24 10 5979 https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/2d7a0900687b121ef23d5abecffbf8dd.pdf fc8111e1aef6d6a9b2c0fb6e65aae9fb PDF Text Text �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Disposiciones ex-SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Disposición SNSA N° 1020/1985 Description An account of the resource Gripe equina. Se levantan restricciones sanitarias Creator An entity primarily responsible for making the resource Dirección General del Servicio Nacional de Sanidad Animal Source A related resource from which the described resource is derived <a href="https://www.boletinoficial.gob.ar/detalleAviso/primera/9605717/19860103?busqueda=1">Disposición SNSA N° 1020/1985</a> Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource Viernes 27 de Diciembre de 1985 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Disposición Abstract A summary of the resource. Gripe equina. Se levantan restricciones sanitarias establecidas por la Disposición SNSA 618/1985 https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/683bc3fa45ba6c2f4f057d94f525d102.pdf 5f85394758d74e41a4998affdc457a4a PDF Text Text DISPOSICION 983/89 RESUMEN: Requerimiento para la inscripción de Aditivos Alimentarios en Registro de Aditivos del SENASA. (Productos de origen Animal) BUENOS AIRES, 28 de diciembre de 1989 VISTO el expediente Nº 100.169/88, en el cual la Dirección de ANALISIS DE PRODUCTOS ALIMENTICIOS Y CONEXOS, dependiente de la Dirección Nacional de DIAGNOSTICOS, CONTROL Y METODOS de este Servicio Nacional, propicia la actualización del Registro Nacional de firmas elaboradoras, distribuidoras, importadoras y exportadoras de productos aditivos alimentarios, y de las formulaciones de los mismos, y CONSIDERANDO: Que es misión de este SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL la aplicación de las normas técnico–administrativas referidas al control de la elaboración, fraccionamiento, distribución, tenencia, exportación e importación de todos los productos, subproductos y derivados de origen animal. Que es imprescindible coordinar los estudios tendientes a establecer las características especificaciones y especificaciones físico-químicas, biológicas e higiénico-sanitarios de todos los productos alimenticios. Que son de vital importancia las autorizaciones de uso y comercialización de los productos aditivos alimentarios. Que este SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL ha autorizado durante los últimos DIECIOCHO (18) años gran cantidad de productos aditivos alimentarios, muchos de los Cuales lo fueron a favor de firmas o personas jurídicas que han dejado de realizar actividades relacionadas con dichos productos. Que en el lapso citado no han producido modificaciones en las normas de aprobación de los mismos, sin que se hayan efectivizado las derogaciones pertinentes en aquellos casos en que se contravienen las mismas. Que es necesario contar con un Registro Nacional actualizado y dinámico de los productos mencionados, a efectos de evacuar consultas realizadas por otros Organismos Nacionales, Provinciales, Municipales o entes privados. Que es necesario mantener una publicación periódica de los productos aprobados, tanto para el conocimiento de las Inspecciones Veterinarias Nacionales destacadas en los establecimientos que los fabrican, como para estos mismos. Que la Dirección de ANALISIS DE PRODUCTOS ALIMENTICIOS Y CONEXOS, dependiente de la Dirección Nacional de DIAGNOSTICOS, CONTROL Y METODOS, ha efectuado una serie de estudios y puntualizado diversas consideraciones sobre el particular. Que el Anexo II de el Decreto Nº 1838 de fecha 15 de diciembre de 1988 acuerda facultades a este SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL para resolver en esta instancia. Por ello, EL ADMINISTRADOR GENERAL DEL SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DISPONE: �ARTICULO 1º.- Créase en la Dirección Nacional de DIAGNOSTICOS, CONTROL Y METODOS, por intermedio de la Dirección de ANALISIS DE PRODUCTOS ALIMENTICIOS Y CONEXOS, un Registro Nacional de Productos Aditivos Alimentarios. ARTICULO 2º.- Toda persona física o jurídica que importe, exporte, elabore, deposite, fraccione o distribuya Aditivos Alimentarios para ser usados en establecimientos habilitados por el SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL, que los hubiera aprobado con fecha anterior al 19 de marzo de 1990, deberá inscribirse en el Registro Nacional citado en el artículo anterior y gestionar una autorización para cada una de dichas especialidades. ARTICULO 3º.- La Dirección Nacional de DIAGNOSTICOS, CONTROL Y METODOS otorgará a los interesados un certificado que acredite su inscripción y otro por cada una de las especialidades registradas. ARTICULO 4º.- La Dirección de ANALISIS DE PRODUCTOS ALIMENTICIOS Y CONEXOS realizará todas las investigaciones cuali-cuantitativas, simples y factibles que fueran necesarias para garantizar la composición definitiva y la pureza adecuada de todos los aditivos autorizados. El material de investigación será provisto por los interesado o retirados de los establecimiento habilitados por el SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL por agentes oficiales debidamente autorizados. ARTICULO 5º.- En casos de comprobarse alteración en la composición de los productos aditivos alimentarios, fuera de los límites de tolerancia que se valorarán en cada caso, la Dirección de ANALISIS DE PRODUCTOS ALIMENTICIOS Y CONEXOS adoptará las medidas precautorias a fin de evitar que el producto alterado o modificado se distribuya o expenda, sin perjuicio de las sanciones que puedan corresponderles a las firmas infractoras. ARTICULO 6º.- La inscripción de las personas físicas o jurídicas a que se refiere el artículo 2º de la presente Disposición y la de los productos que se mencionan en el mismo se realizará en los formularios que, a tal efecto, proveerá la Dirección de ANALISIS DE PRODUCTOS ALIMENTICIOS Y CONEXOS. ARTICULO 7º.- Acuérdase un plazo hasta el 31 de julio del año mil novecientos noventa para que las persona físicas y jurídicas a que hace referencia el artículo 2º procedan a dar cumplimiento a las disposiciones del presente acto legal. ARTICULO 8º.- Los certificados oficiales que se mencionan en el artículo 3º tendrán carácter de permiso provisional, con un plazo de validez de CINCO (5) años a partir de la fecha de la extensión de los mismos. ARTICULO 9º.- Antes de los SESENTA (60) días de su caducidad, el o los titulares de tales certificados deberán requerir la prórroga de validez de los mismos ante la Dirección de ANALISIS DE PRODUCTOS ALIMENTICIOS Y CONEXOS, al sólo efecto de la verificación de su calidad alimentaria y la ratificación o rectificación de su autorización y registro. ARTICULO 10º.- La Dirección Nacional de DIAGNOSTICOS, CONTROL Y METODOS podrá cancelar la inscripción de cualquier producto aditivo alimentario en el Registro Nacional respectivo, cuando las firmas o personas jurídicas titulares del mismo no cumplan íntegramente con las normas técnicas-administrativas y sanitarias vigentes en su momento. �ARTICULO 11º.- El SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL publicará semestralmente un listado actualizado de todos los productos aditivos alimentarios inscriptos en el Registro Nacional respectivo. ARTICULO 12º.- En caso de producirse la cancelación de las autorizaciones acordadas, el o los titulares de las mismas deberán retirar de la venta todas las unidades de los productos involucrados, dentro de los plazos y condiciones que establezca la Dirección Nacional de DIAGNOSTICOS, CONTROL Y METODOS. ARTICULO 13º.- Regístrese, comuníquese, publíquese y dése a la Dirección Nacional del REGISTRO OFICIAL y archívese. Disposición Nº 983/89 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Disposiciones ex-SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Disposición SNSA N° 983/1989 Description An account of the resource Creación del Registro Nacional de Productos Aditivos Alimentarios Creator An entity primarily responsible for making the resource Servicio Nacional de Sanidad Animal Source A related resource from which the described resource is derived <a href="https://www.boletinoficial.gob.ar/detalleAviso/primera/7115184/19900118?busqueda=1">Disposición SNSA N° 983/1989</a> Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource Jueves 28 de Diciembre de 1989 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Disposición Abstract A summary of the resource. Créase en la Dirección Nacional de DIAGNOSTICOS, CONTROL Y METODOS, por intermedio de la Dirección de ANALISIS DE PRODUCTOS ALIMENTICIOS Y CONEXOS, un Registro Nacional de Productos Aditivos Alimentarios. https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/83cb82acf8d95add8c2507a05e464a02.pdf a7b38ca0fa20a66180b156da6c62fbc6 PDF Text Text DISPOSICION N° 11/85 SNSV RESUMEN: Establece las pautas para el envasado, cierre, acondicionamiento, capacidad y material de los envases de terapéuticos de uso agrícola. Establece las características de los envases a utilizar. Prohibe el envasado, transporte, comercialización y tenencia de terapéuticos de uso agrícola en envases de capacidad y material distintas a las que prescribe la presente. Establece las incumbencias del Registro Nacional de Terapéutica Vegetal para el control del cumplimiento de la presente norma. Confirma la creación de la Comisión Consultiva de envases. Establece el procedimiento a seguir ante posibles infracciones a la presente. Buenos Aires, 31 de octubre de 1985 VISTO la Disposición SNSV N° 11 del 22 de octubre de 1979, las presentaciones realizadas por la Cámara de Fabricantes de Vidrio de la República Argentina, atendiendo a la experiencia obtenida desde la vigencia de la citada disposición, y CONSIDERANDO: Que el decreto-ley n° 3.489/58 en su artículo 4° establece condiciones para los envases y transporte a granel de terápicos. Que es función de esta Secretaría impedir la contaminación ambiental y de todo tipo de mercadería con los terápicos destinados a la sanidad vegetal así como minimizar el riesgo de exposición a los mismos de los usuarios de dichos productos y la población en general. Que es necesario obtener el mayor grado de seguridad en el manejo de los productos de terapéutica vegetal en todas las etapas: importación, elaboración, comercialización, transporte y uso. Que la racionalización del material y la capacidad de los envases de plaguicidas coadyuvan el logro de ese objetivo, siendo conveniente regular la capacidad de los envases de los productos muy tóxicos a los fines de evitar que ellos lleguen indiscriminadamente al ámbito doméstico. Que es necesario tomar medidas que impidan la reutilización de envases vacíos de terápicos, para cualquier otro fin que no sea el reenvasado de los mismos plaguicidas que se contenían. Que la fragilidad, así como la capacidad exagerada o no adecuada para determinados ámbitos, aumentan el riesgo en el manipuleo de envases con el fin de que la industria nacional de plaguicidas pueda acceder al mercado de exportación. Que la Comisión Consultiva de Envases ha informado favorablemente sobre la conveniencia de reformar la Disposición SNSV N° 11/79. Por todo ello, EL DIRECTOR DEL SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD VEGETAL DISPONE: ARTICULO 1°.- El envasado, cierre, acondicionamiento, capacidad y material de los envases de terapéuticos de uso agrícola enumerados en los decretos n° 3.489/58; 5.769/59 y 1.419/78 quedan sujetos a las prescripciones de esta Disposición. ARTICULO 2°.- Prohíbese el envasado, transporte, comercialización y tenencia de terapéuticos de uso agrícola en envases de material y capacidad distintas a las prescripciones de esta Disposición. ARTICULO 3°.- Prohíbese el envasado de terapéuticos de uso agrícola en envases típicos o característicos de comestibles, bebestibles, farmacéuticos o de cosméticos. ARTICULO 4°.- Los envases para plaguicidas en los distintos materiales aceptados deberán presentar condiciones de calidad tal que aseguren suficiente resistencia al impacto y a las condiciones de su traslado y manipuleo. Deben ser totalmente impermeables al material contenido sin presentar pérdidas ni fugas. Deberán proveer precinto de garantía que denuncie cualquier tipo de violación. Los envases de plaguicidas líquidos deberán poseer pico volcador o cualquier otro sistema que evite salpicaduras o derrames al ser abiertos o cuando se proceda al trasvase de mu contenido. En el caso de envases de material plástico, serán fabricados exclusivamente con polietileno de alta densidad, de primeruso, respondiendo a Norma I.S.O. �Queda prohibida su fabricación con materia prima recuperada. ARTICULO 5° - Los responsables de la inscripción de terapéuticos en el Registro Nacional de Terapéutica Vegetal serán asimismo responsables de la calidad de los envases que se usen, cuyas especificaciones serán proporcionadas como información complementaria en el acto de inscripción en e l Registro Nacional de Terapéutica Vegetal. ARTICULO 6° - Definiciones: “Envase”: Es el contenedor en contacto directo con el terápico. "Sobreenvase": Cualquier aditamento destinado a proteger envases y visible exteriormente. "Cierre": Elemento de obturación de los envases, que permite cerrar los mismos. "Precinto de garantía": Aditamento que presentan los distintos tipos de cierre, que denuncia la violación del envase, y que deberá inutilizarse al abrir éste. "Granel" o "A granel": A envasado de terápicos realizado en recipientes de capacidad mayor a la permitida como límite superior, en las distintas clases toxicológicas que se establecen en esta Disposición. "Rótulo mínimo": La leyenda especial identificatoria y exigible aplicable a los sobre envases y envases a granel. ARTICULO 7° - Autorizar (conforme a Anexo 3 de esta Disposición) para los terápicos de uso agrícola el empleo de envases de vidrio especiales denominado "Línea Tox", de características, diseño y resistencia especiales, cuyas especificaciones con detallada en el Anexo I de esta Disposición. Las especificaciones, textos y formato de esta nueva línea de francos para a ser del dominio publico. Esta Secretaria se opondrá automáticamente a todo intento de registro o patentamiento en el país de la línea Tox. ARTICULO 8°.- Se clasifican los terápicos de uso agrícola mencionados en el articulo 1° en cuatro clases toxicológicas (ver Anexo II), de acuerdo a la toxicidad oral y demás del principio o sustancia activa con que están formulados. De acuerdo a la clase toxicológica a la que pertenece el formulado se establece la capacidad y el material de envase, lo que constituye el Anexo III de la presente Disposición. Esta clase toxicológicas, con las leyendas correspondiente, deberán figurar en todos los marbete del terápico. ARTICULO 9°.- Cualquier modificación que se pretendiera introducir en los materiales y/o capacidad de envases, deberá solicitarse, especialmente en el expediente de inscripción del formulado, exponiendo las fundamentaciones correspondientes. El Departamento de Evaluación y Control de Terápicos podrá en casos plenamente justificados, autorizar cambios con carácter de excepción, pudiendo solicitar el asesoramiento de la Comisión Consultiva de Envases, la que producirá el dictamen correspondiente ARTICULO 10°- A los efectos de clasificar un terápico dentro de la clase toxicológica correspondiente, se tomarán los valores de LD50 más bajos que proporcione la literatura especializada. Cuando la dosis de LD50 sea expresada entre dos valores se tomará el valor inferior. ARTICULO 11° - La toxicidad intrínseca del formulado será considerada únicamente a pedido de los interesados y a los efectos de su reubicación en las clases toxicológicas, debiendo en tal caso avalarse la solicitud con referencias concretas a literatura especializada o a ensayos toxicológicos realizados al efecto. Exclusivamente para los terápicos que correspondan a formulados sólidos, en reemplazo de las referencias concretas sobre la toxicidad intrínseca del formulado que resulte tener en cuenta la concentración de la sustancia activa. La cifra final obtenida de la LD50 será disminuida en un 50% a efectos de contar con un margen de seguridad razonable. Las cifras de la LD50 obtenidas por cálculo, en cualquier caso deberán superar por lo menos un 5% al valor mínimo de la categoría toxicológica donde se pretende ubicarlo. ARTICULO 12° - Queda estrictamente prohibida la comercialización de productos terápicos de uso agrícola a granel o transvasados a otros envases que no sean los originales. Unicamente podrán poseer o transportar terápicos a granel los fabricantes, importadores, exportadores, formuladores y fraccionadores reconocidos como tales. Hasta tanto no se cree el Registro Nacional respectivo de las actividades citadas, este reconocimiento se cumplimentará con la habilitación municipal correspondiente. Solamente será permitida la tenencia y transporte de terápicos a granel como fase intermedia de la comercialización de terápicos, para una ulterior exportación, formulación o fraccionamiento. �ARTICULO 13° - Los envases para granel deberán identificarse con un rotulado mínimo especial y único para estos casos que se imprimirá en medidas proporcionadas al tamaño del envase, debiendo mencionar el nombre común del principio activo o sustancia activa, marca comercial si la hubiera, concentración, y los símbolos toxicológicos de acuerdo a la clase toxicológica que corresponda, la que deberá mencionarse. Deberán constar también las indicaciones para el médico en caso de accidentes. La existencia de rótulo o indicaciones en idioma extranjero no reemplaza las exigencias anteriores. ARTICULO 14° - Los terápicos que poseyeran peculiaridades técnicas o de uso que exigieran envases especiales y los envases que se crearen en el futuro con materiales y propiedades diferentes a los actualmente en uso, o no previstos en la presente Disposición, serán considerados especialmente por el Departamento de Evaluación y Control de Terápicos, dependiente del Servicio Nacional de Sanidad Vegetal con la participación, cuando le fuera requerida, de la Comisión Consultiva de Envases citada por esta misma Disposición. ARTICULO 15°- El Departamento de Evaluación y Control de Terápicos con la intervención de la Comisión de Envases podrá objetar cualquier envase que no se ajuste a los términos de esta Disposición o que a su juicio no ofrezca las necesaria condiciones de seguridad, disponiendo la intervención de las partidas afectadas. ARTICULO 16° - Todos los envases de terápicos usados en sanidad vegetal deberán tener grabado o estampado en una parte bien visible en forma indeleble el símbolo toxicológico, calavera y la palabra veneno, como así también la capacidad en unidades del sistema métrico decimal y la marca o nombre del fabricante. ARTICULO 17°.