategias de control: 24 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �a. La rotación de acaricidas. b. El aumento en la utilización de acaricidas orgánicos. c. La evaluación del grado de infestación antes y después de aplicado el tratamiento. d. Tratamientos zonales coordinados. 3.14.2.a Rotación de los Principios Activos Es indispensable para evitar que los ácaros varroa desarrollen el fenómeno de resistencia a los acaricidas utilizados actualmente, la rotación obligatoria de los productos. La quimiorresistencia es un fenómeno en el que una parte de la población de individuos toleran las dosis que para el resto de la población de la misma especie son letales. Es una relación entre el producto y el parásito donde parte de la población de ácaros sobreviven a las dosis de aplicación recomendadas por el fabricante del producto. Los ácaros varroa al igual que otros insectos, han demostrado una alta capacidad para hacer frente a los plaguicidas debido a sus poblaciones numerosas y al corto intervalo entre generaciones. Esto eleva la posibilidad de que existan individuos más resistentes que el resto y favorece su multiplicación. Se debe recordar que la resistencia se transmite genéticamente entre una generación y otra. Se predispone a este fenómeno con el mal uso de los productos, las sub y sobredosificación, utilización de los productos durante un tiempo más prolongado a lo recomendado, y por la utilización ininterrumpida del mismo producto entre una cura y otra. Entonces para evitar el desarrollo de resistencia y con la finalidad de eliminar los ácaros varroa que pudieran haber resistido a la cura anterior, se cambiará de principio activo para el nuevo tratamiento. Por eso se debe exigir al proveedor que especifique además de la dosis a emplear, formas de uso y fecha de vencimiento del producto; el nombre del principio activo con el que fue formulado. Recuerde que todos los productos veterinarios están elaborados con excipientes, vehículos y un principio activo (ej. Amitraz, fluvalinato, flumetrina, Ac. oxálico, Ac. fórmico, etc.). A modo de ejemplo: Si Ud. curó en el otoño con Amitraz, en primavera lo debe hacer con ácido oxálico o fórmico. Si para la cura de verano utilizó un piretroide (ej. fluvalinato), no debe usar para la cura de otoño ningún piretroide (fluvalinato o flumetrina). Utilizando otro principio activo de características farmacológicas distintas, se asegura eliminar la población que pudiera haber resistido a la acción del producto anterior. Para detectar fenómenos de este tipo, resulta imprescindible que el apicultor comience a evaluar de un modo más certero la verdadera eficacia de los productos que utiliza. Para ello, es importante conocer los métodos de determinación del porcentaje de infestación para aplicarlos luego del tratamiento. En caso de determinar resistencia se debería dejar de usar el activo por al menos dos temporadas de modo de eliminar la población de ácaros resistentes. Aunque los acaricidas orgánicos por definición no producen resistencia, no es aconsejable utilizar siempre el mismo acaricida orgánico, a fin de evitar mecanismos comportamentales de Varroa, que disminuyan la eficacia de los mismos. 3.14.2.b Evitar los Residuos Para evitar los residuos en mieles es indispensable conocer el momento de aplicación de cada una de las drogas a utilizar. Se debe prestar mucho cuidado y trabajar con conciencia para evitar que queden residuos químicos en los productos de la colmena. La presencia de estas sustancias no sólo ponen en Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 25 �riesgo la continuidad del comercio de nuestra miel, sino que también constituyen un riesgo para las abejas y la salud humana. Los productos de la colmena pueden contaminarse en menor o mayor grado de acuerdo a la naturaleza química de la sustancia con la que estamos trabajando y la afinidad del mismo con la miel o la cera. Sin embargo que determinado producto tenga mayor afinidad por la cera, no significa que no pueda concentrarse en la miel, de hecho se han detectado mieles contaminadas con ellos y en menor escala en polen y propóleos. Por eso se debe suspender la aplicación de los productos de síntesis al menos 8 semanas antes de la colocación de las alzas melarias (tiempo de carencia), y aplicarlo solo en la cámara de cría. En caso de optar por el uso de coumaphos, debe considerarse administrarla básicamente en otoño o fines de verano, luego de la última cosecha teniendo en cuenta que en nuestro país está demostrada la existencia de varroas con altos niveles de resistencia a este principio activo. En primavera es aconsejable utilizar acaricidas orgánicos (oxálico, fórmico, timol) para evitar el riesgo de dejar residuos. Tenga en cuenta que los acaricidas deben dejar de aplicarse al menos ocho semanas antes de la mielada (período de carencia). Utilice las dosis recomendadas y respete las indicaciones de uso. En general para disminuir las visitas a los apiarios se varían las formas de aplicación generando problemas colaterales como residuos o mayor nocividad para las abejas, disminuyendo a la vez la eficacia. 3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación En general una vez realizados los tratamientos, muchos apicultores esperan hasta las próximas revisaciones para ver el estado de las colmenas. Por ser la varroosis una de las principales causas de pérdidas de colmenas, es básico verificar el éxito del tratamiento aplicado, ya que por cambios en el clima, alto nivel de infestación, apiarios cercanos sin tratar, enjambres, principios activos sin la eficacia suficiente o mal administrados, podemos mantener una alta carga de ácaros en el apiario tratado. Para realizar los diagnósticos pre y pos tratamiento podemos utilizar el método descripto en el punto Diagnóstico de Varroosis (1.b) 3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado Como cuarto pilar se considera a la coordinación zonal entre apicultores para la realización de tratamientos simultáneos en todos los apiarios y con el mismo principio activo. De esta manera se evita la reinfestación a través de los apiarios cercanos y se elimina en forma masiva la mayor cantidad posible de ácaros. Regiones bajo un plan sanitario pueden realizar esta acción conjunta. Tenga en cuenta que si usted cambia de principio activo por no haber obtenido buena eficacia quizás a causa de la resistencia, y su vecino no lo hace, la medida será inútil pues los ácaros resistentes del vecino llegarán a sus colmenas en un momento u otro a través de zánganos, abejas pilladoras, enjambres, etc. 3.15 Plan de Curas El plan consiste en la aplicación ya sea de uno, dos o tres tratamientos durante el primer año y una evaluación del éxito a fin de temporada y la elaboración del plan para el segundo año. La cantidad de tratamientos variará según el ciclo biológico de las abejas y por ende de los ácaros, coincidente con las características climáticas de cada zona. También se tendrá en cuenta el eventual adelanto de las temporadas apícolas por trashumancia o incentivo. 26 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �A. En las zonas con inviernos rigurosos, en donde la primavera comienza tarde y no hay desarrollo de cría durante el invierno, será suficiente aplicar dos tratamientos. 1. Primaveral tardío – cuando empiece a desarrollarse la cría pero no se ha extendido totalmente. Este tratamiento afectará principalmente a los ácaros en estado forético. Es aconsejable realizarlo con algún acaricida orgánico o de baja residualidad. 2. Principios de otoño – cuando se termina la cosecha y empieza a disminuir el nido de cría. En estas zonas se trata aproximadamente cada seis meses. B. En las zonas con inviernos menos rigurosos, o en el caso de la transhumancia, es aconsejable hacer tres tratamientos. Los tratamientos indispensables para el primer año se realizarán en las siguientes fechas: 1. Principios de primavera: consistirá en un tratamiento de las colmenas cuando el nido de cría empieza a expandirse. Atacará básicamente a los ácaros en estado forético. 2. Un tratamiento de verano, al finalizar la última vuelta de cosecha, con acaricidas que puedan actuar sobre los ácaros en estado forético y a la salida de su periodo reproductivo. 3. Un tratamiento de otoño, aplicado cuando el nido de cría se haya reducido en forma importante y los ácaros se hallen en su totalidad en estado forético (sobre las abejas). En estos casos es importante desarrollar a la vez técnicas de manejo que disminuyan el número total de ácaros, como ser, la formación de núcleos con mayor cantidad de cría operculada y realizar un tratamiento luego de quince días de formados ya que antes que comience la postura de la nueva reina siempre existirá un periodo en donde todas las varroas estén sobre las abejas. Listado de principios activos con efectos acaricidas: Primavera - Salida del invierno (apertura del bolo invernal - activación del nido de cría): Oxálico Fórmico Timol Amitraz. Verano (después de la última vuelta de la cosecha): Fórmico Amitraz Coumaphos Fluvalinato Flumetrina. Otoño (antes de entrar a la invernada): Timol Oxálico Amitraz Coumaphos Fluvalinato Flumetrina. Listado de productos aprobados para su uso en apicultura: No todos los principios activos acaricidas mencionados están disponibles en el mercado a través de productos veterinarios aprobados por SENASA para su uso en apicultura. Por lo tanto, el Plan de Curas deberá diseñarse teniendo en cuenta, entre otras cosas, que los productos elegidos se encuentren aprobados por la autoridad competente para su uso en apicultura, lo cual deberá chequear a través del Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 27 �listado actualizado difundido por el Organismo. El registro de productos veterinarios es dinámico y sufre, eventualmente, bajas y altas de productos. Por lo tanto, previo a la adquisición de productos acaricidas se deberá consultar y verificar que los productos elegidos estén aprobados. Respetando el período de carencia y utilizando exclusivamente medicamentos autorizados se asegura la calidad y se garantiza que no se favorecerá al desarrollo de resistencia ni quedarán residuos en los productos de la colmena. Por otro lado, durante toda la temporada los apicultores podrán utilizar mecanismos para la disminución de la carga del ácaro, pero que es sabido no controlan las poblaciones. Los mecanismos permitidos son: Pisos trampa para Varroa. Utilización de panales zanganeros. Importante El uso de cualquiera de estos mecanismos, no elimina ninguno de los tratamientos indispensables para el control de Varroa. A raíz de la gran cantidad de información circulante que carece de rigor científico en torno al uso de la vaselina y a la gran mortandad causada en colmenas solo tratadas con vaselina, nos vemos en la obligación de advertir que la vaselina no es un acaricida y que su eficacia real no supera los límites de daño económico. 3.16 Procedimientos ante la denuncia El apicultor vigilará de forma continuada, por su propia iniciativa y por estar obligado legalmente, el estado sanitario de sus abejas aplicando los métodos de diagnóstico descriptos. Figura 1. Curva estimada de desarrollo de población de abejas en colmenas y momentos de aplicación de acaricidas. 1i, 2i y 3i: los tratamientos indispensables para el caso B. Tener en cuenta que esta curva corresponde a una zona de clima templado por lo que debe adaptarse de acuerdo al desarrollo poblacional de otras regiones. Ya que la trashumancia es uno de los factores difusores de la parasitosis, requisitos previos para proteger los territorios limpios son la colaboración del Servicio Veterinario oficial en el exacto cumplimiento de los programas de desplazamientos de colmenas y del oportuno mantenimiento de éstas por el apicultor afectado, así como la observación de las pertinentes disposiciones legales. Al recibir material vivo, se someterá a un diagnóstico de la enfermedad y al inmediato tratamiento en caso de que fuera necesario. 28 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �3.17 Procedimientos ante sospechas En caso de sospecha, se pondrán en práctica las medidas generales habituales para la prevención de epizootias (aislamiento del asentamiento, toma de muestras y envío al laboratorio autorizado, denuncia obligatoria). Comprobado el diagnóstico, se creará en torno al emplazamiento afectado una zona de aislamiento de 1,5 km de radio, en la que no se permitirá el tránsito de material vivo, debiendo someterse todas las colmenas y asentamientos en ella ubicados a subsiguientes investigaciones y tratamientos acaricidas correspondientes. Las poblaciones de emplazamientos infestados no pueden movilizarse del lugar hasta tanto transcurran 48 horas de la aplicación de un producto acaricida oficialmente autorizado para uso en apicultura y siguiendo las instrucciones de empleo del mismo. Quedará constancia escrita del tratamiento seguido. Si es necesaria la recepción de colmenas desde otro establecimiento, todas las poblaciones del asentamiento afectado habrán sido sometidas antes, fehacientemente, al tratamiento medicamentoso. Los tratamientos deben combinarse con otros procedimientos que hacen a la estrategia de control de la enfermedad. (Ver punto Estrategias de Control de Varroosis) 4. Nosemosis 4.1. Características Es una enfermedad parasitaria intestinal, invasiva y contagiosa que afecta a las abejas adultas (obre ras, zánganos y reina). Es provocada por un hongo llamado Nosema apis y, más recientemente, Nosema ceranae. Su distribución es cosmopolita, aunque se la considera importante en países templados ya que está muy asociada a factores climáticos como la temperatura, humedad y precipitaciones. Provoca grandes daños económicos al reducir significativamente la capacidad de producción. 4.2. Daños directos Debido a las fuertes lesiones en el intestino medio, las abejas aparecen con el abdomen abultado, débiles, presentan inicialmente cierta excitabilidad, después letargo, pierden la capacidad de vuelo, se imposibilita el aguijoneo, sufren una notable parálisis y finalmente se mueren. Desde el punto de vista fisiológico, se pierde la incorporación de nutrientes, la concentración de lípidos y proteínas en hemolinfa y la vida media de las abejas afectadas se reduce de un 20 a 40%. Esto provoca una marcada disminución en la población de abejas adultas en la colonia. No afecta directamente a la cría. 4.3. Daños Indirectos Las consecuencias de la parasitación por Nosema, son de suma gravedad. Al estar lesionado el aparato digestivo, las abejas no pueden digerir adecuadamente los alimentos por lo que el consumo de las reservas aumenta entre un 20 y 30%. Esto lleva a una disminución en la producción de miel. Al no poder digerir los nutrientes necesarios para el correcto funcionamiento del sistema glandular, se pierde la actividad de las glándulas hipofaríngeas que terminan atrofiándose y dejan de ser funciona les, por lo tanto, la cría tampoco recibe la alimentación correcta en cantidad y calidad. Las abejas jóvenes mueren rápidamente, no pueden reemplazar a las pecoreadoras y se desencadena un desequilibrio en la población, la colonia se debilita y nunca llega a desarrollar. Debido al daño producido en el tracto digestivo, no se aprovechan convenientemente los alimento s ingeridos por la abeja, provocando una debilitación progresiva y generalizada de la colonia, que se manifiesta en la disminución de su vitalidad, disminución de la vida media de las abejas, de los movi mientos y la respuesta a los estímulos de los individuos afectados. Las reinas enfermas, además de estos síntomas, presentan una disminución en su actividad de postura. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 29 �La tolerancia a otras enfermedades es menor cuando las colonias están afectadas por Nosemosis, ya que algunos virus que ingresan al organismo de la abeja por vía digestiva encuentran el medio óptimo para su desarrollo en aquellas abejas cuyo intestino se encuentra alterado por acción del parásito (virus X, Y y Filamentoso). 4.4. Etiología Nosema apis y ceranae son organismos unicelulares, hongos microsporidios, caracterizados por un largo filamento polar arrollado (hasta 400 micras de largo). Son parásitos intracelular obligados. Presentan formas esporulares de resistencia llamadas esporos que miden entre 3,5 micras de ancho por 6 de largo (existen ligeras diferencias de tamaño según sea de apis o ceranae). Estos esporos son ovalados y refringentes al visualizarlos al microscopio óptico. Constituyen la forma infectante de la nosemosis. Los esporos de Nosema apis y ceranae viven como parásito en las células del epitelio del intestino medio y poseen una membrana gruesa conformada por tres capas que los hacen sumamente resistentes. En el agua congelada pueden permanecer resistentes durante años; en la miel tres meses; en el suelo y a la sombra, dos meses; y en la abeja en estadío de putrefacción, entre 10 y 20 días. Se destruyen por calentamiento a 59 ºC durante diez minutos en la miel y en el agua a 65 ºC durante un minuto. 4.5. Población susceptible La enfermedad afecta a abejas adultas, tanto a obreras, zánganos y reinas. Es muy importante la temperatura en la evolución del parasitismo de Nosema. Si ésta se mantiene entre 30 y 35 ºC, una sola espora es capaz de infectar todo el ventrículo. Aunque la dosis infectiva media es de aproximadamente 30 o 90 esporas por abeja. Cuando la infección alcanza su nivel máximo, el organismo de una sola abeja puede albergar entre 30 a 50 millones de esporas. 4.6. Patogenia Las esporas son ingeridas por las abejas desde el alimento o el agua contaminada, llegan al buche melario y a partir de aquí, después de atravesar el proventrículo, se dirigen al intestino medio después de unos diez minutos de haber sido ingeridos, donde favorecidas por los jugos intestinales, germinan. La germinación ejerce una presión interna en el esporo por la cual se produce la evaginación del filamento polar y gracias a éste, penetran a las células de la pared ventricular. A través del filamento, que es hueco, se libera el contenido del esporo e invaden la célula. Allí se multiplican y desarrollan con mucha rapidez utilizando los componentes de la célula parasitada. La infección se inicia en la parte posterior del ventrículo y de allí se disemina a la parte anterior. Una vez dentro de la célula, el parásito aumenta su tamaño, inicia la división celular y pasa por todos los estadíos (meronte, merozoíto, esporonte, esporozoíto) hasta finalizar con una enorme cantidad de nuevos esporos. Bajo condiciones óptimas, el desarrollo se completa entre 48 y 60 horas. Las células endoteliales afectadas por distintas fases del desarrollo del parásito se desprenden del revestimiento intestinal y caen a la luz del intestino liberando nuevos esporos y estadíos evolutivos de Nosema. Una parte de estos nuevos esporos infestan las células endoteliales vecinas sanas o regeneradas (autoinfección) y otra parte se elimina por medio de las heces al medio ambiente, reiniciando el ciclo en otras abejas. Como se mencionó anteriormente, la temperatura óptima para el desarrollo de las esporas es de 30 a 35 ºC. Si la temperatura se mantiene por encima de los 30 ºC, en dos semanas se infecta la totalidad del intestino medio de la abeja, provocando un gran daño celular. Se provoca la pérdida del tono 30 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �muscular del órgano lo que provoca la desaparición de sus estrías dejándolo fláccido. También afecta la coloración normal del ventrículo, tornando el color normal marrón verde amarillento a un color blanco lechoso. 4.7. Transmisión La transmisión tiene lugar de abeja a abeja durante los períodos de confinamiento en invierno, como resultado de la contaminación de los panales y los pisos por las deyecciones de las abejas. Sin embargo los esporos requieren temperaturas mayores a las del invierno para su potencial desarrollo por lo que recién a la salida del período invernal comienza su reproducción, afectando a un gran número de abejas. La transmisión dentro del apiario se produce principalmente por la deriva de abejas parasitadas, el pillaje de miel de colmenas enfermas, los alimentadores que se usan durante un largo período también pueden ser una fuente de transmisión del parásito. Todas las circunstancias que lleven al encierro y hacinamiento de la colonia, son factores que predisponen a la aparición de la enfermedad. 