- Los envases de vidrio Tox, deberán estar protegidos indefectiblemente con sobre-envase rígido El espacio, entre el envase y el sobre-envase se rellenará con material absorbente, en cantidad suficiente para absorber el contenido del producto envasado. ARTICULO 18°.- Confírmase la creación de la Comisión Consultiva de Envases, la que estará integrada por dos representantes del Servicio Nacional de Sanidad Vegetal, dos representantes de la Cámara de Sanidad Agropecuaria y Fertilizantes y un representante del C.A.C.I.A. (Cámara Argentina de Comercialización de Insumos Agropecuarios). Los miembros de la misma serán designados por el Director del Servicio Nacional de Sanidad Vegetal a propuesta de las respectivas Cámaras. La Comisión Consultiva de Envases podrá solicitar asesoramiento de entidades públicas o privadas, fabricantes, institutos tecnológicos, etc. Sus decisiones no tendrán carácter obligatorio para el Servicio Nacional de Sanidad Vegetal. ARTICULO 19° - Otórgase un plazo de un (1) año a partir de la publicación de esta Disposición para agotar las existencias de envases no adecuados a los prescriptos en el artículo 16°. Los envases prescriptos con la excepción de lo dispuesto en el artículo 16°, tendrán vigencia inmediata, desde que estaban contemplados en la Disposición SNSV N° 11 del 22 de octubre de 1979. ARTICULO 20°.- En los casos de comprobarse infracción a la presente Disposición, se aplicarán a los infractores las penalidades previstas en el Decreto-Ley n° 3.489/58 y el Decreto n° 6.769/59. ARTICULO 21° - La responsabilidad por las infracciones alcanzará no solo al titular de la inscripción del terápico, sino también el formulador y/o fraccionador. ARTICULO 22°.- Derógase las disposiciones Nros 156/66, 174/66 y 11/79 dictadas por el Servicio Nacional de Sanidad Vegetal. ARTICULO 23°.- Comuníquese a las distintas Cámaras interesadas, publíquese, dése a la Dirección Nacional del Registro Oficial y archívese. DISPOSICION S.N.S.V. N° 11 �ANEXO I �Capacidad nominal Cm3 50 100 250 500 1000 Capacidad de Min Cm3 55 110 275 550 1100 rebalse Max Cm3 60 118 289 568 1126 Peso aproximado grs 70 100 230 360 770 Espesor de pared mínima “F” mm 1,2 1,2 1,3 1,4 1,6 Altura total “A” Min mm 79,2 96,8 139,3 177,9 229,3 Max mm 80,8 98,8 141,7 180,5 232,5 Diámetro Cuerpo “D” Min mm 40,2 48,0 62,3 75,7 95,9 Max mm 41,8 50,0 64,7 78,3 99,1 Diámetro interior de Min mm 18,1 18,1 18,1 18,1 18,1 Boca “B” Max mm 18,8 18,8 18,8 18,8 18,8 Altura zona de etiqueta “E” mm 45 58 90 119 146 Ensayo de compresión vertical a 420 kg. De fuerza aplicada entre dos discos metálicos de 100 mm de diámetro, revestidos con una capa de goma de 4mm de espesor y dureza entre 50 y 60 unidades. Shore. Ensayo de compresión lateral idem 200 kg. NORMA IRAM 15 , AQL 1,5 implica que sobre 500 muestras 14 rotos es aprobado y 15 rechazado LINEA TOX CARACTERÍSTICAS TECNOLÓGICAS PARA ENVASES DE VIDRIO PARA TERAPICOS Hoja 2 �ANEXO II CLASES TOXICOLOGICAS SEGÚN TOXICIDAD ORAL (LD 50 EN MG/KG PESO VIVO RATA HEMBRA) Y DERMAL (LD 50 EN MG/KG PESO VIVO CONEJO) Terápicos comercializados en forma líquida: Clase A Extremadamente tóxicos Clase B Muy tóxicos Clase C Moderadamente tóxicos Clase D Levemente tóxicos Oral Hasta 20 Dermal Hasta 40 Desde 21 a 200 Desde 41 a 400 Desde 201 a 2000 Desde 401 a 4000 Desde 2001 y mayores Desde 4001 y mayores Terápicos comercializados en forma sólida: Clase A Extremadamente tóxicos Clase B Muy tóxicos Clase C Moderadamente tóxicos Clase D Levemente tóxicos Oral Hasta 5 Dermal Hasta 10 Desde 6 a 50 Desde 11 a 100 Desde 51 a 500 Desde 101 a 1000 Desde 501 y mayores Desde 1001 y mayores �ANEXO III LIQUIDOS LD 50 en mg/kg A Clase Oral aguda Hasta 20 Dermal aguda Hasta 40 B De 21 a 200 De 41 a 400 C De 201 a 2000 De 401 a 4000 D Superior a 2000 Superior a 4000 Material Metal Plástico rígido Vidrio Tox Metal Plástico rígido Vidrio Tox Metal Plástico rígido Vidrio Tox Metal Plástico rígido Capacidad de envase en ls. Inferior Superior 1 25 1 1 1 200 Libre Libre 5 200 Libre 5 Libre 200 ANEXO III SOLIDOS LD 50 en mg/kg A Clase Oral aguda Hasta 5 Dermal aguda Hasta 10 B De 6 a 50 De 11 a 100 C De 51 a 500 De 101 a 1000 D Superior a 500 Superior a 1000 Material Metal Plástico rígido. Plástico flexible con sobreenvase rígido o flexible a alta seguridad Vidrio Tox Metal Plástico rígido Plástico flexible con sobreenvase rígido o flexible de alta seguridad Vidrio Tox Metal Plast. Rig. Plast. Flex. Plast. Flex. C/sobreenvase rígido o flexible de alta seguridad Vidrio Tox Metal Plást. Ríg. Plást. Flex. C/sobreenvase ríg. o flex. De alta seguridad Capacidad de envase en Kg. Inferior Superior 1 5 1 5 1 5 Libre Libre Libre Libre Libre 5 200 200 25 200 Libre Libre Libre Libre 10 200 200 200 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Secretaría de Agricultura, Ganadería y Pesca Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Disposición SNSV N° 0011/1985 Description An account of the resource Envases de terapéuticos de uso agrícola Creator An entity primarily responsible for making the resource Dirección General del Servicio Nacional de Sanidad Vegetal Source A related resource from which the described resource is derived <a href="https://www.boletinoficial.gob.ar/detalleAviso/primera/9613154/19851113?busqueda=1">Disposición SNSV N° 0011/1985</a> Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource Jueves 31 de Octubre de 1985 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Disposición Abstract A summary of the resource. Establece las pautas para el envasado, cierre, acondicionamiento, capacidad y material de los envases de terapéuticos de uso agrícola. Establece las características de los envases a utilizar. Prohibe el envasado, transporte, comercialización y tenencia de terapéuticos de uso agrícola en envases de capacidad y material distintas a las que prescribe la presente. Establece las incumbencias del Registro Nacional de Terapéutica Vegetal para el control del cumplimiento de la presente norma. Confirma la creación de la Comisión Consultiva de envases. Establece el procedimiento a seguir ante posibles infracciones a la presente. https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/c42fa1039ac82104299390102b468b3c.pdf 0ba436a0c65a57339262256adc49ad53 PDF Text Text DISPOSICION N° 30/88 Buenos Aires, 5 de febrero de 1988 EL DIRECTOR GENERAL DEL SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD VEGETAL DISPONE: Artículo 1°: Autorízase la utilización del Bromuro de Metilo como fumigante para la desinfestación de fruta cítrica en reemplazo del Dibromuro de etileno, aplicado con equipos móviles o cámaras fijas en las dosis y condiciones abajo indicadas (*). Artículo 2°: Los interesados en habilitar cámaras para desinfestación de fruta cítrica o equipos móviles deberán solicitar la correspondiente habilitación al Servicio Nacional de Sanidad Vegetal, acompañando planos y un informe técnico descriptivo del equipo de desinfestación. Artículo 3°: Para la aprobación de la cámara o equipo móvil es menester satisfacer las pruebas de efectividad y de seguridad que serán fiscalizadas por el Servicio Nacional de Sanidad Vegetal a través del Departamento de Fiscalización Fitosanitaria. Artículo 4°: En el caso de equipos móviles se colocará un techo flexible de PVC con tela, de espesor superior a los 150 micrones para asegurar la hermeticidad del habitáculo, así como se sellará debidamente, piso y laterales para evitar pérdidas del fumigante. Artículo 5°: Se deberán verificar las posibles fugas de fumigantes, con la lámpara detectora de haluros durante cada tratamiento. Artículo 6°: Se prohibirá la presencia de personas ajenas a los responsables en la cabina del camión o adyacencias del mismo durante el tratamiento. Artículo 7°: Las tareas de selección, lavado, secado, etc., de las frutas a tratarse con Bromuro de metilo, deberán realizarse en forma previa al tratamiento. Artículo 8°: Las frutas no deberán estar envueltas ni tratadas con sustancias que dificulten la penetración del gas a la misma. Artículo 9°: Tómese nota, comuníquese y vuelva a sus efectos al Departamento de Fiscalización Fitosanitaria. DISPOSICION N° 30 (*) ANEXO: DOSIS DE BROMURO DE METILO RECOMENDADA: 32 gr/m3 con temperatura del gas superior a 26,5 °C, temp. de la pulpa de la fruta superior a 15,5 °C. Tiempo de exposición de la fruta: 2 horas. � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Secretaría de Agricultura, Ganadería y Pesca Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Disposición SNSV N° 0030/1988 Description An account of the resource Autorización del uso de Bromuro de Metilo para desinfección de fruta cítrica Creator An entity primarily responsible for making the resource Dirección General del Servicio Nacional de Sanidad Vegetal Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource Viernes 5 de Febrero de 1988 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Disposición Abstract A summary of the resource. Autorízase la utilización del Bromuro de Metilo como fumigante para la desinfestación de fruta cítrica en reemplazo del Dibromuro de etileno, aplicado con equipos móviles o cámaras fijas en las dosis y condiciones indicadas en la presente disposición. https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/54e2e97173fb82a8988bdc4685e4652e.pdf f3292f821ea45e5779adf32f42848cb3 PDF Text Text DISPOSICION S.N.S.V. N° 50/73 Buenos Aires, 5 de abril de 1973 EL DIRECTOR GENERAL DEL SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD VEGETAL DISPONE: Artículo 1°: Todo vehículo o envase (bolsa, lienzo, etc.), que haya sido utilizado para el transporte de algodón en bruto o sus partes (fibra, semilla, etc.), serán sometidos a limpieza y desinfestación cada vez que deban ingresar a las provincias de SANTIAGO DEL ESTERO, CORDOBA Y SANTA FE (Departamento 9 de Julio). Artículo 2°: La limpieza y desinfestación a que se refiere el artículo anterior, consistirá en la extracción por cualquier medio de todo residuo vegetal, los que serán quemados, procediéndose luego a la pulverización de los vehículos y a la fumigación de los envases. Artículo 3°: Los productos aconsejados para la desinfestación de los vehículos son los siguientes: pulverizaciones con mercaptothion 100% liquido emulsionable al 5º/oo (cinco por mil) y para la fumigación de los envases: bromuro de metilo a razón de 80 grs. por cada m3, con la exposición de 76 horas como mínimo. Artículo 4°: Podrán realizar la operación de limpieza y desinfestación, el propietario del camión, el transportador, los establecimientos desmontadores, o bien encomendar dichas tareas a entes que se dediquen a trabajos fitosanitarios; estos últimos deberán estar inscriptos en el Registro de Empresas, de conformidad con lo establecido en el Decreto N° 7466/64 y Disposición D.G. N° 253/64. Artículo 5°: El personal de las Jefaturas de Zona, controlará el cumplimiento de la presente disposición y expedirá los Certificados de Libre Tránsito que corresponda. Artículo 6°: Para los casos de infracciones, se aplicarán las medidas de seguridad y las penalidades previstas en los artículos Nros. 9 y 11 del DecretoLey 6704/63. Artículo 7°: La presente disposición será publicada en el Boletín Oficial, considerándose esta publicación suficiente notificación a los efectos del cumplimiento de las obligaciones emanadas de la misma. Artículo 8°: Regístrese, hágase saber por circular y archívese. DISPOSICION S.N.S.V. N° 50 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Secretaría de Agricultura y Ganadería Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Disposición SNSV N° 0050/1973 Description An account of the resource Normas para el ingreso de algodón a diversas provincias Creator An entity primarily responsible for making the resource Dirección General del Servicio Nacional de Sanidad Vegetal Source A related resource from which the described resource is derived <a href="https://www.boletinoficial.gob.ar/detalleAviso/primera/9610594/19730417?busqueda=1">Disposición SNSV N° 0050/1973</a> Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource Jueves 5 de Abril de 1973 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Disposición Abstract A summary of the resource. Todo vehículo o envase (bolsa, lienzo, etc.), que haya sido utilizado para el transporte de algodón en bruto o sus partes (fibra, semilla, etc.), serán sometidos a limpieza y desinfestación cada vez que deban ingresar a las provincias de SANTIAGO DEL ESTERO, CORDOBA Y SANTA FE (Departamento 9 de Julio). https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/5b5e1b30e83452e619a3e49fe8d07090.pdf 98172a0dc5d79e0259ba34e6b83b35e1 PDF Text Text DISPOSICION 80/71 BUENOS AIRES, 21 octubre de 1971. VISTO el expediente nº 71.593/71, en el que el DEPARTAMENTO DE TABACO de la DIRECCION NACIONAL DE FISCALIZACION Y COMERCIALIZACION AGRICOLA informa sobre el problema que en el corto plazo acarreará la contaminación en exceso de algunos plaguicidas actualmente en uso para tratamientos sanitarios de cultivos de tabaco y lo ordenado por las Leyes 18.073 y 18.796 y sus respectivos decretos reglamentarios 2.678/69 y 1.417/70, y CONSIDERANDO: Que los análisis de las partidas de tabaco, exportadas a la REPÚBLICA FEDERAL ALEMANA, acusan residuos de plaguicidas que por su magnitud, han sido objetadas en dicho país; Que este SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD VEGETAL tiene conocimiento por oportunas comunicaciones, de la posible prohibición de importación en la REPUBLICA FEDERAL ALEMANA a partir de 1973, de partidas de tabaco que excedan los límites de tolerancia en residuos de plaguicidas fijados en la reglamentación del país de referencia; Que el exceso de residuos de los plaguicidas de que se trata originarán en un futuro inmediato, problemas en la comercialización del tabaco, que es necesario evitar, en salvaguarda de la salud humana y en atención al riesgo de la posible pérdida de importantes mercados compradores del exterior; Que los plaguicidas que originan estos problemas son técnicamente reemplazables por otros igualmente eficaces, no implicando su uso los riesgos que se señalan; Que las sustancias que se ingieran o inhalen por hábito, costumbre o como coadyuvante, tengan o no valor nutritivo, deben ser tratadas con la acepción de alimento; Que el SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD VEGETAL, es el organismo de aplicación de las Leyes 18.073 y 18.796, estando facultado para modificar o establecer los limites máximos de (tolerancia o nivel accional) de residuos en los productos y subproductos agropecuarios; Por ello, atento a la autorización conferida por la Ley 18.796 en su artículo 1º (Ley 18.073 artículo 3º y modificatorios) EL DIRECTOR GENERAL DEL SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD VEGETAL DISPONE 1º - Incorporar al TABACO a los cuadros anexos a que hace referencia el artículo 1º de la Ley 18796 en su parte modificatoria del artículo 3º de la Ley 18073, con la tolerancia 0 de residuos para los siguientes plaguicidas 1)xxxxxxx – 2) aminotriazol – 3) aramite – 4) clordano – 5) compuestos arsenicales – 6) compuestos fluorados - 7) compuestos mercuriales – 8)DDT – 9) dieldrin – 10) endrin – 11) heptacloro y su epóxido – 12) hexacloro ciclo hexano (HCH) – 13) lindano – 14) isodrin – 15) compuesto de selenio – 16) XXX. 2º - Prohibir la aplicación, sobre cultivos de tabaco o en cualquiera de las etapas de comercialización, industrialización o almacenamiento del tabaco, de los plaguicidas a que se hace referencia en el apartado primero. Esta prohibición regirá a partir de los sesenta (60) días corridos de la fecha de la presente disposición. 3º - Prohibir, a partir de la fecha, en la propaganda comercial y en los rótulos de los envases de los plaguicidas a que se hace referencia en el apartado primero, la inscripción de la prescripción de uso �para tratamiento de las plagas del tabaco. En los rótulos actualmente inscriptos la prescripción de uso a que se hace referencia deberá ser conformada a lo establecido en esta disposición dentro de los sesenta (60) días corridos de la fecha de la presente. 4º- Las infracciones a la presente disposición serán penadas conforme a lo establecido en la Ley 18.073. 5º - Regístrese; comuníquese; pase al DEPARTAMENTO DE EVALUACION Y CONTROL, a sus efectos y archívese. DISPOSICIÓN S.N.S.V. Nº 80/71 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Secretaría de Agricultura y Ganadería Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Disposición SNSV N° 0080/1971 Description An account of the resource Residuos de plaguicidas en tabaco Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource Jueves 21 de Octubre de 1971 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Disposición Abstract A summary of the resource. Se establecen los límites máximos de tolerancia o nivel accional de residuos de plaguicidas en tabaco. Se establece la prohibición de la aplicación de los plaguicidas que en la presente se detallan, en el cultivo del tabaco. Creator An entity primarily responsible for making the resource Dirección General del Servicio Nacional de Sanidad Vegetal https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/c9cafc32b652bfac2b9f0816a4f50ed3.pdf a26766bce5c13ac59d57b46009da2d5f PDF Text Text Documento de aproximación a la evaluación de la aptitud alimentaria de animales de interés pecuario obtenidos por medio de técnicas de clonación Buenos Aires, Agosto de 2012 �Índice Resumen ....................................................................................................................... 3 Elaboración del documento ........................................................................................... 5 Agradecimientos ........................................................................................................... 5 Introducción.................................................................................................................. 6 Objetivos ...................................................................................................................... 7 Alcance ......................................................................................................................... 7 Tecnologías .................................................................................................................. 7 TNCS: ................................................................................................................... 8 Twinning:.............................................................................................................. 9 Antecedentes en otros países ......................................................................................... 9 Canadá .................................................................................................................. 9 Australia y Nueva Zelanda (FSANZ): ................................................................ 10 Unión Europea: ................................................................................................... 10 Autoridad Europea de Inocuidad Alimentaria (EFSA) ......................................... 11 Reino Unido: ....................................................................................................... 12 (EE.UU.) Administración de Alimentos y Drogas (FDA) .................................... 13 Evidencia científica:.................................................................................................... 13 Performance of dairy cattle clones and evaluation of their milk composition. ...... 14 Evaluation of meat products from cloned cattle: biological and biochemical properties. ........................................................................................................... 14 Nutritional value of milk and meat products derived from cloning. ...................... 14 The health of somatic cell cloned cattle and their offspring.................................. 15 Meat and milk compositions of bovine clones. .................................................... 15 Japanese Experience on Animals Cloned by Somatic Cell Nuclear Transfer. ....... 16 Agency Perspectives on Food Safety for the Products of Animal Biotechnology (2012). ................................................................................................................ 16 Conclusión .................................................................................................................. 17 Glosario ...................................................................................................................... 18 Referencias bibliograficas: .......................................................................................... 20 2 �Documento de aproximación a la evaluación de la aptitud alimentaria de animales de interés pecuario obtenidos por medio de técnicas de clonación Resumen El interés por clonar animales, desde el punto de vista económico, proviene fundamentalmente de la intención de mantener en el tiempo una determinada genética de alto valor debido a sus cualidades productivas particulares. Estas técnicas de clonación permiten ampliar el número de individuos seleccionados zootécnicamente a los efectos de contar con réplicas idénticas del animal de interés, lo que posibilita su utilización como reproductores. En consecuencia, la descendencia contará con las características productivas heredadas del animal originalmente clonado. El destino de los animales clonados es generalmente reproductivo, y no se utilizan con la intención de que ingresen a la cadena alimentaria como principal objetivo, ya que actualmente clonar un animal es costoso en términos técnicos y económicos. Con respecto a la manufactura de alimentos, el producto que ingresa a la cadena alimentaria deriva mayormente de la progenie de los animales obtenidos por clonación. Asimismo, existen otras aplicaciones de las técnicas de clonación que no son sólo para consumo alimentario, sino para experimentación y desarrollo de emprendimientos comerciales diversos. Aún es baja la eficacia de obtención de clones debido a que se presenta una alta tasa de mortalidad en embriones, fetos, neonatos y crías de hasta seis meses de edad, según la especie, producto de un desorden en la regulación epigenética, lo que torna dificultosa y onerosa la obtención de un animal clonado mediante las técnicas actuales de clonación. A medida que avance la ciencia en el ajuste de las técnicas de clonación, será posible reducir la tasa de mortalidad y los costos debido al aumento en la sobrevida de animales clonados. Diferentes entidades de países interesados en la clonación han realizado con éxito experiencias con dicha tecnología en ganado bovino y porcino, y en menor proporción en cabras y ovejas. De las mismas surgen ciertos aspectos a perfeccionar en 3 �el desarrollo de los clones durante su gestación y en sus primeros meses de vida. Se considera que estos avances permitirán mejorar las técnicas de clonación. En consecuencia, se estima que en un futuro no muy lejano, el número de animales clonados de diferentes especies de interés pecuario se incremente paulatinamente en forma proporcional a los avances en los ajustes de las técnicas de clonación y a la disminución de los costos. Esto aumentará las probabilidades de que ingresen clones a la cadena alimentaria, una vez que hayan concluido con su período productivo. Es por ello que corresponde brindar una opinión aclaratoria sobre la aptitud alimentaria de los animales clonados y su progenie, basada en los antecedentes documentales y estudios experimentales existentes, habida cuenta de los mercados argentinos y el potencial impacto en ellos debido a las posibles restricciones comerciales de los productos derivados de clones y su descendencia. 4 �Elaboración del documento El presente documento se realizó en el Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA), cuya confección estuvo a cargo de los siguientes profesionales: Batista, Juan Carlos; Colusso, Graciela; Eliseix, Julio Pedro; Junco, Mariano; Maggi, Andrés; Meoniz, Ignacio. Agradecimientos Se agradece a los que participaron en la redacción del borrador final antes de su adopción: Aisen Eduardo4, Burachik Moisés3, Dillon Jorge H6, Gimenez Laura5, Germán Kaiser1, Maloberti Soledad5 y Rubinstein Clara 2. 1 INTA – EEA Balcarce, Departamento de Producción Animal, Grupo de Biotecnología de la Reproducción. 2 ILSI Argentina. 3 Foro Argentino de Biotecnología. 4 Laboratorio de Teriogenología “Dr. Héctor H. Morello”, Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional del Comahue. Cinco Saltos, Río Negro. 5 Dirección de Normas Cuarentenarias, Dirección Nacional de Sanidad Animal, SENASA. 6 Dirección Nacional de Sanidad Animal, SENASA. 5 �Introducción El mejoramiento del ganado ha sido aplicado desde la antigüedad en pos de procurar las características deseadas e incrementar su productividad. A los efectos de lograr estos objetivos, el hombre utilizó la selección de los animales destacados, en un principio en forma intuitiva y posteriormente con base científica. En los últimos años, el progreso en este ámbito ha sido considerable. La adopción de las técnicas denominadas ART´s (assisted reproductive technologies), comprenden desde la inseminación artificial a la clonación. Esto ha permitido aumentar la eficiencia reproductiva y el progreso genético de los animales destinados a la producción. En la Argentina, a partir de la década del 90, la clonación pasó a ser un tema de interés para la investigación y desarrollo en empresas privadas e instituciones públicas, posibilitando así su rápida adopción. Actualmente, la clonación se encuentra contemplada en el Plan Estratégico para el Desarrollo de la Biotecnología Agropecuaria 2005-2015. Diversos convenios firmados entre universidades, organismos públicos y empresas privadas sustentan el desarrollo de nuevos proyectos. La clonación per se está orientada principalmente hacia la multiplicación de animales de interés productivo, a la generación de animales con destino experimental y a la conservación de especies en peligro de extinción. En lo que se refiere a la regulación de la clonación, no existe en Argentina una norma específica, y por lo tanto, no se encuentra regulada la técnica ni los productos derivados de la misma. En el ámbito internacional, el panorama tiene diversas posturas, mas allá de que aún no existe legislación que prohíba el comercio de dichos productos. No obstante, es posible que en el corto plazo la Unión Europea (UE) regule y aplique restricciones en el comercio de clones y su progenie, debido a presiones de los Países Miembro. Los organismos competentes en seguridad alimentaria de los Estados Unidos (FDA) y la UE (EFSA) han generado evaluaciones de riesgo y se han expedido en el tema. Los documentos elaborados por dichas entidades declaran que en lo que respecta a la inocuidad, no existe evidencia de que el consumo de productos derivados de clones implique un mayor riesgo para la salud que los alimentos convencionales. En 6 �nuestro país, ha cobrado relevancia a partir del año 2008, y en la actualidad se ha contemplado la necesidad de que las autoridades dispongan de un documento oficial donde se clarifiquen diversos aspectos que hacen a la inocuidad de alimentos derivados de clones, con el objetivo de brindar elementos de gestión ante potenciales impactos restrictivos en los mercados de exportación. Objetivos El presente documento tiene como objetivo desarrollar una aproximación primaria de evaluación de riesgos de animales de interés productivo obtenidos por clonación, con la finalidad de brindar una opinión oficial sobre la aptitud alimentaria de los mismos, sus alimentos derivados, y su progenie, destacando los aspectos relevantes en lo que se refiere a inocuidad del alimento y sus propiedades nutritivas. De esta manera, se establecerán algunos conceptos con el propósito de clarificar cuestiones inherentes a la aptitud alimentaria de la carne, leche y todo otro tejido comestible para el hombre y animales y, en consecuencia, brindar un marco de información que sustente la libre comercialización de animales clonados y sus alimentos derivados. Alcance La presente opinión sobre la aptitud alimentaria de productos derivados de animales clonados corresponde a especies de interés alimentario. Este documento no pretende abordar temas relacionados con cuestiones éticas, sociales o religiosas derivadas de la utilización de las técnicas de clonación, ni aquellos aspectos relacionados con el bienestar animal. Tecnologías La técnica de clonación que será principalmente considerada en el presente documento, es la denominada TNCS (Transferencia Nuclear de Célula 7 �Somática). Esta técnica permite la reproducción asexual de un individuo, obteniendo otro genéticamente idéntico a su progenitor respecto a su genoma nuclear, dado que la población mitocondrial aporta un mínimo de ADN que no pertenece al mismo linaje que el núcleo de la célula somática, sino al linaje del ovocito. A su vez, se describen otras técnicas menos comunes. Actualmente se conocen básicamente dos técnicas para obtener animales por clonación, estas son la Transferencia Nuclear (transferencia nuclear de célula somática TNCS) y la técnica conocida como Twinning (gemelos). TNCS: La Transferencia Nuclear puede realizarse mediante dos técnicas diferentes, estas son: • Roslin: La célula donante del núcleo y el ovocito enucleado se colocan en proximidad y se les aplica un pulso eléctrico. Se fusionan las células, el embrión comienza su desarrollo, y posteriormente éste es implantado en un vientre receptor. Este método fue creado en el instituto Roslin y fue la técnica utilizada en la creación de la oveja Dolly. Esta técnica es la más utilizada en mamíferos de interés zootécnico y comercial. • Honolulu: Se extrae el núcleo de la célula somática y se introduce mediante una microinyección en un ovocito enucleado, se cultiva en un medio apropiado, el embrión desarrollado se implanta en un vientre receptor. Técnica es más utilizada en roedores. Existen ciertos efectos colaterales que se producen en el uso de las técnicas de clonación, los cuales han sido asociados a los resultados de una desregulación epigenética del núcleo de la célula somática que suplanta al núcleo del ovocito utilizado. Estos efectos, se corresponden a ciertas patologías que no difieren de las que surgen naturalmente en la reproducción sexual convencional, pero sí se observa un aumento en su incidencia. Lo importante es que no hay cambios genéticos (mutaciones, deleciones, etc), sino alteraciones en la expresión de genes normales. No obstante ello, estos efectos no resultan adversos en relación a la inocuidad, y se diluyen totalmente luego de los primeros meses de edad. 8 �Twinning: Consiste en la división mecánica de un embrión en un estadio temprano en dos o más embriones. Se fertiliza el ovocito, se deja crecer hasta la etapa embrionaria temprana, se lo divide en dos o más embriones que se cultivan en un medio apropiado y posteriormente se implantan en vientres receptores. Los clones obtenidos con esta tecnología son genéticamente idénticos entre sí (gemelos), a diferencia de los clones que se originan a partir de una célula somática (TNCS). Si bien es observable que existen diferentes tipos de inconvenientes o anormalidades que afectan al animal clonado y a madres sustitutas durante la gestación y los primeros meses de vida, tales como dificultades en la parición (mayormente debido al mayor tamaño de fetos macrosómicos, patología conocida también como Síndrome de la cría macrosómica o Large Offspring Syndrome, LOS), disfunciones placentarias, mortalidad y morbilidad perinatal, estos no difieren de los que resultan con el uso de otras técnicas de reproducción asistida, por lo que no se limitan ni son exclusivas de los animales clonados, aunque se observan en ellos con mayor frecuencia. A su vez, es de destacar que en cerdos y cabras clonados no se observan dichas anormalidades. Antecedentes en otros países Agencias internacionales en el campo de la seguridad alimentaria han emitido opinión en relación a la clonación de animales, manifestando que no existen riesgos para la salud derivados de su consumo. El Codex Alimentarius no ha incluido por el momento en su agenda, el tema de alimentos derivados de animales clonados. Canadá Health Canada declaró que los alimentos producidos a partir ganado desarrollado a través de la técnica TNCS y de su progenie se consideran bajo la definición de “Novel Foods”. Éstos están sujetos a las regulaciones de la Division 28, Part B, de la Food and Drug Regulations. 9 �Los desarrolladores que producen los animales por medio de TNCS no deben introducir los productos o subproductos de cualquier clon o su progenie a la cadena alimentaria humana, a menos que hayan sido sujetos a evaluación de inocuidad requerida para “Novel Foods” antes de ser comercializados. Los desarrolladores que deseen utilizar esta tecnología para producir ganado, deben abstenerse de comercializar dichos productos hasta que los requerimientos sean determinados y las guías estén disponibles, tanto para consumo humano como animal. Los animales clonados por TNCS, su progenie y sus productos y sus subproductos son también considerados como “Novel Foods” bajo el Acta de Protección Ambiental Canadiense de 1999, y regulados bajo esta norma. Australia y Nueva Zelanda (FSANZ): Nueva Zelanda considera que no hay base científica para prohibir los alimentos derivados de los clones animales. Existe un sistema de trazabilidad y registro de todos los animales clonados. Australia no posee una regulación específica en cuanto a la inocuidad alimentaria para los alimentos provenientes de clones. Sin embargo, existe un acuerdo informal entre el gobierno y la industria para que los clones no entren en la cadena alimentaria. No existe regulación para las importaciones de material reproductivo proveniente de clones. En este país se utiliza la técnica de clonación en bovinos y ovinos. Unión Europea: En enero del 2008, la UE propuso la suspensión temporaria de la clonación de animales destinados a la producción de alimentos, junto con la suspensión temporaria de la técnica de clonación. Hasta el momento, la UE no tiene ninguna regulación específica para la importación de material reproductivo (semen y embriones) proveniente de clones de animales. En lo referido a “Novel Foods” (alimentos novedosos), está en discusión la 10 �inclusión de los alimentos provenientes de los animales clonados (Regulación CE N° 258/97 sobre nuevos alimentos y nuevos ingredientes alimentarios). Dinamarca es el único estado miembro que ha introducido, a través de una ley específica, una prohibición nacional sobre el uso de clonación animal con propósitos comerciales. Autoridad Europea de Inocuidad Alimentaria (EFSA) En el documento de Actualización del Estado del Arte sobre Clonación Animal, publicado por EFSA el 5 de julio de 2012, al igual que los tres documentos anteriores del 2008, 2009 y 2010, se reitera que la inocuidad de la carne y la leche de clones y de su descendencia, no presenta diferencias en comparación con las de los animales de cría convencional. Tampoco anticipa consecuencias para el medio ambiente, si bien reconoce la limitada disponibilidad de datos. Se menciona que si la técnica es utilizada de manera apropiada, junto con medidas idóneas de gestión, no debería afectar desfavorablemente la diversidad genética. Se señala la existencia de altos índices de mortalidad perinatal y morbilidad de los clones, como así también partos distócicos y abortos. Estos índices son considerablemente superiores a los índices observados en los animales de cría convencional procedentes de reproducción sexual. Por otra parte señala que los animales clonados pueden presentar cierta resistencia a determinadas enfermedades y/o podrían adaptarse fácilmente a condiciones ambientales difíciles, lo que puede aportar beneficios desde el punto de vista de sanidad animal. La evidencia científica disponible hasta el momento, demuestra que los alimentos obtenidos a partir de animales clonados o de su descendencia no plantean preocupaciones de inocuidad alimentaria. Por el contrario, los riesgos para el bienestar de los animales, constituirían un argumento sólido para que la Comisión Europea inicie un proceso legislativo. Para la evaluación de la seguridad de la leche y carne vacuna y de cerdos derivados de clones o de su progenie, se consideran: la información del análisis composicional y nutricional, la probable presencia de nuevos componentes, el estado de 11 �salud animal y la información disponible respecto a la eventual toxicidad y alergenicidad. Basados en el conocimiento actual, no se considera que existan diferencias en términos de inocuidad alimentaria de los alimentos derivados de clones saludables y su progenie (bovinos y porcinos) comparados con aquellos animales saludables criados por métodos convencionales. Hasta el presente, la limitada evidencia científica disponible respalda la presente conclusión. Reino Unido: La posición del Reino Unido es coincidente con EFSA para vacunos y porcinos, al considerar que no hay evidencia científica que indique diferencias en relación a la inocuidad alimentaria de los animales clonados y sus descendientes. El Reino Unido considera que una prohibición de los alimentos derivados de clones (como declara EFSA) resulta desproporcionada en términos de aptitud alimentaria y bienestar animal. El bienestar animal de todos los animales de granja incluyendo los clones y su descendencia se encuentran protegidos por la legislación vigente. Carnes y leche