4.8. Diagnóstico No hay signos específicos de la enfermedad, sin embargo pueden visualizarse a campo algunos signos en las colonias afectadas. Algunos de ellos son comunes a las manifestaciones producidas por algunas enfermedades virales como ser el temblor, el abdomen abultado, la incapacidad de vuelo, etc. Otros también pueden ser compartidos con otras enfermedades de tipo disentérico como las deyecciones aguachentas en los techos y en las planchas de vuelo. Una manifestación al nivel de los panales de cría es la ausencia o deficiencia de jalea real en las celdas larvales. La observación a campo de los ventrículos, buscando las alteraciones en su tonalidad y color, nos puede dar una pauta de la presencia de Nosemosis, pero muchas veces se encuentran ventrículos aparentemente normales no porque no estén afectados por Nosema, sino porque la invasión de sus células recién comienza. Cualquiera de estos signos pueden encontrarse en las colmenas pero cuando la enfermedad alcanzó niveles extremos, por lo tanto, no podemos esperar a encontrarlos. Se debe tomar muestras y recurrir al diagnóstico de laboratorio. 4.8.1. Diagnóstico de laboratorio - Determinación del nivel de infestación. En todos los casos, las muestras deben ser abejas adultas, tomadas de la piquera. Se toman muestras individuales, es decir, una muestra por colmena y de al menos el 10 % de las colmenas que conforman el colmenar. Se envían en formol 4% o refrigeradas, dependiendo de los requerimientos del laboratorio. Comúnmente se utilizan dos métodos para determinar el nivel de infestación por Nosema. En ambos métodos se macera el material en estudio, se lo procesa y observa en el microscopio óptico para realizar el conteo de esporos. Ambas técnicas son válidas siempre que se relacionen los resultados obtenidos con el comportamiento de la parasitosis en la región, época del año, observaciones a campo, etc. a) Método de Cantwell (1970) modificado por Fries (1984) Se necesitan 100 abejas mayores de 10 días de edad, tomadas de la piquera, conservadas en formol 4%, el cual debe cubrir la totalidad de las abejas. Utilizando formol, la muestra se conserva por meses sin alterar el análisis posterior. Según la cantidad promedio de esporos, por abeja, el resultado se expresa en nivel de infestación: débil, mediano o fuerte. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 31 �Clasificación según resultado del conteo Nº de esporas por abeja Nivel de infestación Entre 0 y 500.000 DEBIL Entre 500.000 y 1.000.000 MEDIANO Más de 1.000.000 FUERTE b) Método de Cornejo-Rossi Son suficientes 35 abejas, mayores de 10 días de edad, tomadas de la piquera, conservadas en frío, con orificios en la tapa del frasco. Según la cantidad de esporos por mm 3, el resultado se expresa en niveles de infestación de 1 a 5. Clasificación según Cornejo-Rossi Nivel de infestación Nº de esporas por mm3 Nivel 1 10.000 a 100.000 Nivel 2 100.000 a 600.000 Nivel 3 600.000 a 800.000 Nivel 4 800.000 a 1.000.000 Nivel 5 Superior a 1.000.000 4.9. Tratamiento y Control Debido a la extensión de ciertas prácticas de manejo para la profilaxis de otras enfermedades como la loque americana, mediante la eliminación del material inerte de las esporas de esta bacteria, se eliminan también los de Nosema. La decisión de aplicar un tratamiento dependerá del nivel de infestación arrojado por cualquiera de las dos técnicas de laboratorio. El resultado del recuento debe relacionarse con las condiciones de producción, estado general de las colmenas y medio ambiente, como los aspectos de manejo, estrés nutricional, ciclos de floración, etc. Generalmente, aplicar las prácticas preventivas (Punto 4.10) resulta suficiente para evitar la aparición de la enfermedad, no obstante, ante altos niveles de infestación todas las colonias del colmenar deberán recibir tratamiento medicamentoso. Para el tratamiento se debe administrar algún producto veterinario aprobado por SENASA, elaborado con el principio activo fumagilina, antibiótico que hasta el momento resultó ser el que presenta mayor eficacia. 4.10. Prevención Es posible prevenir la aparición de la enfermedad o lograr mantener niveles de infección de Nosema por debajo de los límites que llegan a afectar el correcto desarrollo de las colonias y la disminución en la producción de miel debido el aumento del consumo de las reservas. Entre las medidas preventivas se recomienda: Renovar material anualmente: esterilizar el material al inicio de cada temporada, reemplazar los panales de cría frecuentemente, eliminando los panales negros, etc. Controlar la temperatura y la humedad: evitar la sombra en forma permanente, evitar formar núcleos al final de temporada, evitar la inundación y condensación de agua dentro de las colmenas, etc. Manejo nutricional: asegurar la disponibilidad de polen a fin de lograr la acumulación de reservas proteicas para el invierno, asegurar una distribución racional de los jarabes azucarados durante el invierno. Ingreso a la invernada: procurar salir del otoño con un excelente estado sanitario y, en lo posible, con reinas nuevas. 32 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Determinar periódicamente el nivel de infestación: muestrear el 10% de las colmenas del apiario, de manera individual, en otoño y en primavera, evaluando en cada caso, la aplicación o no de tratamiento medicamentoso. 4.11. Procedimiento ante la sospecha En caso de sospecha o denuncias, se pondrán en práctica las medidas generales habituales para la prevención de epizootias (aislamiento del asentamiento, toma de muestras y envío al laboratorio autorizado, denuncia obligatoria). La investigación consistirá en recolectar muestras de abejas adultas (tomadas de la piquera) y enviarlas al laboratorio para el diagnóstico cuantitativo. De acuerdo a los resultados y otros factores ambientales, se determinará la necesidad de aplicar un tratamiento. Comprobado el diagnóstico, se creará en torno al emplazamiento afectado una zona de aislamiento de 1,5 km de radio, en la que no se permitirá el tránsito de abejas, debiendo someterse todas las colmenas y asentamientos en ella ubicados a subsiguientes investigaciones y tratamientos correspondientes. 5. Ascophaerosis 5.1. Características Es una enfermedad micótica provocada por un hongo de la especie Ascophaera que afecta a las larvas de las abejas entre los 3 y 4 días de edad. Fundamentalmente a las crías de zánganos, en segundo término a las de obreras y ocasionalmente a las que darán origen a las reinas. También se la llama Cría Encalada, Cría de Tiza, Cría Calcárea o Chalkbrood. Los hongos por sí solos no causan daño y difícilmente maten a la colonia afectada. La cría yesificada se manifiesta por la presencia de factores predisponentes como la humedad, bajas temperaturas, mala ventilación y escasez de reservas proteicas. Las colonias débiles y pequeñas son las más susceptibles pues en ellas aparecen todos estos factores. Existen otros factores de tipo yatrogénico (provocados por el apicultor) como el uso indiscriminado de antibióticos que afecta la flora banal de las abejas provocando un desequilibrio que aprovecha el hongo para infectar, y la falta de renovación de panales, entre otros. 5.2. Presentación Está presente en prácticamente todos los países en los que se practica la apicultura, exceptuando algunos de Centro América en los que aún no se ha descripto. En Argentina se la detectó por primera vez en el año 1980. Si bien esta enfermedad, no se la considera importante, últimamente ha aumentado la incidencia, convirtiéndose en un problema de cierta relevancia económica. 5.3. Etiología El hongo Ascophaera fue descubierto a comienzos del siglo pasado aunque recién fue descripto en 1921 bajo otros nombres. Recién en el año 1955 Spiltoir y Olive reclasificaron al hongo dándole el nombre de Ascophaera. Este hongo pertenece a la clase de los aschomicetos, que se reproduce heterotálicamente cuando los micelios entran en contacto entre sí, originando los esporos que son la forma infectante de la enfermedad. Los micelios son de color blanco mientras que los esporos lo son oscuros. Se han descripto hasta el momento unas ocho especies de hongos que pueden aparecer en la colmena. Muchas de ellas son saprófitas que viven a expensas del alimento larval o bien de las deyecciones, y Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 33 �otras aparecen como patógenas como es el caso de Ascophaera y los Aspergillus (fumigatus, niger, flavus) agentes causales de la Stone Brood o Cría de Piedra. Se han descripto hasta hoy, dos variedades del hongo Ascophaera con poder patógeno sobre Apis mellifera: Ascophaera major (Skou, 1972) cuyos esporos miden de 3 a 4 micras de diámetro; y el Ascophaera apis (Spiltoir y Olive, 1955), de esporas más pequeños, entre 1 y 2 micras de diámetro. Ambas especies son capaces de producir los síntomas de la enfermedad, aunque la más común es la variedad apis. Estas variedades de Ascophaera no pueden reproducirse entre sí. 5.4. Patogenia El agente ingresa a la colmena acarreado por las abejas pecoreadoras. También se ha comprobado que los ácaros varroa serían portadores de esporos fúngicos. Sin embargo, la sola presencia del hongo en las colmenas no significa que se desarrollará la enfermedad. Para que la Cría Yesificada se manifieste, hace falta que se presenten los factores predisponentes antes mencionados, principalmente humedad y temperatura que favorezca el crecimiento del hongo (entre 20 y 30ºC). Las larvas de mayor susceptibilidad son las de 3 y 4 días de edad, principalmente las de zánganos, no por una cuestión biológica, sino simplemente porque se encuentran en la periferia de los marcos donde la temperatura por lo general es menor. Las larvas ingieren los esporos inoculados por las nodrizas junto con el alimento larval. Al ser ingeridos, una vez en el intestino medio, específicamente en el extremo posterior, germinan y se inicia el crecimiento del micelio. El micelio atraviesa la pared intestinal y buscando el oxígeno necesario para su desarrollo, rompe el extremo posterior de la larva dejando por lo general inafectada la cabeza. Cuando esto sucede se forman los cuerpos fructíferos en la superficie exterior de la larva muerta. Las Ascophaeras no se multiplican en abejas adultas. Las larvas mueren por ascophaerosis, por lo general, 6 o 7 días después de infectadas, cuando las celdas ya fueron operculadas. Los cadáveres aparecen al principio con un aspecto esponjoso y tume factas, adquiriendo la forma hexagonal de la celda. Más tarde se encogen y endurecen, tomando la consistencia y el aspecto de un pedazo de yeso o tiza. Una vez que las larvas mueren y endurecen, los esporos se agrupan en ascos y a su vez se encierran en quistes que tienen un diámetro entre 50 y 140 micras. Los esporos son muy resistentes en el medio ambiente, pueden sobrevivir hasta 15 años. 5.5. Factores predisponentes Humedad y temperatura: Exceso de humedad, bajas temperaturas, cambios bruscos de temperatura, mala ventilación, etc. Escasez de reservas proteicas. Colonias débiles y pequeñas: desequilibrio entre crías y nodrizas. Situaciones de estrés dentro de la colmena: falta de miel, carencia de polen, cese en la entrada de néctar, etc. Uso indiscriminado de antibióticos: provoca un desequilibrio afecta la flora banal de las abejas provocando que aprovecha el hongo para infectar. Manejo: falta de renovación de panales de cría. 5.6. Cuadro clínico Como ya se ha mencionado, lo más probable es que la enfermedad se presente en aquellas colmenas débiles o pequeñas. Sin embargo si las condiciones ambientales son óptimas para el desarrollo del 34 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �hongo, puede afectar, aunque con menor gravedad, cualquier tipo de colmena. Es una enfermedad estacional. La época en que empiezan a visualizarse los signos es al principio de la temporada, cuando se inicia la postura y el número de abejas aún no es suficiente para atender las crías, regular la temperatura y ventilar todo exceso de humedad. Antes de abrir las colmenas, podemos detectar la enfermedad por la presencia de momias en las piqueras, consecuencia del comportamiento de limpieza de algunas colonias. En los marcos de crías se ven larvas muertas momificadas, operculadas o no. Algunas momias presentan un color blanquecino correspondiente a los micelios, mientras que otras tienen un color oscuro que indica la presencia del hongo en su estado infectante, el de esporo. En las colonias gravemente afectadas, encontramos muchas celdas con restos larvales duros y sueltos. Al agitar estos marcos reproducimos un ruido característico. 5.7. Diagnóstico El diagnóstico clínico a campo es suficiente para determinar la presencia de la enfermedad. Sin embargo hay posibilidades de realizar en laboratorio un frotis húmedo para visualizar los quistes y los esporos. También puede confirmarse el diagnóstico por medio de cultivos del material patógeno en laboratorio especializado, en los que desarrollarán abundantes cuerpos fructíferos. 5.8. Tratamiento y prevención No existe un tratamiento específico para el control de esta enfermedad. Por lo general se produce la curación espontánea de la colmena cuando la colonia logra eliminar las momias y se equilibran los principales factores que desencadenaron la enfermedad. Dada la poca importancia relativa de la Cría Yesificada, no se han realizado muchos ensayos que permitan determinar la eficacia de los productos químicos para tratarla. Por otro lado muchos intentos han fracasado por la susceptibilidad de la abeja a los productos y la inestabilidad de los mismos. Hay muchos productos antifúngicos pero que a la vez inhiben la formación de quitina en la abeja por lo que no se recomiendan. Durante los últimos años se han ensayado fumigaciones con algunos desinfectantes como el óxido de etileno en diferentes concen- traciones (2% durante 24 hs.; 3% durante 6 hs. y 7% durante 1 hora), amonios cuaternarios, formal- dehído al 4%, Timol al 0,7%, ácido acético glacial al 80% e inclusive simples soluciones jabonosas. Más importante que los tratamientos con productos químicos es adoptar medidas de manejo que orienten a reducir los factores de riesgo y la carga patógena, como al mantenimiento de la salud general de la colonia. Dentro de las principales pautas de manejo, tanto para tratar como para prevenir la enfermedad, se pueden mencionar las siguientes: Quemar los panales afectados y retirar las momias de los pisos que actúan como reservorio de los esporos fúngicos. Eliminar de la cámara de cría los panales viejos. No intercambiar panales entre colmenas enfermas y sanas. Rociar jarabe estimulante sobre los marcos de cría afectados para favorecer la limpieza de las momias dentro de las celdas. Regular el espacio de la colmena para evitar la condensación de humedad y lograr la temperatura óptima. Suministrar suplementos proteicos si las reservas de polen son insuficientes. Manual de Procedimientos / Trámites en apicultura 35 �Evitar el enfriamiento de la cría: No colocar marcos de cría operculada en colmenas débiles o levemente afectadas, no retirar abejas adultas de colonias enfermas y débiles, ni darles crías extra para desarrollar, evitar revisar colmenas y núcleos en días fríos. Orientar la piquera de manera de evitar los vientos fríos. Cambiar las reinas de colmenas afectadas por reinas nuevas. La selección de material vivo por aptitud de limpieza, al igual que en la prevención de otras enfermedades apícolas, hace a las colonias más tolerantes a la cría yesificada. 6. Apiarios abandonados La denuncia de apiarios abandonados será motivo de alerta sanitario pues resultan un potencial riesgo de difusión de enfermedades. Deben ser inspeccionados por la autoridad veterinaria o por quien ésta designe y acompañe. Tener en cuenta que debe confirmarse la veracidad sobre el abandono de las colmenas antes de decidir el destino de las mismas. En caso de encontrar colmenas enfermas se procederá a su destrucción o saneamiento. Las colmenas sanas podrán ser donadas de acuerdo al criterio del veterinario oficial, posibilidades y recursos disponibles. 7. Enfermedades Exoticas 7.1 Introducción Una enfermedad exótica es una enfermedad que nunca fue detectada en una región o país determinado. De la cual no fueron observados sus signos clínicos ni su agente etiológico. Las plagas parasitarias descriptas en esta sección son consideradas exóticas en nuestro país. Su condición de “exóticas”, sumado a la poca información sobre su comportamiento, hace que se desconozca la magnitud de los daños que ocasionaría la aparición de alguna de ellas en nuestro país. En caso que esto ocurriese, solamente una rápida y efectiva reacción de la comunidad junto a la autoridad sanitaria podrían minimizar las gravísimas consecuencias. A través de la Resolución 422/03, las enfermedades exóticas de todas las especies animales se encuentran incorporadas al grupo de enfermedades referidas en el artículo 4º del Reglamento General de Policía Sanitaria, aprobado por Decreto de fecha 8 de noviembre de 1906, reglamentario de la Ley Nº 3959. El mismo, dice: “Todo propietario o persona que, de cualquier manera, tenga a su cargo el cuidado o asistencia de animales atacados por enfermedades contagiosas o sospechosos de tenerlas, está obligado a hacer inmediatamente la declaración del hecho a la autoridad local que los reglamentos sanitarios determinen”. En este caso, la autoridad sanitaria será la Oficina Local SENASA, el Programa de Control de Enfermedades, autoridades municipales o provinciales. El hecho de no denunciar o no notificar a la autoridad sanitaria este evento (sospecha o presencia) no significa que la enfermedad o plaga desaparezca o no exista. Por el contrario, impide la realización de las acciones sanitarias necesarias para evitar la difusión del foco. Las consecuencias sanitarias no sólo se manifestarán en el colmenar detectado inicialmente, sino en colmenares de los alrededores, inclusive hasta en todo el territorio nacional. Como se mencionó anteriormente, el ingreso a nuestro país de alguna de ellas podría ocasionar graves consecuencias sanitarias y pérdidas económicas incalculables. Además, esta nueva condición perjudicaría fuertemente la comercialización de nuestros productos apícolas en el exterior. 36 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia En caso de sospechar o detectar la presencia de alguna de estas plagas parasitarias se procederá de acuerdo a la legislación vigente sobre la notificación de enfermedades denunciables (Ley Nº 3959 del año 1906 y la Res. SENASA 422/02): Notificación: se realizará de forma inmediata a la Oficina Local del SENASA, al Programa de Control de Enfermedades de las Abejas de SENASA Central, a las autoridades sanitarias provinciales o municipales. Inspección oficial del apiario: se realizará una investigación epidemiológica exhaustiva para identificar a todos los apiarios expuestos al riesgo. Interdicción e inmovilización: Se efectuará el aislamiento, vigilancia, identificación de las colmenas enfermas, saneamiento. Asimismo, no se permitirá la salida ni entrada de ningún material apícola vivo ni materiales inertes en la zona o región declarada como infectada. Comunicación del evento a las otras regiones Toma de muestras: En todos los casos se tomarán muestras, se acondicionarán y enviarán al Laboratorio Central de SENASA Inspección e inmovilización de apiarios vecinos: No se permitirá el movimiento, salida o entrada de material vivo ni material inerte dentro de un radio de 3 km a partir del foco primario. Se inspeccionarán todos los apiarios dentro de ese radio. Confirmación del diagnóstico Saneamiento: en caso de confirmarse el diagnóstico, se procederá a la destrucción in situ del material infectado. Según el artículo 24º de la Ley, el productor tendrá derecho a exigir una indemnización en dinero, igual al valor de los animales o materiales perdidos. También se deberá destruir o desinfectar toda construcción u objetos que hayan estado en contacto con las colmenas enfermas o que sirvan como vehículo de contagio. Levantamiento de la interdicción: sucederá en tiempo variable, lo decidirá el Servicio Veterinario según la enfermedad, período de incubación, permanencia en el ambiente, cantidad de colmenas afectadas, resultado de las inspecciones, etc. 7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae 7.3.1 Características generales y distribución Tropilaelaps clareae es un ectoparásito que afecta a la cría de las abejas. Son ácaros que dependen de la cría de las abejas para alimentarse y reproducirse. No son capaces de alimentarse de las abejas adultas debido a que sus quelíceros son primitivos y no están desarrollados para ello. Por ese motivo, en áreas del mundo donde hay corte de postura, los ácaros no pueden sobrevivir, ya que no resisten más de 7 días sin la presencia de cría. Por lo tanto, la mayor incidencia de esta parasitosis se presenta en países con climas cálidos que mantienen todo el año, o gran parte del año, cría en las colmenas. Se encuentra ampliamente distribuido en el sudeste asiático, donde parasita a su huésped original, Apis dorsata. Fue descripta por primera vez en Apis mellifera en Filipinas (Delfinado y Baker) en el año 1961 y ha sido encontrada también en Afganistán, China y otros países asiáticos. Hasta el momento, no fue notificada su presencia en Occidente. 