de animales clonados se clasifican como “Novel Foods” porque se obtienen por métodos no tradicionales de cría y se encuentran bajo la Regulación EU de Novel Foods vigente desde 1997. Por lo tanto, como tales, se requiere el análisis de inocuidad antes de que sean legalmente comercializados dentro de Unión Europea. Los alimentos categorizados como Novel Foods son sólo autorizados después de una evaluación de riesgo detallada y la autorización puede incluir la provisión de algún etiquetado necesario. A la fecha, no hubo solicitudes de autorización de alimentos de clones o de sus descendientes. Entre los animales de granja más clonados están los bovinos y cerdos de alto valor. Éstas son las únicas especies para las que hay suficientes datos disponibles para permitir realizar ensayos de inocuidad y estudios de bienestar animal. La FSA (Food Standard Agency) es el organismo responsable en materia de inocuidad alimentaria en el Reino Unido. La responsabilidad para el etiquetado de alimentos es compartida con DEFRA (Department for Environment Food and Rural Affairs). En diciembre de 2010, la junta de la FSA y DEFRA consideraron que, para propósitos de inocuidad alimentaria, no sería necesario y resultaría desproporcionado el etiquetado obligatorio de clones y sus productos derivados. Además, DEFRA declara 12 �que el etiquetado sería inaplicable e impracticable porque no hay un sistema de trazabilidad que se pueda utilizar tanto para productos importados como para los generados en el país. (EE.UU.) Administración de Alimentos y Drogas (FDA) Luego de estudios y análisis de riesgo detallados, la FDA ha concluido que la carne y leche de clones de vacas, cerdos y cabras, así como de su descendencia y de clones de otras especies tradicionalmente consumidas como alimentos son tan seguras como las provenientes de animales obtenidos por mejoramiento convencional, y no recomienda la aplicación de medidas adicionales (como el etiquetado), para alimentos y piensos derivados de clones. En la actualidad, la FDA no tiene suficiente información para decidir sobre el riesgo derivado del consumo de alimentos provenientes de clones de especies diferentes de las vacas, cerdos y cabras, y continúan recomendando como medida precautoria, que los productos comestibles de ovejas clonadas u otras especies diferentes a las analizadas no sean introducidos dentro de la cadena alimentaria. Desde el punto de vista agropecuario, los clones son utilizados con fines reproductivos, motivo por el cual, se considera poco probable que ingresen a la cadena alimentaria en número significativo. En conclusión, el análisis de riesgo realizado por la FDA concluye que la carne y leche proveniente de vacas, cerdos y cabras clonadas son tan inocuas como los alimentos que se utilizan a diario. Evidencia científica: A continuación se presentan las conclusiones de algunos trabajos realizados por la comunidad científica internacional, sobre aspectos relacionados a la inocuidad, calidad y otros, con el objeto de clarificar el conocimiento existente y brindar sustento al propósito del presente documento. 13 �Performance of dairy cattle clones and evaluation of their milk composition. Norman HD, Walsh MK. Cloning Stem Cells. 2004; 6(2):157-64. Animal Improvement. Programs Laboratory, Agricultural Research Service, US Department of Agriculture, Beltsville, Maryland 20705-2350, USA. dnorman@aipl.arsusda.gov El análisis composicional de la leche de bovinos clonados no demostró diferencias significativas cuando fue comparado con el de la leche de animales no clonados, con respecto a sólidos totales, grasas totales, perfil de ácidos grasos, lactosa y proteínas. Tampoco se encontraron diferencias cuando estos valores fueron comparados con los de la literatura científica. Evaluation of meat products from cloned cattle: biological and biochemical properties. Takahashi S, Ito Y. Cloning Stem Cells. 2004;6(2):165-71. Department of Animal Breeding and Reproduction, National Institute of Livestock and Grassland Science, Ibaraki, Japan. seiya@affrc.go.jp Este estudio demuestra que al comparar clones vacunos con animales no clonados, no se encuentran diferencias significativas en la composición de la carne, y sus propiedades alergénicas y de toxicidad. El estudio de alimentación de ratas con carne proveniente de clones muestra la ausencia de anormalidades en los parámetros que determinan la salud y el crecimiento de estos animales. Por lo expuesto se concluye que no existen diferencias biológicas y bioquímicas entre la carne de animales clonados y no clonados. Nutritional value of milk and meat products derived from cloning. Tomé D, Dubarry M, Fromentin G. Cloning Stem Cells. 2004;6(2):172-7. UMR INRA 914 Physiologie de la Nutrition et du Comportement Alimentaire, Institut National Agronomique Paris-Grignon, Paris, France. tome@inapg.fr En el estudio de alimentación de ratas no se encontraron diferencias significativas entre la leche y la carne derivados de vacas clonadas y no clonadas. 14 �The health of somatic cell cloned cattle and their offspring. Wells DN, Forsyth JT, McMillan V, Oback B. Cloning Stem Cells. 2004;6(2):101-10. AgResearch Ltd., Ruakura Research Centre, Hamilton, New Zealand. david.wells@agresearch.co.nz Encontraron que entre el destete y los cuatro años de edad la tasa de mortalidad anual en vacas clonadas a través de la técnica TNCS es de al menos del 8%, pero las razones de muerte son variables y potencialmente evitables. El principal factor de mortalidad en este periodo es la eutanasia debido a anormalidades músculo esqueléticas. En contraste, en relación a la progenie de clones, no hay una mayor tasa de muertes más allá del destete. Entre las vacas clonadas que sobreviven, los perfiles sanguíneos y otros indicadores de función fisiológica general como tasa de crecimiento, reproducción, crianza de hijos y producción de leche están todos dentro de los rangos fenotípicos normales. La viabilidad de la descendencia derivada de vacas clonadas, parece ser completamente normal (de 52 nacimientos el 85% sobrevivió las primeras 24 hs., al igual que las vacas control). La excelente viabilidad y los resultados hematológicos y bioquímicos de la descendencia de los clones se encuentran dentro de los rangos normales. Meat and milk compositions of bovine clones. X. Cindy Tian, et al. PNAS (Proceedings of the National Academy of Sciences). 2005;18(102):6261-66. Center for Regenerative Biology/Department of Animal Science, University of Connecticut, Storrs, CT 06269. USA. xiangzhong.yang@uconn.edu Luego de analizar más de 100 parámetros que conciernen a la calidad de la carne de clones de razas productoras de carne y los perfiles proteicos, los niveles de anticuerpos, la composición y la producción de leche de animales lecheros, se concluye que los parámetros de composición de carne y leche de clones no fueron significativamente diferentes comparados con sus contrapartes convencionales y con las razas comerciales. 15 �Todos los parámetros examinados están dentro del rango normal para la carne vacuna y los productos lácteos aprobados para consumo humano. Japanese Experience on Animals Cloned by Somatic Cell Nuclear Transfer. Mission of Japan to eh EU. 18/02/2008. Ministry of Agriculture, Forestry and Fisheries. Working Group of the Novel Foods Expert Committee (NFEC-WG) of the Food Safety Commission, January 2008. A través de TNCS clonaron 557 animales de ganado vacuno y 335 cerdos. La tasa de mortalidad en el período perinatal es mayor que la obtenida por ARTs convencionales. Esto podría deberse a un imperfección en la reconstrucción de la totipotencialidad de los embriones derivados de células somáticas. En los adultos, no hay diferencia en la tasa de mortalidad. No encontraron diferencias en cuanto a la inocuidad de la carne y la leche, al compararlos con animales obtenidos por ARTs convencional. Agency Perspectives on Food Safety for the Products of Animal Biotechnology (2012). HJ Howard, KM Jones and L Rudenko. Reprod Dom Anim 47 (Suppl. 4), 127–133. US Food and Drug Administration, Center for Veterinary Medicine, Animal Biotechnology Interdisciplinary Group, Rockville, MD, USA La FDA llegó a la conclusión de que la clonación animal no presentaba riesgos únicos ya sea para la sanidad animal o el consumo de alimentos, y la comida de los animales clones y su descendencia reproducida sexualmente no requiere la regulación federal adicional más allá de lo convencionalmente aplicables a animales de raza selecta de las especies examinadas. 16 �Conclusión La evidencia científica existente hasta la actualidad indica, por un lado, que no hay diferencias desde el punto de vista alimentario entre los productos provenientes de un animal clonado en comparación con los obtenidos de manera convencional, y por otro lado, que la información científica no indica que existan mayores riesgos y diferencias en la composición de los alimentos como consecuencia del uso de las técnicas de clonación, por lo que se concluye que no es necesario disponer de mayores medidas de control que las que se utilizan para los alimentos convencionales. Consecuentemente, sobre la base de los antecedentes documentales disponibles y en función del conocimiento científico internacionalmente aceptado, se puede concluir que los alimentos derivados de animales clonados son tan seguros y nutritivos como los obtenidos por otras técnicas de reproducción sexual, y por lo tanto, no se encuentran motivos razonables para regular su comercio. 17 �Glosario Animal donante: animal del que se obtienen las células para ser utilizadas en el procedimiento de clonación. ART´s (assisted reproductive technologies): Comprende todas aquellas técnicas de reproducción asistida que involucran la utilización de gametas. Célula donante: Constituye una célula somática la cual aportará el núcleo y parte del contenido citoplasmático utilizados para el procedimiento de clonación. Célula receptora: Se define de esta forma al ovoplasto (ovocito enucleado) que recibirá el núcleo y parte del contenido citoplasmático durante el procedimiento de clonación. Células somáticas: Todas las células de un organismo, excepto las sexuales (espermatozoides y óvulos). Célula totipotente: Constituye una célula capaz de generar un individuo completo. Clon / Animal clonado: Animal obtenido mediante la técnica de clonación (TNCS) y que constituye una copia prácticamente idéntica al animal donante (el ovocito aporta un mínimo de ADN mitocondrial). Embrión: Primera etapa en el desarrollo de los organismos pluricelulares. Sigue inmediatamente a la fusión de los pronúcleos en el óvulo fecundado. Embrión clonado: embrión resultante de la Transferencia Nuclear de Células Somáticas. Epigenética: describe cualquiera de los mecanismos que regulan la expresión y la interacción de los genes, en particular durante el proceso de desarrollo. Estos incluyen los cambios que influyen en el fenotipo, pero han surgido como resultado de mecanismos tales como los patrones heredados de la metilación del ADN y/o acetilación. Ejemplo: Imprinting o silenciamiento. Heteroplasmia: Mezcla de más de un tipo de genoma de organela dentro de una célula o individuo, en el presente documento nos referimos específicamente a las mitocondrias. Madre Sustituta: Hembra receptora que anidará en su útero al embrión obtenido mediante la técnica de clonación. Ovocito enucleado: Ovocito al cual se le ha extraído el núcleo y parte de su contenido citoplasmático. Progenie de clones: Las generaciones F1 y posteriores de animales nacidos mediante reproducción sexual, donde al menos uno de los antepasados es un clon. Regulación Epigenética: Se refiere a los cambios reversibles de ADN que hace que los genes se expresen o no dependiendo de las condiciones externas. Estos fenómenos, como la 18 �metilación y la modificación (acetilación) de histonas, no afectan la secuencia de los genes pero varían su expresión. Reproducción convencional: Reproducción sexual. Reproducción sexual: la producción de crías por la fusión de los gametos masculinos y femeninos (en contraste con la "reproducción asexual"). Se consideran dentro de esta definición las técnicas conocidas como ART´s. Síndrome de la cría macrosómica, LOS (Large Offspring Sindrome): Síndrome morfológico debido a alteraciones en la expresión genética. Un feto LOS es inusualmente grande para su especie (EFSA considera para su definición que el tamaño debe ser mayor a 2 SD sobre la media de la raza), tiene períodos de gestación más extensos a los habituales, y frecuentemente presentan asociadas otro tipo de anormalidades. TNCS: Transferencia nuclear de células somáticas o SCNT (Somatic Cell Nuclear Transfer). 19 �Referencias bibliograficas: -Animal Health and Welfare and Environmental Impact of Animals derived from SCNT Cloning and their Offspring, and Food Safety of Products Obtained from those Animals. EFSA Journal 2012;10(7):2794. -Agency Perspectives on Food Safety for the Products of Animal Biotechnology. HJ Howard, KM Jones and L Rudenko. US Food and Drug Administration, Center for Veterinary Medicine, Animal Biotechnology Interdisciplinary Group, Rockville, MD, USA. Reprod Dom Anim 47 (Suppl. 4), 127–133 (2012). -Update on the first cloned goats (2012). S Blash et al. Nature Biotechnology 30, 229–230. -Conocimiento e Implicancias Comerciales de la Clonación Animal. Dirección Nacional de Sanidad Animal. Dirección de Normas Cuarentenarias. SENASA. Marzo 2011. -Further Advice on the Implications of Animal Cloning (2009). EFSA Scientific Committee. The EFSA Journal RN 319, 1-15. -Food Safety, Animal Health and Welfare and Environmental Impact of Animals1 derived from Cloning by Somatic Cell Nucleus Transfer (SCNT) and their Offspring and Products Obtained from those Animals (2008). EFSA Scientific Committee. The EFSA Journal 767, 1-49 -Animal Cloning: A Risk Assessment. 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Trabajo Final de la Carrera de Especialización en Inocuidad y Calidad Agroalimentaria. 21 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Documento de aproximación a la evaluación de la aptitud alimentaria de animales de interés pecuario obtenidos por medio de técnicas de clonación Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2012 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0049 Abstract A summary of the resource. Documento de aproximación a la evaluación de la aptitud alimentaria de animales de interés pecuario obtenidos por medio de técnicas de clonación. El presente documento tiene como objetivo desarrollar una aproximación primaria de evaluación de riesgos de animales de interés productivo obtenidos por clonación, con la finalidad de brindar una opinión oficial sobre la aptitud alimentaria de los mismos, sus alimentos derivados, y su progenie, destacando los aspectos relevantes en lo que se refiere a inocuidad del alimento y sus propiedades nutritivas. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Resumen Elaboración del documento Agradecimientos Introducción Objetivos Alcance Tecnologías TNCS Twinning Antecedentes en otros países Canadá Australia y Nueva Zelanda (FSANZ) Unión Europea Autoridad Europea de Inocuidad Alimentaria (EFSA) Reino Unido (EE.UU.) Administración de Alimentos y Drogas (FDA) Evidencia científica Performance of dairy cattle clones and evaluation of their milk composition Evaluation of meat products from cloned cattle: biological and biochemical properties Nutritional value of milk and meat products derived from cloning The health of somatic cell cloned cattle and their offspring Meat and milk compositions of bovine clones Japanese Experience on Animals Cloned by Somatic Cell Nuclear Transfer Agency Perspectives on Food Safety for the Products of Animal Biotechnology (2012) Conclusión Glosario Referencias bibliograficas https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/383770e98fbb9f021bc9f629e7407042.pdf 7242818ac92363164b36d17f97bcc59b PDF Text Text Dirección Nacional de Sanidad Animal Dirección de Luchas Sanitarias Enfermedad hemorrágica viral del conejo www.senasa.gov.ar Programa de aves y granja �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PARA LA MIXOMATOSIS Y PLAN DE CONTINGENCIA PARA LA ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO PROGRAMA DE AVES Y ANIMALES DE GRANJA Dirección de Luchas Sanitarias Dirección Nacional de Sanidad Animal Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria 2005 1 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 MANUAL DE PROCEDIMIENTOS Y PLAN DE C0NTINGENCIA PARA LA ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Introducción El presente Manual y Plan de Contingencia fue redactado por el Programa de Enfermedades de los Conejos de la Dirección de Luchas Sanitarias. Finalidad El presente manual está dirigido principalmente a los Veterinarios Locales de la Dirección Nacional de Sanidad Animal y a las autoridades provinciales, municipales y nacionales encargadas de la aplicación de las normas de policía sanitaria; por tanto, se centra en los principios de la enfermedad, su descripción, aplicaciones de las pruebas de laboratorio, evaluación de sus resultados y atención de sospechas y focos. Policía Sanitaria Esta enfermedad es exotica para el país, razón por la que se encuentra incorporada al grupo de enfermedades a que se refiere el Articulo 4° del Reglamento General de Policía Sanitaria, por Resolución Senasa N° 422 del 20 de agosto de 2003, por lo tanto son de aplicación para la misma las regulaciones previstas en la Ley N° 3959, su Decreto reglamentario y la resolución citada, entre las que se incluye la Denuncia Obligatoria, Interdicción preventiva ante la presencia de casos, vacunación, sacrificio, etc. Debido a la situación regional de la enfermedad, oportunamente se dictó la Resolución Senasa Nº 941 del 21 del diciembre de 2004, por lo que se establecen las acciones preventivas y emergenciales que pudiesen corresponder. La EHVC se encuentra incorporada al Cógigo de los Animales Terrestres de la OIE Definiciones Foco de Enfermedad Hemorrágica Viral del Conejo. Se considera a la aparición de uno o más conejos con sintomatología clínica de EHVC, corroborado el diagnóstico en el Laboratorio Central del Senasa, en una explotación agrícola, explotación pecuaria o locales, incluidos los edificios y dependencias contiguos, donde se encuentren conejos. Sospecha de Enfermedad Hemorrágica Viral del Conejo. Se considera a la aparición de uno o más conejos con alguna sintomatología clínica o con lesiones anatomopatológicas compatibles con la EHVC, que luego no se confirmen por las pruebas de laboratorio específicas. Características de la Enfermedad Hemorrágica Viral del Conejo: La Enfermedad Hemorrágica Viral del Conejo (EHVC), también se denomina Hepatitis Viral, Hepatitis Viral Hemorrágica, Enfermedad X o Peste