7.3.2 Agente etiológico Son ácaros de color entre castaño y castaño oscuro y se encuentran cubiertos de pelos. Poseen una parte dorsal dura, donde se insertan los pelos, y una zona ventral compleja, que es blanda y que Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 37 �contiene los aparatos bucal, respiratorio, excretor y reproductor. La hembra adulta mide 1 mm de largo por 0,5 mm de ancho. Se hincha considerablemente cuando se alimenta. Normalmente mide 0,3 mm y llega a aumentar hasta 1 mm. Los machos son tan grandes como las hembras aunque más blandos en su parte superior. 7.3.3 Ciclo biológico El ciclo reproductivo es similar al del ácaro Varroa destructor. Desde el estadio de huevo a adulto transcurren seis días. La hembra Tropilaelaps, luego de una breve etapa forética, ingresa a la celda a punto de ser operculada. El primer huevo es puesto aproximadamente a las 48 hs. después de producirse el cierre de la celda. Las hembras colocan entre 1 a 4 huevos por celda. Cuando la abeja emerge, los ácaros hembras fecundadas salen junto con ella, pero ante la imposibilidad de alimentarse de la abeja adulta, ingresan inmediatamente a una nueva celdilla, continuando así su reproducción. No existe marcada preferencia por las celdas de la cría de los zánganos, como ocurre con el ácaro Varroa destructor. El hecho de no poder fijarse a la abeja, sumado a la dependencia de la cría hace que la etapa forética sea muy breve (Promedio: 1,6 días) 7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito Como se mencionó anteriormente, Apis dorsata es el huésped original. En general, debido al equilibrio huésped-parásito, las infestaciones en este biotipo suelen ser leves. La abeja es capaz de destruir al ácaro por sus propios medios, siendo frecuente encontrarlos muertos en el piso de la colmena. En cambio, el daño que podría ocasionar en una colonia de A. Mellifera es severo. En abejas adultas podrían verse consecuencias en infestaciones menores a las que necesita la varroasis para manifestarlas. Por este motivo, en regiones donde conviven ambas enfermedades predominaría la infestación con Tropilaelaps. 7.3.5 Signos clínicos Machos y hembras adultos pueden observarse fuera de las celdas de cría, moviéndose libremente sobre los cuadros y piso de la colmena. Son fácilmente desprendidos y observados si se sacude el material. Signos tempranos de la infestación suelen pasar desapercibidos, pero el crecimiento de la población de ácaros alcanza rápidamente niveles que provocan una alta mortandad de colmenas. Cuando la infestación es grave, las larvas se encuentran morfológicamente alteradas. Las pupas infectadas pueden presentar manchas oscuras, principalmente en las extremidades. La cría presenta una distribución salteada y las adultas nacen con signos similares a los provocados por Varroa destructor: abdomen acortado, alas y patas deformes, etc. 7.3.6 Transmisión La transmisión se produce a través de: pillaje, deriva, intercambio de material vivo, movimiento de abejas y crías, etc. El ácaro también puede actuar como vector para la transmisión de agentes virales. 7.3.7. Diagnóstico 7.3.7.a Diagnóstico clínico Al tratarse de una enfermedad exótica, resulta de suma importancia reconocer la enfermedad lo antes posible. El diagnóstico clínico consiste en la observación detallada de los cuadros de cría, los marcos, el piso, piso-trampa, interior de las celdas (desopercular), en busca de la presencia del parásito adulto. Por otro lado, en infestaciones graves, además de observar el ácaro se evidenciarán los signos clínicos antes descriptos. 38 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7.3.7.b Diagnóstico químico Es similar al efectuado para la detección de Varroa destructor. Luego de la aplicación de un producto químico adecuado se recolectan los parásitos que caen en una bandeja con vaselina previamente colocada en el piso. 7.3.7.c Diagnóstico diferencial En todos los casos se debe realizar el diagnóstico diferencial con Varroa destructor, con el cual existen evidentes diferencias morfológicas. 7.3.8 Toma de muestras Para la confirmación del diagnóstico de Tropilaelaps clareae se enviará un trozo de panal qu e contenga la cría con el parásito sospechoso en un frasco de boca ancha con formol al 4% para su identificación taxonómica. En caso de recolectar ácaros se conservarán en agua y alcohol al 50% o formol 4%. 7.3.9 Tratamiento 7.3.9.a Manejo sanitario El control de este parásito apuntará a la necesidad que tiene el ácaro de alimentarse de la cría. Una vez desaparecida ésta, los ácaros morirán en un tiempo variable. Las colmenas infestadas se tratarán mediante la remoción de la cría: Se colocan los cuadros con cría en un nuclero y luego de que emerjan las abejas, se dejan transcurrir seis días más para devolverlas a la colonia. Otra alternativa es enjaular las reinas durante 21 días. Se recomienda realizar esta maniobra al final de la entrada de néctar de manera de minimizar las pérdidas. 7.3.9.b Control químico Los químicos que controlan Varroa destructor son adecuados para Tropilaelaps spp, aunque los tratamientos mediante fumigación no son aconsejables porque sólo afectan al ácaro en fase forética, no siendo muy efectivos en el caso de Tropilaelaps. Aparentemente el ácido fórmico resulta ser el principio activo más efectivo para el control químico debido a su capacidad para penetrar a través de los opérculos. 7.4 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas) 7.4.1 Características generales y distribución Aethina tumida es un coleóptero, también llamado “Pequeño escarabajo de las colmenas”. Es originario de las regiones tropicales y sub-tropicales de Africa. Fuera de Africa fue detectado en los Estados Unidos (Georgia y Florida - año 1998), en Egipto (2000), en Australia (Sidney - 2002) y Canadá (2003). Una parte fundamental de su ciclo reproductivo transcurre dentro de las colmenas de las abejas provocando la destrucción total de la misma. Son escarabajos voladores de color negro que miden entre 5 y 7 mm de largo y de 3 a 4,5 mm de ancho. 7.4.2 Ciclo biológico El ciclo biológico tiene una duración que varía entre 31 a 81 días. El escarabajo adulto ingresa volando a las colmenas, atraído por la miel y la cría. Allí encuentra el lugar y el alimento necesario para iniciar su ciclo reproductivo. Colocan uno o varios huevos (similares a los de las abejas) en las celdas de los panales. Eclosionan larvas alargadas y de color blanquecino que llegan a medir hasta 10 mm de largo. Las larvas cavan galerías en los panales mientras consumen miel, cría y polen. Luego de 10 a 16 días, el desarrollo de la larva finaliza, pasando al estadio de pupa. Esta abandona la colmena, dejándose caer y enterrándose en la tierra. Durante 3 a 4 semanas, enterrada aproxi- Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 39 �madamente entre 10 y 20 cm de la superficie, la pupa sufrirá su metamorfosis dando como resultado a un adulto. Al desenterrarse, el escarabajo adulto es de color amarillento, luego se convierte en rojizo, marrón claro, luego marrón oscuro hasta llegar a negro. Estos adultos copularán, y las hembras fecundadas reiniciarán el ciclo ingresando a nuevas colmenas. 7.4.3 Diagnóstico Durante la revisación de la colmena pueden observarse una gran cantidad de escarabajos moviéndose a gran velocidad por los panales, en el piso de las colmenas, en las zonas más oscuras o entre los cabezales de los marcos. El diagnóstico consiste en la observación del escarabajo adulto, sus huevos, sus larvas y/o los daños que ocasiona en la colmena. 7.4.4 Daños Cuando las larvas comienzan a cavar galerías y destruir los cuadros, derraman la miel que, al mezclarse con sus deyecciones, fermenta y despide un olor similar a naranjas en descomposición que resulta repelente para las abejas. La colonia atacada, finalmente, abandona la colmena. 7.4.5 Toma de muestras A los fines de realizar la identificación taxonómica se deberá enviar al laboratorio el/los ejemplares sospechosos en un recipiente que contenga: alcohol y agua 50% o formol al 4%. 7.4.6 Transmisión El escarabajo puede trasladarse a través de su vuelo, por trashumancia, intercambio de material vivo o inerte, comercialización de frutas (kiwi, bananas, melón) y verduras, a través del comercio de plantas con tierra. 7.4.7 Control En los países que poseen esta plaga, el cumafós parece ser hasta el momento, el único principio activo capaz de destruir a los escarabajos. Sin embargo es conveniente atenerse a medidas profilácticas. 7.4.8 Medidas preventivas Mantener la limpieza alrededor de las colmenas: desmalezado, higiene general del apiario. No apilar alzas con miel con aberturas que permitan la entrada del escarabajo (sin abejas guardianas se facilita la introducción) Evitar falsas piqueras Seleccionar líneas genéticas con alto comportamiento higiénico Remover la tierra cercana a las colmenas con el fin de interrumpir el ciclo del escarabajo. Información Adicional Puede obtenerse información actualizada (listado de productos, novedades, legislación aplicable, etc. ) de las páginas web de SENASA y SAGPyA (www.senasa.gov.ar y www.alimentosargentinos.gov.ar respectivamente). O bien con los responsables del Programa de control de Enfermedades de las Abejas al siguiente correo electrónico: apicultura@senasa.gov.ar 40 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 41 �ANEXO III INSCRIPCION EN EL REGISTRO DE ESTABLECIMIENTOS HABILITADOS PARA LA PRODUCCION Y COMERCIALIZACION DE MATERIAL APICOLA VIVO RENAPA N° Fecha: ............../................./ ................... PROPIETARIO Nombre y Apellido o Razón Social: .................................................................................................................................. DNI/CUIL/CUIT: ....................................................... Domicilio: ........................................................................................................................................................................ Pdo./Dpto.: ..................................................................Cod.Postal: ................... Provincia: .............................................. Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ ESTABLECIMIENTO Razón Social: ................................................................................................. CUIT: ....................................................... Ubicación: ........................................................................................................................................................................ Pdo./Dpto.: ..................................................................Cod.Postal: ................... Provincia: .............................................. Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ Cantidad de Apiarios Afectados a la Producción de Material Vivo: ..................................... TIPO DE PRODFCCION Reinas Celdas Reales Núcleos Paquetes Otros: ................................ ESTIMACION DE LA PRODFCCION ANFAL Reinas Celdas Reales Paquetes Otros: ................................ Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ CORRESPONSABLE SANITARIO Inspector Sanitario Apícola: ............................................................................................................................................. DNI N° ...................................................................... Acreditación SENASA N° .......................................... .............................................................................. Firma del Interesado C.218 Aclaración: ................................................................ �ANEXO V INSPECCION SANITARIA ESTABLECIMIENTO APICOLA DE PRODFCCION Y COMERCIALIZACION DE MATERIAL VIVO INSPECCION N° Lugar y Fecha: ................................................................. ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................................... Apiario N°: .............................................................. Cantidad de Colmenas ............................................. Habilitación N° ........................... Propietario:.................................................................................................................... DIAGNOSTICO CLINICO A CAMPO Loque Americana Cria Yesificada Loque Europea Varroasis Nosemosis Otras: ............................. Cantidad de Colmenas Afectadas (aclarar enfermedad y totalidad de colmenas inspeccionadas): ........................................ ........................................................................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... ENVIO DE MFESTRAS A LABORATORIO ........................................................................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ................................................................................................................................................................................................ ............ ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ INSPECTOR ACTFANTE OFICINA LOCAL DE SENASA .............................................................................. Firma C.219 Aclaración: .................................................................................... Firma y Sello del Responsable ................................................................ Acreditación SENASA N° ......................................... �ANEXO VI ENVIO DE MUESTRAS ESTABLECIMIENTO APICOLA DE PRODFCCION YCOMERCIALIZACIONDE MATERIAL VIVO RENAPA N° Lugar y Fecha: ........................................................................ ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................................... Propietario:........................................................................................................................................................................ Dirección: ........................................................................................................................................................................ Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ MFESTRAS Números: .......................................................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ DIAGNOSTICO LABORATORIAL ENFERMEDAD: ............................................................................................................................................................................... RESULTADO: Positivo Negativo Métodos de Diagnóstico Empleados: ............................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................................... FECHA DE EMISION ................./......................................../.......................... Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ......................................................................................................................................................... ................................................... ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ INSPECTOR SANITARIO .............................................................................. TECNICO ACTFANTE DILAB .............................................................................. Firma Firma Aclaración: ................................................................ Aclaración: ................................................................ DNI N° ............................................. C217 DNI N° ............................................. Remitir Resultaao a la Oficina Local Corresponaiente a la Jurisaicción ael Establecimiento DQCUMENTQ VALIDQ PQR 30 DIAS A PARTIR DE LA FECHA DE TQMA DE MUESTRA �ANEXO V NOTIFICACION DE INGRESO DE MATERIAL APICOLA VIVO AL ESTABLECIMIENTO RENAPA N° Lugar y Fecha: ............................................................... ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................. Habilitación N°: ................................................................................................................................................................ Propietario o Responsable: ................................................................................................................................................ MATERIAL VIVO INGRESADO Indique cantidad, tipo y subespecie: ................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................ .......................................................................................................................................................................................... Fecha de Ingreso: ............../................../.............. Origen del Material: ............................................................................. Importación Mercado Interno País de Origen: ............................................. Establecimiento Productor: .......................................................................... Localidad: .......................................................................................................... Provincia: .............................................. Nombre del Propietario o Responsable: .............................................................................................................................. EN CASO DE CORRESPONDER A MATERIAL IMPORTADO, SOLO INDIQFE EL PAIS DE ORIGEN Y EL NOMBRE DEL ESTABLECIMIENTO PRODFCTOR Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ .............................................................................. Firma del Propietario o Responsable Aclaración: ................................................................ C.220 �Inspección correspondiente a OTOÑO/PRIMAVERA del Año CANTIDAD DE Apicultores Asesorados Colmenas Inspeccionadas Apiarios Inspeccionados COLMENAS ENFERMAS Loque Americana Cantidad Total Varroasis Otras: .......................................................................................................................................................................................................................................................... ............. TOMA Y ENVIO DE MUESTRAS Muestras Emitidas Loque Americana Varroasis ..................................................................................................................... Lugar y Fecha Nosema Otras ............................................................................... Firma y Sello Inspector �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Enfermedades de las abejas: Manual de procedimiento. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2020 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Sanidad Animal Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0104 Abstract A summary of the resource. El presente documento se dirige principalmente a los agentes sanitarios acredita-dos (Inspector Asesor Sanitario Apícola), veterinarios de las Oficinas Locales de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, profesionales privados, sectores interesa-dos y a las autoridades provinciales, municipales y nacionales locales; por tanto, se centra en aspectos operativos del Programa Nacional de Control de Enferme-dades de las Abejas. Table Of Contents A list of subunits of the resource. 