China. Es una 2 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 enfermedad aguda, altamente contagiosa, de elevada mortalidad, que afecta a conejos domésticos y algunos silvestres. Se caracteriza por muerte súbita y problemas respiratorios severos en animales mayores de dos meses de edad. Debido al curso agudo del padecimiento y a la naturaleza viral del agente etiológico, no existe ningún tratamiento específico para la EHVC. No existe en la literatura ninguna indicación de que la EHVC pueda ocasionar infección de ningún tipo al humano. En razón de su característica de enfermedad exótica, se debe mantener una permanente actitud de alerta para prevenir el ingreso de la EHVC. El conocimiento oportuno de la distribución de la enfermedad y la prohibición que rige a las importaciones de animales vivos y cualquier otro producto de éstos, cuando proceda de áreas o países afectados por la EHVC, constituyen las medidas más efectivas para prevenir el ingreso de la enfermedad a las áreas o países libres. La EHVC presenta un período de incubación sorprendentemente corto, de 16 a 48 horas, morbilidad del 80% al 100% y mortalidad superior al 90%. Los porcentajes de morbilidad y mortalidad pueden variar según el tipo de explotación, siendo generalmente menores en granjas tecnificadas que en aquellas de tipo rústico donde las condiciones sanitarias son precarias, lo que favorece la presentación de infecciones mixtas por gérmenes, especialmente Pasteurella. Existe una marcada relación entre la edad de los conejos y la susceptibilidad al virus de la EHVC. Así, los gazapos menores de dos meses son totalmente refractarios, pero a partir de esta edad, se incrementa notablemente la susceptibilidad conforme se convierten en animales adultos, especialmente cuando se trata de hembras gestantes o en lactación. No ha sido señalada ninguna predisposición de sexo o raza. En los paises que padecieron la enfermedad, se ha estimado que más del 80% de granjas quedaron diezmadas en unos meses. Después de uno o dos años, estas formas epizoóticas son más raras y más limitadas en el espacio, pero la enfermedad queda en estado endémico en el país. Sin embargo, cuando la EHVC llega a un país INDEMNE, su evolución y su gravedad siguen siendo dramáticas, como ocurrió en Cuba en 1993. Se sospecha que los forrajes recogidos por los cunicultores son frecuentemente el vector principal del virus. Se ha demostrado que los perros que consumen carne de conejo contaminado pueden diseminar el virus a través de sus heces y contaminar otros conejos por simple contacto. En condiciones naturales, la transmisión por contacto directo es la más importante entre animales de una misma explotación. También la transmisión puede darse por agua de bebida y equipos contaminados con heces, orina y saliva de animales enfermos. Además, es de destacar el importante papel que tiene el hombre como vector mecánico del virus de la EHVC. Las vías principales de transmisión son: ⇒ ⇒ Oral Conjuntival 3 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 ⇒ ⇒ Respiratoria Fecal/oral Los conejos que se recuperan de la enfermedad son una fuente importante de nuevos brotes de EHVC. El virus se excreta en heces de los animales recuperados durante varias semanas, transformándose en portadores asintomáticos. Existen reportes sobre el carácter estacional de la enfermedad, la cual se presenta con mayor frecuencia en primavera y otoño, esto se ha asociado a condiciones ambientales de temperatura que favorecen la permanencia, en forma activa, del virus en la naturaleza. Sin embargo, en algunos países como Italia, la EHVC es considerada como una enfermedad de tipo endémico no estacional. Distribución geográfica Esta enfermedad apareció en su forma epizoótica en 1984 en China. Se extendió luego muy rápidamente en el resto del mundo, afectando a los conejos Europeos, domésticos y silvestres, del género Orictulagus Cuniculli. En 1988 la enfermedad había llegado a Europa y a parte del continente americano (México, Cuba). El primer brote de EHVC reportado en el Hemisferio Occidental, corresponde al ocurrido en México a mediados de diciembre de 1988, provocado por la importación ilegal de canales de conejo originarias de China y procedentes de los Estados Unidos de América. Posterior a ésto, la enfermedad se presentó en Cuba, en mayo de 1993 y en los Estados Unidos de América en abril de 2000, países que han sufrido reapariciones de la enfermedad en varias ocasiones. La enfermedad fue detectada en el Uruguay en el año 2004, lo que representó un grave riesgo para nuestro país. Etiología La mayoría de los autores se han puesto de acuerdo para clasificarlo en la familia de los Calicivirus, se trata de un virus sin envoltura de 20-30 nm de diámetro, altamente estable, su genoma es de ARN monocatenario de polaridad positiva, contenido en una cápside con forma de icosaedro. También es muy resistente a los procesos de congelación y descongelación y al liofilizado, además mantiene su infecciosidad en canales con avanzado estado de putrefacción. Es resistente al éter, a un rango de Ph comprendido entre valores de 3 y 8 ó al calentamiento por una hora a 50° C. El virus se inactiva con hidróxido sódico al 1% y formaldehído al 1%. Además, el virus puede sobrevivir hasta 225 días a 4° C, y se ha observado su superviviencia durante 105 días a 20° C en tela seca. Parece ser muy especie específico, no habiéndose podido reproducir en otras especies. El gato se ve afectado también por un Calicivirus y no se han podido reproducir las respectivas enfermedades de forma cruzada. El virus de la EHVC posee un extrordinario poder aglutinante sobre eritrocitos de múltiples especies y muy especialmente los de humano de tipo O. 4 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 La enorme concentración de partículas virales observadas al microscopio electrónico y los elevados títulos hemoaglutinantes, especialmente en hígado, hacen difícil entender la dificultad de cultivar el virus fuera de su hospedero natural, lo cual no ha sido posible hasta el momento. Signología Se han descrito tres formas clínicas del padecimiento: SOBREAGUDA.- Común cuando la enfermedad ingresa por primera vez a a) una explotación, en la que produce muertes sin signología dentro de las primeras doce horas, pudiéndose observar hipertermia (41º C) entre las seis y ocho horas, ocasionalmente relajamiento de esfínteres, salida de heces con mucosidad blanquecina, que queda pegada alrededor del ano, así como aborto en algunas hembras gestantes. b) AGUDA- Los animales aparecen apáticos, presentan hipertermia (41° C), pelo hirsuto y sin brillo, polidipsia, disnea y muerte entre las doce y treinta y seis horas, los signos más frecuentes son: postración, anorexia, disnea, ortopnea, respiración abdominal, congestión de los párpados. Durante la fase agónica, los animales yacen en decúbito lateral, presentando opistótonos. A la muerte se observa cianosis en labios y ollares, así como salida de un líquido espumoso sanguinolento de los ollares de algunos animales, pueden observarse abortos y la presencia de heces con mucosidad blanquecina, pegada alrededor del ano y poco antes de la muerte, excitación, chillidos y convulsiones, pudiendo observarse en algunos casos, hemorragia nasal severa, congestión en conjuntiva, belfos y orejas. c) SUBAGUDA.- Común en casos experimentales o en explotaciones en las que se encuentran animales parcialmente inmunes. En el primer caso los signos son comparables a los de la forma aguda, aunque por lo general más benignos, presentándose, entre las treinta y cuarenta y ocho horas postinoculación. En ocasiones los animales únicamente muestran postración y anorexia, seguida de muerte en dos o tres días, aún cuando algunos animales pueden sobrevivir eliminarán virus durante varias semanas. Patogénesis Los estudios microscópicos, ultramicroscópicos y de inmunofluorescencia permiten suponer que el virus se replica inicialmente en tejido linfoide y posteriormente se difunde a otros órganos, especialmente el hígado, causando severa necrosis que trae como consecuencia alteración de los mecanismos de coagulación, trombosis y alteraciones vasculares en el resto del organismo. Patología Hallazgos a la necropsia 5 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 Debido al curso rápido del cuadro clínico, las condiciones del cadáver son usualmente buenas, aún cuando el pelo puede encontrarse hirsuto y sin brillo, pudiéndose observar en algunos casos, diversos grados de epistaxis o bien la presencia de un líquido espumoso sanguinolento en los ollares. Al exponer las cavidades del animal, por lo general las principales lesiones observables se limitan a una congestión del tracto respiratorio y el hígado, pudiéndose encontrar escasas cantidades de líquido hemorrágico en las cavidades pleural y peritoneal. El tracto respiratorio aparece como el más afectado, mostrando intensa congestión en pulmones y tráquea, pudiendo estar, esta última, llena de líquido espumoso a veces teñido con sangre. El timo aparece comúnmente hemorrágico, siendo comunes también la congestión y la hemorragia en el hígado, los riñones y el bazo. El hígado muestra en la mayoría de los casos áreas bien definidas de necrosis, que aparecen como zonas decoloradas de tono café amarillento, pudiendo observarse hepatomegalia y una consistencia friable del bazo. La vesícula biliar normalmente esta distendida y pletórica. Es común observar una marcada distensión por gases en las partes bajas del tracto digestivo, así como un estómago y primera porción del intestino pletórico de alimento. Otras lesiones observables incluyen hiperplasia del timo, adenomegalia y esplenomegalia. La congestión meníngea ha sido reportada por algunos autores. Histopatología Los cambios más significativos se producen a nivel hepático, consistentes en necrosis coagulativa de tipo multifocal o difusa con disociación de los hepatocitos y acumulación de pigmentos hemáticos. En el pulmón se observan hemorragias localizadas o extensas en los alvéolos, pudiendo existir zonas neumónicas y de necrosis, así como hiperplasia del tejido linfoide peribronquial. Las lesiones en el bazo pueden variar desde una simple congestión hasta hemorragia y necrosis, tanto de la pulpa blanca como roja, así como depleción, cariorrexis y cariolisis linfocitaria que también es observable en timo y ganglios linfáticos. La presencia de microtrombos de fibrina en prácticamente todos los órganos, es una observación frecuente. A nivel nervioso se aprecia encefalitis no supurativa con infiltración perivascular de tipo mononuclear, desmielinización y proliferación de la glia. Algunos autores mencionan la presencia de áreas de necrosis multifocal en el miocardio y hemorragias en las glándulas adrenales. DIAGNÓSTICO De campo La presentación de una enfermedad de curso agudo y elevada mortalidad para conejos adultos, que no afecta gazapos menores de dos meses de edad, altamente difusible y con pocos signos clínicos observables, debe ser asociada de inmediato con la EHVC. Diagnóstico diferencial 6 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 Tal y como fue señalado con anterioridad, una de las causas principales que deben ser descartadas en casos asociados a elevada mortalidad de conejos, cuando se sospecha la presencia de la EHVC, son las intoxicaciones, especialmente por organofosforados. Sin embargo, es probable que un cuidadoso análisis epidemiológico descarte en poco tiempo esta posibilidad, sobre todo cuando la comúnmente amplia y rápida difusión de la enfermedad, afecte a un buen número de granjas en una amplia zona, sin que se pueda establecer una relación directa entre las fuentes de alimentación o agua de bebida utilizados entre ellos, asociación epidemiológica común en ese tipo de intoxicaciones. Otro aspecto importante lo representan las infecciones bacterianas, especialmente las producidas por Pasteurella multocida y P. haemolytica, que comúnmente actúan como agentes asociados a la EHVC. Sin embargo, la leucopenia observable entre las cuarenta y dos y setenta y dos horas postinfección con el virus de la EHVC, así como las pruebas de hemoaglutinación (HA) y de inhibición de la hemoaglutinación (HI), y Test de ELISA permitirán confirmar o descartar la presencia de la enfermedad. En países en los cuales la mixomatosis es enzoótica, se requerirá descartar esta enfermedad viral como la causa de un brote. En la mixomatosis, en contraste con la EHVC, el cuadro clínico es más prolongado y la mortalidad progresiva y lenta en su avance, no resultando de tipo explosivo, como en el caso de la EHVC. Otras enfermedades que deben ser tomadas en cuenta dentro del diagnóstico diferencial incluyen salmonelosis, coccidiosis y las enterotoxemias producidas por Clostridium spp. De laboratorio Prueba de hemoaglutinación (HA) Esta prueba es utilizada para el diagnóstico de la enfermedad, debido a la alta capacidad hemoaglutinante de algunas cepas del virus de la EHVC y su poca exigencia en cuanto a ph y tipo de glóbulos rojos. Las muestras de elección en orden decreciente son: hígado, pulmón, bazo, riñón, corazón, músculo y cerebro. Prueba de inhibición de la hemoaglutinación (HI) Los sueros de los animales sobrevivientes o inmunizados con vacunas inactivadas presentan títulos de anticuerpos detectables por esta prueba a partir de los ocho días postinfección o postinoculación. Se han reportado títulos positivos desde 1:32 hasta l:8000. Los títulos de anticuerpos se mantienen cuando menos por cinco meses, considerándose como títulos positivos los observados a partir de la dilución 1:32. Prueba de inmunofluorescencia directa 7 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 Se realiza en cortes por congelación o improntas de hígado, bazo o riñón, teñidos con un conjugado elaborado a base de isotiocianato de fluoresceína. Los órganos deben ser recolectados en bolsas de plástico estériles y enviados en congelación, para su trabajo en el laboratorio. Método de ELISA Lavazza et al desarrollaron una prueba de ELISA en “sándwich simple”, utilizando como captador suero hiperinmune de conejo, anti-virus de la EHVC y una mezcla de anticuerpos monoclonales como marcadores. Estos autores reportan mayor sensibilidad en esta prueba que en la de hemoaglutinación. Hematología Puede resultar de utilidad en el establecimiento del diagnóstico presuntivo. Se basa en la detección de la leucopenia, que puede ser observada a partir de las 42 horas postinfección. Esta disminución en el número total de leucocitos circulantes, puede ir a valores de un 34% hasta un 37% menores que los normales. La leucopenia, sin embargo, es de corta duración, pues comúnmente entre las setenta y dos y noventa horas postinoculación se observa leucocitosis con heterofilia, asociada con la presentación de infecciones bacterianas secundarias, especialmente por Pasteurella spp. PROCEDIMIENTOS ANTE LA SOSPECHA O CASOS DE ENFERMEDAD De acuerdo a las normas vigentes ante la presencia confirmada de la EHVC corresponde proceder a la erradicación por sacrificio de los animales afectados y sus contactos. Denuncia de sospecha o casos de enfermedad La denuncia de casos de conejos domésticos (mascotas) o de producción con sintomotología atribuible a EHVC, en todos los casos se efecturá en la Oficinas Locales de SENASA o en la Dirección Nacional de Sanidad Animal y es obligatoria para: a) Los responsables o propietarios de los conejos afectados. b) Las personas responsables o encargadas de cualquier producción cunícola, industrial o tenedor de mascota. c) Los Veterinarios privados. d) Cualquier autoridad nacional, provincial o municipal. e) Cualquier persona que tome conocimiento de la existencia de conejos enfermos o presumiblemente afectados. 8 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 Acciones y medidas a tomar ante la sospecha A partir de la notificación de la sospecha, el Veterinario Local de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, colocará la explotación bajo vigilancia oficial e implementará las acciones sanitarias que se encuentran descripta en el Manual de Procedimientos de Atención de casos o focos de enfermedad y para el caso particular de la EHVC: 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. Se debe concurrir primero al predio que notificó la sospecha. Si en el trayecto se atraviesa por establecimientos vecinos, se deberá informar a los mismos sobre la situación sanitaria existente y además obtener información complementaria. Advertir a las personas contactadas sobre la posibilidad de que conejos aparentemente sanos pueden estar incubando la enfermedad y que la aparición de casos clínicos debe ser notificada de inmediato. Contactar y hacer una primera entrevista a la persona o personas responsables por el cuidado de los conejos sospechosos; de ser posible no ingresar con el vehículo. Cambiarse la ropa, utilizando de preferencia equipos descartables para la entrada a los lugares con conejos presumiblemente enfermos. Comenzar la inspección de terreno con la observación de aquellos conejos situados en locales o potreros donde no se han visto casos sospechosos por el propietario o encargado y realizar exámenes clínicos ante cualquier duda. En la salida del lugar o lugares infectados, limpiar y desinfectar el equipo y materiales utilizados en los exámenes clínicos y en las recolecciones de muestras, haciendo lo mismo con el medio de transporte y las manos. Recuento de todas las categorías de conejos y que para cada una de ellas se precise el número de animales ya muertos, infectados o que puedan estar infectados o contaminados; el recuento deberá actualizarse para tener en cuenta los animales nacidos o muertos durante el período de sospecha; los datos del mismo deberán presentarse si fueren requeridos y podrán controlarse en cada visita Inmovilización de todos los conejos de la explotación en sus lugares de alojamiento o en otros lugares que permitan su aislamiento, Prohibición de toda entrada o salida de la explotación de animales de las especies sensibles, o que hubieran estado en contacto con los animales sospechosos. Prohibición de toda entrada o salida de la explotación de conejos, salvo autorización del Veterinario Local de la Dirección Nacional de Sanidad Animal. Prohibición de toda salida de la explotación de cadáveres de conejos, así como de alimentos, utensilios u otras materias, capaces de transmitir la enfermedad, salvo autorización del Veterinario Local de la Dirección Nacional de Sanidad Animal Restricción del movimiento de personas a partir de o con destino a la explotación quede supeditado a la autorización del Veterinario Local de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, Restricción de la entrada o salida de vehículos en la explotación, quedando supeditadas a la autorización del Veterinario Local de la Dirección Nacional de 9 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 Sanidad Animal que determinará las condiciones apropiadas para evitar la propagación de la enfermedad. 13. Desinfección en las entradas y en las salidas de los edificios que alberguen conejos, así como en las de la explotación, 14. Realización de una encuesta epizootiológica que versará sobre: 14.1 la duración del período durante el que la enfermedad pueda haber existido en la explotación antes de su notificación o sospecha, 14.2. el origen posible de la enfermedad en la explotación y la determinación del resto de explotaciones en las que se encuentren conejos que hayan podido ser infectados o contaminados a partir de ese mismo origen, 14.3. los movimientos de las personas, vehículos y materiales que hubieren podido transportar el agente de la enfermedad a partir de o en dirección a las explotaciones de que se trate. 15 Tomar y enviar las muestras para el diagnóstico de laboratorio. Se vigilarán oficialmente las explotaciones a partir de las cuales el Veterinario Local comprobare o estimare, según informaciones confirmadas, que se hubiere podido introducir la enfermedad en la explotación a consecuencia de movimientos de personas, animales o vehículos o por cualquier otro medio. Procedimientos ante la confirmación del foco A partir del momento en que se confirme oficialmente el diagnóstico de enfermedad, se delimitará alrededor de la explotación infectada, por una parte, una zona de foco de 5 kms. de diámetro y una zona de vigilancia de 10 kms. de diámetro. La delimitación de las zonas deberá tener en cuenta las barreras naturales y las posibilidades de control En la zona de foco se aplicarán las siguientes medidas: 1. los conejos no podrán salir de la explotación en la que se encuentren durante el periodo que determine el Veterinario Local de la Dirección Nacional de Sanidad Animal salvo para ser llevados directamente, bajo control oficial, a fin de ser sacrificados urgentemente, a un matadero situado en dicha zona o, si dicha zona no tuviere matadero bajo control veterinario, a un matadero designado por la Dirección Nacional de Sanidad Animal, 2. el Veterinario Local de la Dirección Nacional de Sanidad Animal sólo autorizará dicho desplazamiento tras un examen efectuado por el veterinario oficial de todos los conejos de la explotación que permita excluir la presencia de animales sospechosos de estar infectados, 3. se prohibirán las ferias, mercados, exposiciones u otras reuniones de animales sensibles, incluidas la recogida y la distribución 4. No habiéndose registrados otras novedades, las medidas en la zona de foco se mantendran durante al menos treinta días después de la eliminación de todos los conejos de la explotación y la desinfección de los establecimientos, a partir de ese momento, la zona de foco pasará a formar parte de la zona de vigilancia. 10 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 En la zona de vigilancia se aplicarán las siguientes medidas: 1. se contabilizarán todas las explotaciones que tengan conejos. 2. se prohibirá la circulación de los conejos en los caminos públicos, salvo casos de excepción previamente autorizados. 3. se supeditará a la autorización de la autoridad competente el transporte de los conejos dentro de la zona de vigilancia, 4. los conejos no podrán salir de la zona de vigilancia durante el periodo que determine el Veterinario Local la Dirección Nacional de Sanidad Animal., 5. los conejos no podrán salir de dicha zona salvo para ser llevados directamente, bajo control oficial, a un matadero a fin de ser sacrificados urgentemente. La autoridad competente sólo podrá autorizar dicho desplazamiento tras un examen efectuado por el veterinario oficial de todos los animales implicados que permita excluir la presencia de animales sospechosos de estar infectados 6. se prohibirán las ferias, mercados, exposiciones y demás reuniones de animales sensibles. Las medidas en la zona de vigilancia, de no mediar novedades, se mantendrán al menos durante treinta días. Además de lo prescrito anteriormente se garantizará que: 1. Que los desinfectantes que se utilicen así como sus concentraciones sean oficialmente aprobados 2. Que las operaciones de limpieza y desinfección se efectúen bajo control oficial 3. Que los exámenes de laboratorio efectuados los realice un laboratorio oficial del Senasa o de un laboratorio de red.l SACRIFICIO SANITARIO, LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN La detección de casos de enfermedad animal por parte de la Dirección Nacional de Sanidad Animal del Senasa, la habilita a proceder sobre el objeto, ya sea disponiendo su intervención, secuestro o decomiso y posterior sacrificio de los animales involucrados cualquiera fuera la especie animal, debiendo determinar, en este último caso, el método y el destino más conveniente teniendo en cuenta la índole de la enfermedad y el estado del animal en cuestión. Los siguientes principios se aplican una vez se ha tomado la decisión de sacrificar a los animales. ⇒ Todo personal que participe en el sacrificio de los animales en condiciones decentes deberá poseer las técnicas y competencias pertinentes. ⇒ En caso necesario, los procedimientos operativos deberán adaptarse a las circunstancias específicas de funcionamiento en los establecimientos y deberán abordar, aparte del bienestar animal, la seguridad de los operarios y la bioseguridad. 11 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 ⇒ Una vez tomada la decisión de matar a los animales, la matanza se llevará a cabo tan pronto como sea posible, ⇒ Se reducirá la manipulación y desplazamiento de los animales, y cuando se lleven a cabo, se realizarán de conformidad con los procedimientos descritos. ⇒ La sujeción de los animales se realizará para facilitar la matanza eficaz y de conformidad con las exigencias de bienestar animal y de seguridad de los operarios. ⇒ Cuando la matanza de los animales sea para fines de control sanitario, los métodos utilizados deberán producir la muerte inmediata o la pérdida inmediata de conocimiento que dure hasta la muerte; cuando la pérdida de conocimiento no sea inmediata, la inducción del estado de inconsciencia no causará reacción de aversión ni ocasionará ansiedad, dolor, angustia o sufrimiento a los animales. ⇒ Desde el punto de vista del bienestar animal, se sacrificarán primero los animales jóvenes y después los mayores; desde el punto de vista de la bioseguridad, se sacrificarán primero los animales infectados, seguidos por los animales en contacto y después el resto. ⇒ Habrá un control y seguimiento permanente de los procedimientos para asegurarse de su eficacia con respecto al bienestar animal, la seguridad de los operarios y la bioseguridad. ⇒ En la medida posible para minimizar el riesgo de angustia pública, el sacrificio de los animales y la eliminación de las canales no se realizarán a la vista del público. Centinelización y repoblación: Después de un período de ocho semanas, durante las cuales se mantendran vacías las instalaciones, despobladas y bajo supervisión oficial, se introducirán conejos susceptibles por un lapso de tres semanas. Los conejos centinelas en proporción de 1:10 en relación con la población original, se dejan deambular libremente por todas las instalaciones, de manera que se pudieran poner en contacto con todos los lugares, jaulas y equipo que estuvieron en contacto con los conejos durante el brote. A lo largo de estas tres semanas, si algún conejo se muere, se enviará de inmediato al laboratorio oficial de Senasa para descartar la presencia de la EHVC y al término del periodo de centinelización, se enviaran muestras de sangre para realizar el análisis serológico de los animales centinelas. En caso de que todos los resultados fueran negativos, se procederá a completar la repoblación, restituyendo el número total de animales al momento del sacrificio. Eliminación en planta de faena Para su elección se debe contar con un establecimiento faenador, habilitado para la especie, con una capacidad operativa, tanto de faena como de digestor, acorde al número de animales que componen la población motivo de la actuación. La planta faenadora habilitada de acuerdo a lo previsto en la Ley N° 22375, será designada por la Dirección Nacional de Fiscalización Agroalimentaria del Senasa, 12 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 no pudiendo negarse la misma a realizar esta faena en salvaguarda de la salud pública y animal. Para el sacrificio de emergencia, se utilizará cualquiera de los métodos descriptos en el Decreto Nº 1733 del 14 de octubre de 1970 en cada uno de los puntos que correspondan a la especie de que se trate. Podrán utilizarse otros métodos, siempre que cumplan el requisito de producir insensibilización inmediata, previo a la muerte. El destino final de la carne o productos de los animales decomisados y destinados a sacrificio sanitario, será establecido en conjunto por la Dirección Nacional de Sanidad Animal y la Dirección Nacional de Fiscalización Agroalimentaria del Senasa, de acuerdo a lo previsto en el Decreto N° 4.238 del 19 de julio de 1968 y conforme el riesgo para la salud pública y la sanidad animal que resulte emergente de la enfermedad o trasgresión constatada. PROCEDIMIENTOS A SEGUIR EN PLANTAS FRIGORÍFICAS DE CONEJOS ANTE LA SOSPECHA O CONFIRMACIÓN DE EHVC En el caso que el Inspector Veterinario asignado a la planta de faena reciba una comunicación del Veterinario Oficial del servicio de campo en la que indica que una determinado lote de conejos que ha sido enviado a faena a esa planta, proviene de una zona donde se ha detectado un foco o de una zona que se encuentre bajo vigilancia por sospecha o confirmación de la ocurrencia de EHVC, se deberá proceder como a continuación se detalla: 1) Identificación del o los lotes indicados 2) Autorizar la faena de ese o esos lotes al final de la faena del día. 3) Garantizar que se realice una intensa limpieza y desinfección de la línea de faena al concluir la misma. 4) Garantizar que se realice la limpieza y desinfección en forma intensiva de los camiones que fueron utilizados para el transporte de esos lotes, antes de que los mismos se retiren de la planta. 5) Identificar la partida faenada a fin de que la misma se destine a subproductos coccidos u otros cuyo proceso de elaboración incluya la aplicación de temperatura suficiente de manera que garantice la destrucción del agente causal de enfermedad. En el caso que el inspector Veterinario no hubiera recibido comunicación, pero observase en la inspección pre-mortem que los conejos presenten síntomas compatibles con EHVC se deberá proceder como a continuación se detalla: 1) Extraer muestras de los conejos del lote sospechoso y enviar las mismas al laboratorio del Senasa de la Dirección de Laboratorios y Control Técnico con carácter de urgente y a fin de que se confirme o nó la sospecha. 2) Avisar al Veterinario de la Oficina Local del Senasa que corresponde a la zona de donde provienen los conejos. 3) En cuanto a la faena del lote proceder como se indica en los puntos de 1) a 4). 13 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 4) Identificar los conejos una vez faenados y apartarlos de otros conejos en cámara, a la espera de los resultados del laboratorio. 5) De confirmarse el diagnóstico por pruebas de laboratorio de EHVC, deberá cumplirse con lo indicado en el punto 5) del párrafo anterior 6) Si el resultado del laboratorio no confirmase el diagnóstico de EHVC, y de evaluarse que la carne cumple con las condiciones de higiene y sanidad, la mercadería podrá ser liberada para su comercialización. Eliminación en el campo. 1) El sacrificio de los conejos se realizará dentro de la misma explotación infectada o lo más cerca posible, preferentemente en horas de luz matural adecuada. 2) Se deberá evitar que se escapen animales. 3) Primero se sacrificarán todas aquellos conejos que presentaban signos clínicos y luego los que no presentaron signos clínicos pero que estuvieron en contacto riesgoso con los otros 4) La técnica de eutanasia será acordada con el personal técnico del establecimiento, de acuerdo a las posibilidades prácticas que se presenten. 5) Los restos serán cubiertos por desinfectantes adecuados, protegidos de animales predadores, para luego poder ser destruidos. Toda la ropa y calzado de los operarios deberá ser dejada en el lugar del foco hasta su limpieza y desinfección. En caso de oposición o resistencia al eficaz cumplimiento de la presente, el personal interviniente podrá solicitar el auxilio de la fuerza pública y requerir ante las autoridades judiciales, las órdenes de allanamiento para entrar en los establecimientos o locales en los que sea necesario adoptar las medidas prescriptas precedentemente. Indemnización Las indemnizaciones que pudieran corresponder se regularán de acuerdo a lo previsto en los artículos 24°,25°, 26°,27° y 28° de la Ley N° 3959, y el articulo 14° de la Ley N° 24305 ELIMINACION DE LOS CADÁVERES, MATERIALES Y RESIDUOS. Para la eliminación de los cadáveres, vísceras, materia fecal, y alimentos, se podrá realizar entierro o incineración. Entierro: Los lugares para el entierro deberán contar con la aprobación de los reglamentos locales y oficiales encargados de la protección del medio ambiente. Las fosas de entierro deberán ser calculadas con una profundidad suficiente para permitir ser recubiertas con un metro de tierra. No se aplicará cal a los cadáveres salvo que el suelo sea muy húmedo. No se asentará la tierra al recubrir la fosa. 14 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 Incineración: Se recurrirá a la incineración cuando no se pueda realizar el entierro. Se deberá considerar la topografía del lugar, dirección de los vientos, presencia de instalaciones u objetos de fácil combustión, disponibilidad de combustible y materiales que ayuden a la combustión, aprobación de los organismos oficiales encargados de la protección del medio ambiente, disponibilidad de agua o material contra incendio. Procedimiento de Limpieza y Desinfección Para llevar a cabo esta tarea se debe consultar al Manual de Procedimientos de Desinfección y para esta enfermedad además: a) Limpieza previa a la aplicación del desinfectante. La mayoría de los desinfectantes no actúa bien en presencia de materia orgánica, y es ese el material encontrado comúnmente en el medio exterior. En consecuencia, para realizar una buena desinfección es muy importante que los microorganismos sean expuestos al producto librándolos de las barreras orgánicas que los protegen, para lo cual se torna necesaria la limpieza mecánica de las superficies en que puedan encontrarse. Para evitar la propagación de los agentes por el polvo es necesario hacer la limpieza mecánica de los residuos secos, estiércol, etc., después de ablandarlos con solución desinfectante. b) Una vez extraídos los cadáveres y restos de alimento o materia orgánica para su eliminación, se rociaran todas las superficies con las que hayan estado en contacto o cercanas a los mismos, con desinfectantes autorizados por el SENASA c) Los desinfectantes recomendados son: lechada de cal adicionada con 1% de formol en paredes, pisos, así como una solución de formol al 1% en jaulas, techos y equipos.o el carbonato de sodio al 2%.El virus se inactiva con hidróxido sódico al 1% y formaldehído al 1%. . d) Los desagües y conductos de evacuación se llenarán con desinfectantes concentrados TOMA DE MUESTRAS Y ENVIO AL LABORATORIO OFICIAL Normas Generales Para la adecuada recolección, conservación y envío de las muestras, es indispensable tener presentes las siguientes normas que se encuentran en al Manual de Procedimientos de Recolección y envío de muestras: 1) Toda muestra debe ser remitida con su protocolo completo y perfectamente identificada. La Dirección de Laboratorios y Control Técnico (DILACOT) no procesará muestras que no cumplan con esta condición. 15 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 2) Las muestras ideales se obtienen de animales vivos en distintos estadios de la enfermedad. Si es necesaria la necropsia, ésta debe guardar un orden y metodología adecuada; además, debe realizarse en el menor tiempo posible después de la muerte del animal (1 hora). 3) Para la recolección de cualquier otro tipo de muestra, utilizar material limpio y seco. 4) Los envases utilizados para el envío de muestras deben ser en lo posible irrompibles, herméticos y de dimensiones adecuadas. Las precauciones a considerar varían con la clase de muestra, temperatura ambiente, transporte y duración del viaje; en líneas generales, el tiempo entre la obtención de la muestra y su llegada al laboratorio no debe extenderse más de 24 horas. Tipo de Muestras Considerando el alto poder infectante del virus de la EHVC, deben adoptarse estrictas medidas de bioseguridad en la toma y envío de muestras al laboratorio para su diagnóstico, evitando con esto favorecer la diseminación del virus. En aquellos casos en que se realizará la necropsia, las muestras deberán ser colocadas en frascos estériles o bolsas de plástico, los cuales, una vez perfectamente cerrados, deben ser desinfectados con una solución de formol al 1%, antes de abandonar la granja. Similares precauciones deberán tenerse con las cajas refrigerantes en las que se transportan las muestras al laboratorio y con la vestimenta, botas y equipo, utilizados por el operador. También se deben enviar muestras de tejido fijado en formalina al diez por ciento (10%) para preparaciones histopatológicas de un espesor de pocos milímetros. Las muestras de elección para el diagnóstico de la EHVC son: hígado, bazo, pulmón y riñón, aunque también es conveniente enviar muestras de sangre coagulada o suero, teniendo cuidado de realizar todo el muestreo bajo condiciones adecuadas de asepsia. IDENTIFICACIÓN DE LAS MUESTRAS Todas las muestras deberán acompañarse por su correspondiente protocolo y serán entregadas en mano en el Laboratorio por una persona responsable con la mayor brevedad debiendo entregarse al técnico que lo abrirá en condiciones de bioseguridad. NO ENVIAR POR CORREO, COMISIONISTA U OTROS. Otros datos importantes a considerar son los relativos a contactos directos e indirectos, especialmente a través de humanos con otras granjas, sobre todo si existen datos sobre la presencia de la enfermedad en ellas, o antecedentes de padecimientos similares en granjas de la región. Además de los datos epidemiológicos, es conveniente anexar copia del protocolo de enfermedad, en los que se incluyan: ubicación, tipo de instalaciones, número de nacimientos, mortalidad en lactancia, mortalidad post- destete, condiciones ambientales, tipo de alimento, condiciones de manejo y tasa de reproducción. 