1. LOQUE AMERICANA 1.1 Características 1.2 Presentación 1.3 Patogenia 1.4 Diagnóstico 1.5 Cuadro clínico 1.6 Etiología 1.7 Proceso epizoótico 1.8 Reservorios de gérmenes 1.9 Transmisión 1.10 Población hospedadora 1.11 Prevención y lucha 1.12 Tratamiento 1.12.1 Recuperación del Material Vivo a. Trasiego Directo b. Trasiego Doble 1.12.2 Recuperación del Material Inerte a. Calor - Fuego Directo b. Calor - Inmersión c. Calor y Presión d. Químicos e. Irradiación 1.12.3 Eliminación del material inerte 1.12.4. Tratamiento medicamentoso 1.13. Procedimientos ante la denuncia 1.14. Procedimiento de atención de focos 1.15. Toma y remisión de muestras 2. LOQUE EUROPEA 2.1 Características 2.2 Presentación 2.3 Diagnóstico 2.4 Etiología 2.5 Reservorios de gérmenes 2.6 Población hospedadora 2.7 Prevención y lucha 2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos 3. VARRAOSIS 3.1 Características 3.2 Presentación 3.3 Daños Indirectos 3.4 Etiología 3.5 Ciclo Biológico 3.6 Cuadro clínico 3.7 Diagnóstico 3.7.1 Prueba del frasco 3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso 3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría 3.7.4 Método químico 3.8 Difusión 3.9 Reservorios de parásitos 3.10 Transmisión 3.11 Población hospedadora 3.12 Prevención y lucha 3.13 Tratamiento 3.13.1 Control químico 3.13.2 Formas de acción de los acaricidas 3.13.3 Formas de administración 3.14 Control de la Varroasis 3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis 3.14.2 Plan estratégico 3.14.2.a Rotación de los Principios Activos 3.14.2.b Evitar los Residuos 3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación 3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado 3.15 Plan de Curas 3.16 Procedimientos ante la denuncia 3.17 Procedimientos ante sospechas 4. NOSEMOSIS 4.1. Características 4.2. Daños directos 4.3. Daños Indirectos 4.4. Etiología 4.5. Población susceptible 4.6. Patogenia 4.7. Transmisión 4.8. Diagnóstico 4.9. Tratamiento y Control 4.10. Prevención 4.11. Procedimiento ante la sospecha 5. ASCOPHAEROSIS 5.1. Características 5.2. Presentación 5.3. Etiología 5.4. Patogenia 5.5. Factores predisponentes 5.6. Cuadro clínico 5.7. Diagnóstico 5.8. Tratamiento y prevención 6. APIARIOS ABANDONADOS 7. ENFERMEDADES EXOTICAS 7.1 Introducción 7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia 7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae 7.3.1 Características generales y distribución 7.3.2 Agente etiológico 7.3.3 Ciclo biológico 7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito 7.3.5 Signos clínicos 7.3.6 Transmisión 7.3.7. Diagnóstico 7.3.7.a Diagnóstico clínico 7.3.7.b Diagnóstico químico 7.3.7.c Diagnóstico diferencial 7.3.8 Toma de muestras 7.3.9 Tratamiento 7.3.9.a Manejo sanitario 7.3.9.b Control químico 7.4 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas) 7.4.1 Características generales y distribución 7.4.2 Ciclo biológico 7.4.3 Diagnóstico 7.4.4 Daños 7.4.5 Toma de muestras 7.4.6 Transmisión 7.4.7 Control 7.4.8 Medidas preventivas INFORMACIÓN ADICIONAL ENFERMEDADES DE LAS ABEJAS https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/07cecfed550b800a862a66f9fd36b542.pdf ec379905c658648606611a5726ea9f37 PDF Text Text Guía rápida sobre triquinosis Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) �El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria es un organismo descentralizado encargado de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal y vegetal e inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia. Equipos de trabajo Dirección Nacional de Sanidad Animal Dirección Nacional de Inocuidad y Calidad Agroalimentaria Dirección Nacional de Operaciones Coordinación General de Comunicación Institucional �Índice Introducción La enfermedad Ciclo de transmisión Signos clínicos Tratamiento Los alimentos La producción La técnica de digestión artificial La prevención En la producción En el consumo En las actividades cinegéticas Acciones del Senasa Inscripción unidades productivas para actividades de porcinos y habilitación de laboratorios RED Dilab Capacitación y asesoramiento para personas productoras de porcinos Fiscalización de procesos de producción Autotest final Preguntas Respuestas Contactos útiles Más contactos 4 4 4 5 6 7 8 8 8 9 9 10 10 10 11 11 12 12 13 14 14 �Introducción La triquinosis o trichinellosis es una enfermedad parasitaria endémica. Es causada por las larvas de nematodes del género Trichinella spp, que afectan al ser humano, mamíferos domésticos, silvestres, aves y reptiles. Se trata de una zoonosis que se transmite a las personas, por la ingestión de carne o derivados cárnicos, crudos o mal cocidos, que contienen larvas de Trichinella spp. En Argentina, la principal fuente de infección para el ser humano es el cerdo, aunque también existen otras, como el jabalí o el puma. Con respecto a los cerdos domésticos, la parasitosis está relacionada a las condiciones de crianza, a la alimentación y a la presencia de animales sinantrópicos (por ejemplo, ratas) en el criadero o en basurales cercanos y hábitos canibalísticos del cerdo. Este parásito, además, puede encontrarse en la musculatura de un amplio rango de mamíferos –especialmente carnívoros y carroñeros–, pero también existen especies de Trichinella spp que parasitan a aves y reptiles. La trichinellosis es una enfermedad de notificación obligatoria establecida por la normativa oficial. El Senasa establece las maneras de notificar y atender las notificaciones de esta enfermedad, el registro de sospechas y brotes. La enfermedad Ciclo de transmisión Si bien el cerdo es quien se encuentra involucrado con mayor frecuencia en los brotes humanos, también se registran brotes por carnes de animales silvestres consumida generalmente en forma de chacinados y embutidos sin control bromatológico o carne fresca insuficientemente cocida. Los hábitos de crianza de cerdos sin condiciones de higiene adecuadas y alimentación son ideales para la propagación y mantenimiento de esta parasitosis. Esto se asocia, a su vez, con la faena domiciliaria o casera sin control sanitario, que trae como consecuencia la oferta de alimentos de riesgo para el consumidor (carne curada salada, cruda o insuficientemente cocida). Las personas se enferman al consumir carne cruda o insuficientemente cocida o productos elaborados con carne de cerdo o de animales silvestres, principalmente jabalíes y pumas, que contienen en sus músculos larvas de parásitos del género Trichinella. Por eso, es también considerada una enfermedad transmitida por alimentos (ETA). Una vez que las personas ingieren los productos infectados, las larvas se liberan en el estómago, continúan su ciclo en el intestino hasta reproducirse y las larvas que nacen migran por el torrente sanguíneo hacia los músculos, donde se alojan. Todo esto puede provocar fiebre, diarrea, hinchazón de párpados, vómitos, picazón en la piel, dolores y dificultades motrices. 4 �La ingesta de los alimentos parasitados es la única forma de contagio, ya que la enfermedad no se transmite de persona a persona. CICLO DE TRANSMISIÓN CERDOS Criaderos en malas condiciones, alimentados con basura y animales muertos, pueden ingerir carne con larvas y contraer la triquinosis. ROEDORES Y BASURA Ambiente propicio para la transmisión de la enfermedad. RATA Posible portadora de la enfermedad. PARÁSITO No altera el olor, el color, el sabor ni el aspecto de los productos alimenticios. VISTA MICROSCÓPICA Así se aloja el parásito en el músculo. ANIMALES SILVESTRES Pueden transmitir triquinosis. JABALÍ PUMA Signos clínicos Esta enfermedad tiene un fuerte impacto en la salud humana. El cuadro clínico es muy variable y puede ir desde una afección asintomática hasta cuadros más complejos, dependiendo del número de larvas ingeridas y del estado inmunológico de la persona afectada. 5 �Es importante destacar que los cerdos parasitados no presentan signos de enfermedad ni su carne muestra cambios en su aspecto, color, olor o sabor, por lo que la triquinosis no puede evidenciarse a simple vista en el campo ni en los productos alimenticios derivados. PERSONAS Los consumidores ingieren carne mal cocida o subproductos sin analizar previamente y contraen la enfermedad. SIGNOS CLÍNICOS Fiebre Hinchazón de párpados Vómitos Picazón en la piel Dolores musculares Diarrea Las larvas migran por el torrente sanguíneo hacia los músculos en los que se alojan. Los signos clínicos varían según la persona y la cantidad de larvas ingeridas. CORAZÓN PULMONES / DIAFRAGMA CEREBRO Tratamiento Tomar conciencia sobre la importancia de prevenir la triquinosis contribuye a modificar ciertas prácticas culturales en la producción y el consumo de alimentos, promover una alimentación responsable, evitar riesgos y consumir alimentos seguros. La enfermedad en las personas tiene un tratamiento en los primeros días de ingerido el alimento, una vez que la larva se estableció en el músculo se vuelve una enfermedad crónica. No existen vacunas para los animales, y el diagnóstico de certeza de la enfermedad es postmortem, no utilizándose tratamientos en el animal vivo. 6 �Los alimentos A la hora de consumir productos porcinos y derivados es preciso tener en cuenta una serie de precauciones para prevenir el contagio de la triquinosis. ALIMENTOS Los chacinados se elaboran con carne cruda. CARNES FRESCAS (BONDIOLA, COSTILLAS...) Cocine la carne hasta que pierda el color rosado. CHACINADOS (SALAME, SALAMÍN...) Adquiera productos en lugares habilitados y con etiquetas que certifiquen su origen. SALAZONES (JAMÓN CRUDO...) La salazón, el ahumado o la cocción con microondas no matan al parásito. Los chacinados, embutidos y salazones se elaboran con carnes sin cocción, por eso, los productos resultantes pueden contener larvas de los parásitos que producen triquinosis. Para evitar contraer la enfermedad es importante que los consumidores solo obtengan chacinados en establecimientos habilitados y no en lugares informales en los que no se puede demostrar la inocuidad y la trazabilidad del producto adquirido. La etiqueta rotulada certifica el origen del producto adquirido y dónde fue elaborado. Se asume que al ser elaborado en un establecimiento habilitado se le realizó la técnica diagnóstica según la normativa vigente. 7 �La cocción de la carne de cerdo se debe realizar hasta que pierda el color rosado en su interior, ya que este punto nos indica que se alcanzó una temperatura que mata las larvas que transmiten la enfermedad (mayor a 70 grados centígrados). Para mayor seguridad, siempre se debe consumir carne de animales que hayan dado negativo a la prueba de digestión artificial. La producción La técnica de digestión artificial Las personas que elaboren chacinados (como chorizo seco, salame y longaniza) a partir de carne cruda de cerdos o de animales silvestres, deben verificar previamente que esta materia prima sea apta para consumo humano. Para ello, deben remitir una muestra de carne de cada animal con el objetivo de que sea analizada en un laboratorio mediante la prueba de digestión artificial, que es la técnica reconocida y eficaz para detectar larvas de parásitos Trichinella spp. En Argentina se encuentran laboratorios a los cuales los usuarios pueden recurrir, ubicados en distintas localidades del interior del país y destinados a la atención de los requerimientos propios de cada región. La prueba de digestión artificial es la única para saber si la carne posee larvas de Trichinella spp. La prevención Las personas que se dedican a la producción porcina o practican actividades cinegéticas y quienes consumen productos porcinos deben tener en cuenta una serie de precauciones para evitar la propagación de la triquinosis. Al cumplir con las pautas que brinda el Senasa para la crianza de cerdos y la elaboración de productos alimenticios, todas las personas involucradas en esta cadena colaboran con la prevención de la triquinosis, protegen su actividad, evitan riesgos y producen alimentos seguros. 