16 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 PREVENCIÓN Medidas de bioseguridad A nivel de granja, la aplicación de medidas de bioseguridad, incluidas las de higiene y desinfección, han sido utilizados con éxito para evitar el ingreso de la EHVC. Estas, que son aplicables en cualquier tipo de enfermedad infectocontagiosa, incluyen: a) No permitir el ingreso de conejos a la granja y si esto es indispensable, tener el cuidado de que los animales procedan de zonas libres del padecimiento y que hayan sido probados como serológicamente negativos al virus de la EHVC. b) La granja cunícola debe contar con una zona cuarentenaria, aislada del resto de las instalaciones y atendida por personal que trabaje exclusivamente en ellas. Los animales de nuevo ingreso deberán permanecer en esa zona durante quince días, en estrecho contacto con dos o tres animales sanos de la misma granja. Si después de este tiempo ninguno de los animales centinelas enferma, se permitirá la incorporación de los nuevos animales a la explotación. c) Evitar la visita a otras granjas o instalaciones por parte del personal o empleados de la granja, especialmente si en las primeras se han presentado casos sospechosos de EHVC. Especial cuidado se debe tener para evitar el contacto a través de perros, gatos, pájaros, roedores o animales silvestres procedentes de otras granjas. De ser posible, se procurará que los trabajadores no tengan conejos en sus casas, lo que se puede fomentar proporcionándoles canales de conejo, producidas en la granja, a precio de costo. Todo el personal que ingrese a las instalaciones donde se encuentran los conejos debe despojarse de su ropa y calzado de calle, debiendo tomar un baño para posteriormente vestirse con ropa y botas de uso exclusivo para las instalaciones. d) No se deberá permitir el ingreso a la granja de personas extrañas, ni de vehículos, debiendo contarse con una zona de recepción de animales y equipo, con puerta al exterior del predio y con una zona de embarque de conejos o de entrega de canales y pieles, igualmente comunicada directamente con el exterior. Las precauciones anteriores evitan que proveedores o compradores, tengan que entrar a las instalaciones. Igual cuidado deberá tenerse con otro tipo de personas, como proveedores de alimento, combustibles entre otros o personal de mantenimiento. e) No utilizar alimento, jaulas o equipo que hayan estado en contacto con animales enfermos durante un brote. De ser posible, se deberá evitar la alimentación de los conejos con forraje, especialmente alfalfa, prefiriéndose el uso de alimento comercial, teniendo cuidado de recibir tanto el equipo como el alimento en un local fuera de las instalaciones, donde deberá ser desinfectado. Especial cuidado debe tenerse con la fuente de agua de bebida. f) Los animales enfermos deberán separarse de los sanos y, en caso de muertes repentinas y/o elevada mortalidad, reportar a los Servicios Veterinarios y enviar animales o muestras al laboratorio para diagnóstico definitivo para poder descartar la presencia de la EHVC. Especial cuidado deberá darse a la aplicación de medidas de bioseguridad en el envío de muestras o animales al 17 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL DEL CONEJO Y MIXOMATOSIS 2005 laboratorio, para evitar la diseminación del problema. Los animales muertos o sus desechos, deben ser destruidos por incineración o enterramiento. g) El uso de tapetes sanitarios, utilizando soluciones de formol al 1% o soluciones de yodo, son aconsejables para que sean colocados a la entrada de las instalaciones o entre los diferentes locales donde se tengan los conejos. Zona de vigilancia 10 km. Zona de foco 5 km. Acciones en la zona de foco y vigilancia: • • • • • • • • • • Interdicción del/las granjas Sacrificio en el foco de los conejosa afectados Limpieza y desinfección en el foco. Prohibición de ingreso de nuevos conejos en la zona de foco. Censo de todas los conejos y granjas en las zonas Inspección de todas las granjas de las zonas e implementación de medidas de bioseguridad Control del tránsito de vehículos y personas. Control del destino de los conejos. Aviso a las Plantas de Faena de la zona de foco y de vigilancia Las medidas establecidas, se mantendrán durante 30 días en caso de no registrarse nuevos focos. 18 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Enfermedad hemorrágica viral del conejo Description An account of the resource Manual de procedimientos para la mixomatosis y plan de contingencia para la enfermedad hemorrágica viral del conejo Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2005 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Sanidad Animal Dirección de Luchas Sanitarias Programa de Aves y Animales de Granja Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Manual Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0159 Abstract A summary of the resource. El presente manual está dirigido principalmente a los Veterinarios Locales de la Dirección Nacional de Sanidad Animal y a las autoridades provinciales, municipales y nacionales encargadas de la aplicación de las normas de policía sanitaria; por tanto, se centra en los principios de la enfermedad, su descripción, aplicaciones de las pruebas de laboratorio, evaluación de sus resultados y atención de sospechas y focos. Conejo https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/98be8874f0cc4537fabc1c8ea2ac7ab7.pdf 36938b47e0a7d024c2a92f38c01e7c01 PDF Text Text Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Enfermedades de las abejas M a n u a l de P r o c e d i m i e n t o s Dr. Marcelo de la Sota Dirección de Luchas Sanitarias Dr. Mariano Bacci Programa de Control de Enfermedades de las Abejas Dirección Nacional de Sanidad Animal Buenos Aires, 2005 Versión actualizada 2020 �SENASA Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Av. Paseo Colón 367 C1063ACD Ciudad de Buenos Aires - República Argentina. Tel. (054) (011) 4331-6041 y números rotativos. website: http://www.senasa.gov.ar email: apicultura@senasa.gov.ar Coordinación General: Dr. Marcelo Daniel de la Sota (Dirección Nacional de Sanidad Animal) email: mdelasot@senasa.gov.ar Responsables de los contenidos: Dr. Marcelo D. de la Sota (Dirección de Luchas Sanitarias) Dr. Mariano Bacci (Programa de Control de Enfermedades de las Abejas) email: mbacci@senasa.gov.ar Revisión de contenido: Dirección de Epidemiología y Coordinación General de Campo. Edición: Lic. Cristina del Llano (Coordinación de Gestión Técnica) Armado y diagramación: Area de Diseño Gráfico. Buenos Aires, junio de 2005. 2 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Autoridades Dr. Jorge Nástor Amaya Presidente Ing. Carlos Casamiquela Vicepresidente Dr. Jorge Horacio Dillon Director Nacional de Sanidad Animal Dr. Gastón Funes Director de Epidemiología Dr. Marcelo Daniel de la Sota Director de Luchas Sanitarias Dr. Josá Luis Antonelli Coordinador General de Campo Dr. Mariano Bacci Programa de Control de Enfermedades de las Abejas Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 3 �4 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Indice 1. LOQUE AMERICANA ................................................................................................... 11 1.1 Características......................................................................................................... 11 1.2 Presentación ............................................................................................................11 1.3 Patogenia ................................................................................................................11 1.4 Diagnóstico ..............................................................................................................12 1.5 Cuadro clínico ......................................................................................................... 12 1.6 Etiología ..................................................................................................................12 1.7 Proceso epizoótico ....................................................................................................13 1.8 Reservorios de gérmenes ......................................................................................... 13 1.9 Transmisión .............................................................................................................13 1.10 Población hospedadora ............................................................................................. 13 1.11 Prevención y lucha................................................................................................... 13 1.12 Tratamiento .............................................................................................................13 1.12.1 Recuperación del Material Vivo .......................................................................13 a. Trasiego Directo ................................................................................14 b. Trasiego Doble ..................................................................................14 1.12.2 Recuperación del Material Inerte.................................................................... 14 a. Calor - Fuego Directo ........................................................................ 14 b. Calor - Inmersión.............................................................................. 14 c. Calor y Presión ................................................................................. 14 d. Químicos .......................................................................................... 15 e. Irradiación ........................................................................................15 1.12.3 Eliminación del material inerte....................................................................... 15 1.12.4. Tratamiento medicamentoso ........................................................................ 15 1.13. Procedimientos ante la denuncia.................................................................................15 1.14. Procedimiento de atención de focos ........................................................................... 16 1.15. Toma y remisión de muestras ................................................................................... 16 2. LOQUE EUROPEA ....................................................................................................... 17 2.1 Características......................................................................................................... 17 2.2 Presentación ............................................................................................................17 2.3 Diagnóstico ..............................................................................................................17 2.4 Etiología ..................................................................................................................17 2.5 Reservorios de gérmenes ......................................................................................... 17 2.6 Población hospedadora ............................................................................................. 17 2.7 Prevención y lucha....................................................................................................18 2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos ...................................................... 18 3. VARRAOSIS ....................................................................................................... 18 3.1 Características......................................................................................................... 18 3.2 Presentación ............................................................................................................19 3.3 Daños Indirectos ......................................................................................................19 3.4 Etiología ..................................................................................................................19 3.5 Ciclo Biológico ..........................................................................................................20 3.6 Cuadro clínico ......................................................................................................... 20 3.7 Diagnóstico ..............................................................................................................20 Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 5 �3.7.1 Prueba del frasco ......................................................................................... 20 3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso .......................................................... 21 3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría ......................................................... 21 3.7.4 Método químico ........................................................................................... 21 3.8 Difusión .................................................................................................................. 22 3.9 Reservorios de parásitos ........................................................................................... 22 3.10 Transmisión ............................................................................................................ 22 3.11 Población hospedadora ............................................................................................. 22 3.12 Prevención y lucha ................................................................................................... 22 3.13 Tratamiento ............................................................................................................ 22 3.13.1 Control químico............................................................................................ 23 3.13.2 Formas de acción de los acaricidas ................................................................. 23 3.13.3 Formas de administración ............................................................................. 23 3.14 Control de la Varroasis ............................................................................................. 24 3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis ............................................................ 24 3.14.2 Plan estratégico ........................................................................................... 24 3.14.2.a Rotación de los Principios Activos ................................................... 25 3.14.2.b Evitar los Residuos ....................................................................... 25 3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación ................................................. 26 3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado ....................................................... 26 3.15 Plan de Curas .......................................................................................................... 26 3.16 Procedimientos ante la denuncia ................................................................................ 28 3.17 Procedimientos ante sospechas ................................................................................. 29 4. NOSEMOSIS ..................................................................................................... 29 4.1. Características ......................................................................................................... 29 4.2. Daños directos......................................................................................................... 29 4.3. Daños Indirectos...................................................................................................... 29 4.4. Etiología ................................................................................................................. 30 4.5. Población susceptible................................................................................................ 30 4.6. Patogenia ................................................................................................................ 30 4.7. Transmisión ............................................................................................................ 31 4.8. Diagnóstico ............................................................................................................. 31 4.9. Tratamiento y Control .............................................................................................. 32 4.10. Prevención .............................................................................................................. 32 4.11. Procedimiento ante la sospecha ................................................................................. 33 5. ASCOPHAEROSIS ............................................................................................ 33 5.1. Características ......................................................................................................... 33 5.2. Presentación ............................................................................................................ 33 5.3. Etiología ................................................................................................................. 33 5.4. Patogenia ................................................................................................................ 34 5.5. Factores predisponentes ........................................................................................... 34 5.6. Cuadro clínico .......................................................................................................... 34 5.7. Diagnóstico ............................................................................................................. 35 5.8. Tratamiento y prevención ......................................................................................... 35 6. APIARIOS ABANDONADOS .............................................................................. 36 6 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7. ENFERMEDADES EXOTICAS...................................................................................... 36 7.1 Introducción.............................................................................................................36 7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia ............................................................... 37 7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae ............................................................................37 7.3.1 Características generales y distribución .......................................................... 37 7.3.2 Agente etiológico ......................................................................................... 