8 �En la producción La faena doméstica y la carneada de cerdos en el campo –hábitos difundidos en la población rural y periurbana– promueven la distribución y comercialización de productos porcinos elaborados de forma casera o artesanal. La ocurrencia de la triquinosis en los animales se ve favorecida por la crianza de cerdos en condiciones higiénico-sanitarias que suponen riesgo, como la presencia de roedores (ya que son posibles portadores de la enfermedad), la alimentación de los animales con restos de comida o el acceso de porcinos a los basurales. Dado que no existen vacunas ni tratamientos para administrar en el animal vivo, las medidas de prevención consisten, principalmente, en mantener el ambiente de crianza en condiciones higiénico-sanitarias apropiadas, alimentarlos adecuadamente y evitar que estén en contacto con la basura e ingieran desperdicios. También, es clave que las personas responsables de la producción realicen una prueba diagnóstica luego de la faena y antes de la preparación y consumo de chacinados. Para todo establecimiento faenador de porcinos la realización de la técnica de digestión artificial es obligatoria para liberar a consumo las carnes. En el consumo En primer lugar, es clave no adquirir productos porcinos o elaborados con carne de animales silvestres (principalmente de jabalíes y pumas) que carezcan de una etiqueta rotulada que certifique su origen, ya que no es posible saber si han sido sometidos a la prueba diagnóstica en un laboratorio. También es importante que los consumidores solo adquieran chacinados en establecimientos habilitados –constatados en la etiqueta– y no en lugares informales, donde no se puede demostrar la inocuidad y la trazabilidad del producto adquirido. Por último, la prevención también debe trasladarse hasta los hogares: es importante cocinar correctamente la carne hasta que su interior pierda el color rosado para evitar la transmisión de la enfermedad. 9 �La salazón y el ahumado no matan al parásito, tampoco la cocción en microondas ni el congelado en freezer común lo garantizan, por lo que estos productos deben prepararse siempre con carne que resulte negativa a la prueba diagnóstica. En las actividades cinegéticas En ciertas zonas de la Argentina, como en la Patagonia, las provincias de Buenos Aires, Córdoba y La Pampa, entre otras, se realizan actividades de caza; en muchos de estos casos los cazadores elaboran chacinados o salazones con carne de puma, jabalí u otros animales silvestres que pueden contener larvas y también pueden mezclar la carne con cortes de cerdos comerciales y de otros animales. Por tal motivo, quienes se dedican a esta actividad deben someter sus muestras, previamente, a la prueba de la digestión artificial; así como recordar que no deben abandonar las carcazas, ni utilizarlas como alimento para los cerdos domésticos. Acciones del Senasa Inscripción unidades productivas para actividades de porcinos y habilitación de laboratorios RED Dilab La Resolución 423/2014 establece que la inscripción en el Registro Nacional Sanitario de Productores Agropecuarios (RENSPA), que es obligatoria y gratuita para todos los productores pecuarios del país con independencia de la cantidad de animales que posean, independientemente del título por el cual detentan la tierra en que desarrollan su actividad y cualquiera sea el sistema de producción utilizado. Por otro lado, el Senasa realiza la habilitación de laboratorios pertenecientes a la Red Nacional de su Dirección de Laboratorios y Control Técnico (DILAB), muchos de estos realizan la prueba de digestión artificial, técnica necesaria para detectar larvas de Trichinella spp. 10 �Capacitación y asesoramiento para personas productoras de porcinos Aprobación de rótulos y habilitación de transportes Tanto la habilitación del transporte de animales vivos como la habilitación de transporte en frío se hace a través de las direcciones nacionales de Sanidad Animal e Inocuidad Agroalimentaria del Senasa, respectivamente. Fiscalización de procesos de producción Recepción de denuncias Se reciben comunicaciones del Ministerio de Salud de la Nación, de los ministerios de Salud provinciales, de los ministerios del agro, laboratorios privados, municipales y/o provinciales, también de frigoríficos con y sin habilitación del Senasa de casos humanos y animales positivos a la digestión artificial Por otra parte, cualquier persona responsable o interesada puede realizar la notificación a través de múltiples vías: teléfono, correo electrónico, aplicación “Notificaciones Senasa” (disponible en Play Store) o presencialmente en cualquiera de las oficinas del Senasa. 11 �Autotest final Preguntas 1. ¿Los chacinados, embutidos y salazones se elaboran con carnes sin cocción? 2. ¿Cuáles son los síntomas que pueden darse en una persona? 3. ¿Se pueden consumir chacinados, como chorizo seco, salame y longaniza sin su etiqueta? 4. ¿Cómo se hace para saber si la carne de cerdo o de animales silvestres tienen larvas de parásitos Trichinella spp? 5. ¿La prueba de digestión artificial es la prueba para saber si la carne posee larvas de Trichinella spp? 6. ¿Cuál es la importancia de una etiqueta rotulada en los productos de origen porcino? 7. Si se cocina la carne de cerdo hasta que pierda el color rosado en su interior (superando los 70°C), ¿se mueren las larvas de parásitos Trichinella spp? 8. ¿Congelar la carne de cerdo mata al parásito? 9. ¿La triquinosis se transmite de persona a persona? 10. ¿Se puede notar a simple vista que un cerdo posee triquinosis o que un trozo de carne de cerdo contiene larvas de Trichinella spp? 12 �Respuestas 1. Sí, se utiliza carne de cerdo o de animales silvestres, principalmente jabalíes y pumas, sin cocción. Por eso, los chacinados, embutidos y salazones resultantes pueden contener larvas de los parásitos que producen triquinosis. 2. Una vez que las personas ingieren los productos infectados, las larvas se liberan en el estómago y continúan su ciclo en el intestino hasta reproducirse; las larvas que nacen migran por el torrente sanguíneo hacia los músculos, donde se alojan. Todo esto puede provocar fiebre, diarrea, hinchazón de párpados, vómitos, picazón en la piel, dolores y dificultades motrices. 3. No es recomendable. Es importante que los consumidores solo obtengan chacinados en establecimientos habilitados y no en lugares informales en los que no se puede demostrar la inocuidad y la trazabilidad del producto adquirido. 4. A través de la prueba de digestión artificial, que es la única técnica reconocida y eficaz para detectar larvas de Trichinella spp. Las personas que elaboren chacinados (como chorizo seco, salame y longaniza) a partir de carne cruda de cerdos o de animales silvestres, tienen que verificar previamente que esta materia prima sea apta para consumo humano. Para ello, deben remitir una muestra de carne de cada animal con el objetivo de que sea analizada en un laboratorio. 5. Sí, todos los elaboradores de chacinados deben someter una muestra de carne de cada animal (cerdos o de animales silvestres) a esta técnica. 6. La etiqueta certifica el origen del producto que compraste y dónde fue elaborado. Se asume que al ser elaborado en un establecimiento habilitado se le realizó la técnica diagnóstica según la normativa. 7. Sí, esta cocción nos indica que se alcanzó una temperatura que mata las larvas que transmiten la enfermedad (mayor a 70 grados centígrados). Para mayor seguridad, se debe consumir carne de animales que hayan dado negativo a la prueba de digestión artificial. 8. No podemos asegurar que congelar la carne en el freezer mata al parásito. Por eso, el congelamiento no es un método recomendable. 9. No, solo de los animales a las personas a través del consumo de carne. 10. Los cerdos parasitados no presentan signos de enfermedad ni su carne muestra cambios en su aspecto, color, olor o sabor, por lo que la triquinosis no puede evidenciarse a simple vista en el campo ni las larvas de Trichinella spp en los productos alimenticios derivados. 13 �Contactos útiles • Para conocer el listado de laboratorios disponibles: Correo electrónico a coorzoonosis@senasa.gob.ar Correo electrónico a redlab@senasa.gob.ar ( para laboratorios inscriptos en la Red del Senasa) • Para notificar sobre la presencia o sospecha de la enfermedad: App “Notificaciones Senasa” (disponible en Play Store) Más contactos • Para reclamar por un alimento en mal estado: - INAL: 0800-222-6110 - Senasa: (+54 - 011) 4121-5000 / 0800-999-2386 o a través de nuestro sistema de denuncias (https://www.argentina.gob.ar/senasa/sistema-de-denuncias). - En el caso de las jurisdicciones locales, dirigirse a la dependencia de Bromatología de la Municipalidad 14 �www.argentina.gob.ar/senasa � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Guía rápida sobre triquinosis Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource s.f. Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Operaciones Coordinación General de Comunicación Institucional Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Manual Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0147 Abstract A summary of the resource. Ofrece información sobre la enfermedad Triquinosis o trichinellosis, enfermedad de notificación obligatoria establecida por la normativa oficial. Explica el ciclo de la transmisión, precauciones en la elaboración de alimentos para prevenir la enfermedad y detalla las acciones del Senasa al respecto. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Introducción La enfermedad Ciclo de transmisión Signos clínicos Tratamiento Los alimentos La producción La técnica de digestión artificial La prevención En la producción En el consumo En las actividades cinegéticas Acciones del Senasa Inscripción unidades productivas para actividades de porcinos y habilitación de laboratorios RED Dilab Capacitación y asesoramiento para personas productoras de porcinos Fiscalización de procesos de producción Autotest final Preguntas Respuestas Contactos útiles Más contactos Enfermedades de los Porcinos Triquinosis