37 7.3.3 Ciclo biológico ..............................................................................................38 7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito........................................................................... 38 7.3.5 Signos clínicos ..............................................................................................38 7.3.6 Transmisión .................................................................................................38 7.3.7. Diagnóstico ................................................................................................. 7.3.7.a Diagnóstico clínico......................................................................... 7.3.7.b Diagnóstico químico ...................................................................... 7.3.7.c Diagnóstico diferencial ................................................................... 7.4 38 38 39 39 7.3.8 Toma de muestras ........................................................................................39 7.3.9 Tratamiento .................................................................................................39 7.3.9.a Manejo sanitario ........................................................................... 39 7.3.9.b Control químico ........................................................................... 39 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas).......................................39 7.4.1 Características generales y distribución .......................................................... 39 7.4.2 Ciclo biológico ..............................................................................................39 7.4.3 Diagnóstico ................................................................................................. 40 7.4.4 Daños......................................................................................................... 40 7.4.5 Toma de muestras ........................................................................................40 7.4.6 Transmisión .................................................................................................40 7.4.7 Control ....................................................................................................... 40 7.4.8 Medidas preventivas .....................................................................................40 INFORMACION ADICIONAL ................................................................................... 40 Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 7 �8 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Prefacio El presente Manual fue redactado por el responsable del Programa de Control de Enfermedades de las Abejas, Dr. Mariano Bacci, de la Dirección de Luchas Sanitarias, a cargo del Dr. Marcelo de la Sota, con la colaboración de la Comisión Nacional de Sanidad Apícola (CONASA). Cuenta con la revisión de la Dirección de Epidemiología y la Coordinación General de Campo, todas dependencias de la Dirección Nacional de Sanidad Animal del Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA). El presente documento se dirige principalmente a los agentes sanitarios acreditados (Inspector Asesor Sanitario Apícola), veterinarios de las Oficinas Locales de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, profesionales privados, sectores interesados y a las autoridades provinciales, municipales y nacionales locales; por tanto, se centra en aspectos operativos del Programa Nacional de Control de Enfermedades de las Abejas. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 9 �10 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Manu al d e Pr oc e d imie ntos Enfermedades de las Abejas Policía Sanitaria Las enfermedades de las abejas que se describen se encuentran incorporadas al grupo de enfermedades a las que se refiere el Artículo 4º y el 6º del Reglamento General de Policía Sanitaria, aprobado por Decreto de fecha 8 de noviembre de 1906, reglamentario de la Ley Nº 3959 de Policía Sanitaria de los Animales por Resolución de la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Pesca y Alimentación Nº 103 del 14 de octubre de 1998 que incluye a las enfermedades de las abejas denominadas Varroasis, Loque Europea y Nosemosis y la Nº 383 del 16 de agosto de 1990 que incorpora a la Loque Americana. Al mismo tiempo por Resolución SENASA Nº 422/2003 se incluyen la totalidad de las enfermedades apícolas consideradas por la Organización Mundial de la Sanidad Animal (OIE), por lo tanto son de aplicación para las mismas las regulaciones previstas en la Ley Nº 3959 y su Decreto reglamentario, entre las que se incluye la denuncia obligatoria, interdicción preventiva ante la presencia de casos, etc. 1. Loque Americana 1.1 Características La loque americana es una enfermedad de las crías de las abejas cuyo agente causal es el Paenibacillus larvae. Los síntomas principales son la coloración pardusca creciente y el aspecto pegajoso de las larvas situadas en el interior de las celdas, mostrando estas últimas los opérculos hundidos y porosos, de aspecto grasoso o conteniendo restos resecos de larvas: «escamas». La enfermedad no supone amenaza para la salud humana. 1.2 Presentación Fue detectada por primera vez en el país en el año 1989. Son muy pocos los países en el mundo reconocidos libres de esta enfermedad ante la OIE. 1.3 Patogenia Las esporas ingresan en la colmena por medio de abejas pecoreadoras que las traen en sus buches melarios, abejas pilladoras de colmenas infectadas, herramientas del apicultor, por la introducción de panales con cría infectados, alimentación con miel contaminada y cualquier intercambio de material proveniente de colmenas enfermas. Una vez dentro de la colmena, las esporas son llevadas a la cría por medio de las abejas nodrizas que las depositan junto con el alimento en las celdillas. Las larvas ingieren estas esporas que adoptan sus formas vegetativas, dadas las condiciones adecuadas que tiene el intestino, como pH y tenor de oxígeno. Cuando la larva deja de ser tal y alcanza su estado de prepupa, las bacterias que aún no fueron eliminadas por las heces, migran introduciéndose, gracias a sus flagelos, en las células endoteliales del intestino, llegan a la hemolinfa y se reproducen hasta provocar la muerte en este estado o en uno posterior (pupa). Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 11 �Si bien no se ha comprobado con exactitud la cantidad de esporas necesarias para provocar la enfermedad en una colonia, algunos autores consideran que para una larva de 48 hs de vida, son necesarias miles de esporas, mientras que para una larva de 24 hs, alcanza con solo diez o menos esporas. Hay publicaciones que indican que debe considerarse como dosis infectante a una concentración de 50.000 esporas por litro de miel. 1.4 Diagnóstico Se sospechará de la existencia de loque americana cuando se aprecien alteraciones en las larvas y aparezcan masas filamentosas y costras oscuras o negruzcas en el piso de las celdas de cría. El diagnóstico puede confirmarse en laboratorio. La técnica más utilizada en el país es la técnica de microscopía mediante cultivo bacteriológico. Existen medios de cultivo semi-específicos para el desarrollo de esporas de P. larvae. También se utilizan para el diagnóstico algunas tinciones tradicionales como Gram, Giemsa, Raquette, azul de metileno. Pueden utilizarse antisueros específicos de conejo para la precipitación o aglutinación, bacteriófagos específicos y el test de IF y la técnica molecular del PCR. 1.5 Cuadro clínico Los panales de cría de las colmenas afectadas presentan características particulares de la enfermedad. La cría es salteada y los opérculos se ven hundidos y roídos (por acción de las abejas limpiadoras que intentan sacar las crías ya muertas), en otras celdas se pueden observar las prepupas que han perdido su posición natural, se ven estiradas y sin brillo, el color va pasando del blanco brillante original a un amarillo pálido para convertirse más adelante en un material viscoso, pegajoso y amorfo, de color marrón. Los opérculos pierden su color café característico para tornarse castaño oscuros, casi negros. Transcurridos unos 10 ó 15 días desde la muerte de la larva, aparece la característica patognomónica de la enfermedad, un material viscoso que al introducir un palito dentro de la celda que lo contiene y luego al retirarlo, se estira hasta una longitud que supera los 2,5 cm, de ahí el nombre que se le ha dado a este material: “chicle”. Más adelante este “chicle” se seca y se fija fuertemente al fondo de la celda. En este momento se lo denomina “escama”. Cuando las abejas intentan limpiar las celdas, no hacen más que reiniciar el ciclo de la enfermedad, llevando estas esporas de una celda a otra. Otra característica de las colmenas infectadas es el olor nauseabundo que despiden. 1.6 Etiología El agente causal es una bacteria denominada Paenibacillus larvae, bacilo Gram+ esporulado. Sus formas vegetativas miden entre 2,3 a 5 micrómetros de largo por 0,5 a 0,6 micrómetros de ancho, móviles mediante flagelos perítricos. Sus esporas son ovaladas, miden 1,3- 1,5 por 0,6 –0,7 micrómetros y pueden visualizarse al microscopio sus movimientos brownianos, mediante la técnica de gota pendiente (Hanging drop) modificada, característica que diferencia a las esporas de esta especie de otros bacilos esporulados que afectan a las abejas. Sólo las esporas son infecciosas. Pese a la alta virulencia que de ordinario muestran para las larvas de abejas y a la gran infecciosidad, no siempre enferma la totalidad de la colonia. Mientras que la forma vegetativa es relativamente sensible a la desecación y a la luz solar, los esporos pueden sobrevivir en panales con crías putrefactas y restos de larvas durante décadas (se han desarrollado esporos al cabo de 67 años); también en la miel perduran durante años. 12 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �1.7 Proceso epizoótico La colmena cuenta con ciertas defensas, por lo que, para que se produzca la afección de las larvas por la loque americana, existen circunstancias distintas dependientes de la vitalidad de la población afectada, del inóculo (cantidad de esporas) y de ciertas condiciones externas. 1.8 Reservorios de gérmenes Son las colmenas y panales con la enfermedad latente o clínicamente manifiesta (chicles, escamas, larvas muertas). Emplazamientos abandonados y olvidados pueden ser causa de repetidos brotes de la enfermedad. También pueden serlo la miel y otros productos apícolas. 1.9 Transmisión Los reservorios de esporas son las principales fuentes de contagio. Su importancia varía de acuerdo con la fase de la enfermedad, el tipo de manejo con las abejas y las particularidades locales y regionales. El germen ingresa en forma de esporas por vía digestiva a las larvas susceptibles, traídas por las abejas nodrizas. Al limpiar las celdas, las abejas transmiten esporas a nuevas crías. También pueden transmitirse por miel almacenada y con el polen conservado con miel contaminada; la difusión se produce también entre colmenas y emplazamientos por el intercambio frecuente de abejas (deriva, abejas desorientadas en su vuelo, abejas pilladoras, etc.). Los enjambres deben tratarse siempre como material sospechoso por lo que se tomarán los recaudos correspondientes antes de incorporarlos al colmenar. También el propio apicultor disemina la enfermedad al trabajar con colmenas, panales y utensilios contaminados, cuando pretende aumentar la población con crías infectadas, al fusionar núcleos de abejas enfermas, al transportarlas y al hacerse cargo de enjambres desconocidos, etc. 1.10 Población hospedadora Son susceptibles las larvas de abejas, sobre todo las de 24 hs. La dosis infectante de esporas de P. larvae varía de acuerdo con la constitución de la colonia y la edad de la larva hospedadora. Se producen infecciones en larvas de 24 horas de vida con 10-25 esporos (30-50%). Mientras que larvas de 48 hs. necesitan miles de esporas para enfermar. Las abejas cuentan con varios mecanismos de defensa (seudorresistencia). La acción de criba ejercida por los embudos de válvula para los esporos y sus formas germinales eliminan gran cantidad de esporos de la miel; también se elimina material infeccioso cuando las larvas jóvenes infectadas son destruidas por las abejas, así como los residuos de larvas, antes de la multiplicación del germen (comportamiento de limpieza). 1.11 Prevención y lucha Para evitar el ingreso de esporas son necesarios el control escrupuloso y continuado del estado de salud de las abejas y sus crías. En el Código Zoosanitario de la OIE se fija el plazo de incubación en 15 días. La erradicación de la enfermedad resulta prácticamente imposible por razones económicas y organiza tivas y debido a su frecuente presentación encubierta (enjambres perdidos y naturales). Las medidas se concentran en proteger las zonas libres de loque, en identificar cuanto antes la enfermedad y en el correcto saneamiento del material infectado. 1.12 Tratamiento 1.12.1 Recuperación del Material Vivo Una vez que evaluamos la conveniencia de recuperar el material vivo, debemos decidir mediante qué método lo haremos. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 13 �Existen dos métodos para este procedimiento: Trasiego Directo o Cepillado y Trasiego Doble o Paqueteado. Elegiremos uno u otro de acuerdo a la época del año, posibilidad de recurrencia, disponibilidad de recursos y practicidad del método. También debe evaluarse la posibilidad de aplicar el mejor tratamiento de acuerdo a los materiales disponibles por el apicultor que estamos asesorando. Se debe entonces proceder de la mejor manera posible pero dejando bien claro cuál es el procedimiento más efectivo. a. Trasiego Directo Lo primero que debe hacerse es encontrar a la reina y mantenerla enjaulada fuera de la colonia. Luego debemos cepillar o sacudir las abejas de la colmena enferma dentro de una nueva alza previamente esterilizada o bien, de primer uso. Antes de iniciar la sacudida podemos rociar con agua a las abejas para facilitar el procedimiento y evitar que vuelen demasiado. Una vez sacudidas todas las abejas, incorporamos panales nuevos con sus láminas de cera estampada, un alimentador con jarabe, liberamos la reina, administramos o no, el tratamiento medicamentoso y protegemos con un «poncho» (pedazo de nylon que se coloca encima de los marcos y que sirve para recubrir la colmena y protegerla del frío). No es conveniente volver a abrir la colmena hasta los cinco o siete días posteriores. b. Trasiego Doble También se lo llama paqueteado. El método consiste en trasegar todas las abejas de la colmena a un portapaquete (caja pequeña con una abertura superior por donde se introducen las abejas). Si la cantidad de abejas trasegadas no alcanzan a pesar entre 1,2 kg a 1,5 kg, se debe reforzar con abejas de otras colonias. Previo al encierro de las abejas se debe encontrar a la reina y enjaularla. Este paquete se deja bien cerrado en un lugar oscuro y ventilado durante 48 hs, luego se abre y se introduce en una colmena nueva con panales nuevos con sus láminas de cera estampada y se deja abierto para que las abejas liberen a la reina y se vayan liberando también ellas por sí solas. También se aplica el tratamiento medicamentoso y se cubre con un «poncho». Este último método si bien es más trabajoso, más caro y es necesario más material y tiempo disponible, es el más efectivo en cuanto a la recurrencia de la enfermedad. Se ha comprobado que realizando un trasiego directo hay recurrencia del 20% mientras que por medio del paqueteado, se reduce al 3%. 1.12.2 Recuperación del Material Inerte Hay varios métodos para este procedimiento. Pueden clasificarse de la siguiente manera. a. Calor - Fuego Directo Pueden flamearse alzas, pisos y techos por medio de un soplete. El material debe quedar con aspecto corchoso en un espesor de aprox. 0,5 cm. b. Calor - Inmersión Puede introducirse el material de madera en bateas con cera microcristalina ó parafina de grado alimentario a una temperatura de 130-160ºC. Se deja actuar inmerso durante al menos 10 minutos. Este es uno de los métodos de mayor eficacia en la eliminación de esporos, siendo relativamente práctico y barato. c. Calor y Presión Para este método pueden utilizarse autoclaves espaciosos. Se esteriliza a una temperatura a 121ºC y con una presión de 2 atmósferas, durante 30 minutos. 14 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �d. Químicos No son muchos los productos químicos capaces de destruir a las esporas de Paenibacillus larvae. Sin embargo la soda cáustica al 10% sumergido durante 10 minutos lo logra en el material de madera. También el óxido de etileno, aunque su uso en muy engorroso, peligroso y caro por lo que no se lo recomienda. El Hipoclorito de Sodio al 1%, durante 15 minutos, resulta efectivo sobre superficies no porosas. e. Irradiación Es el método más efectivo, además permite la esterilización de los panales, inclusive aquellos con larvas muertas por la enfermedad en sus estadios de chicle o escama. Consiste en exponer al material a una fuente de Cobalto 60, durante un cierto tiempo y una determinada dosis, de manera que los rayos gamma produzcan la esterilización del medio y la inhibición de la actividad bacteriana. 1.12.3 Eliminación del material inerte Hay casos en los que no es conveniente conservar el material. Hay que proceder de la siguiente manera: debemos realizar un pozo de una circunferencia y profundidad considerables de acuerdo al material que vamos a quemar. Con una esponja o un trapo embebido en nafta o algún otro combustible, eliminaremos las abejas, se quemarán todos los panales de la colmena afectada, tomando las precauciones necesarias para no derramar la miel, luego se echarán al fuego los techos, entretapas, alzas y pisos. Una vez incinerados, se tapa el pozo para evitar el pillaje de los restos de cera y miel que pudieran quedar. Se debe realizar el procedimiento cuando la mayor cantidad posible de abejas está dentro de la colmena. 1.12.4. Tratamiento medicamentoso A partir del año 2017 no se dispone de productos veterinarios autorizados para uso en apicultura para el tratamiento de las enfermedades bacterianas de las abejas. Los antibióticos que estuvieron aprobados para uso en apicultura, no tienen la capacidad de destruir a los esporos del Paenibacillus larvae y dejan latente el potencial infeccioso de las colonias. Sólo destruyen su forma vegetativa. De ahí la importancia del tratamiento integral del material vivo e inerte sin el uso de antibióticos. El riesgo que implica el uso de antibióticos a las colmenas se evidencia en residuos de las drogas utilizadas en la cera, miel, polen y propóleos, afectando potencialmente la salud de los consumidores, y el perjuicio que acarrea a nuestro país la comercialización de dichos productos. 1.13. Procedimientos ante la denuncia Las medidas se concentran en proteger las zonas libres de loque, en identificar cuanto antes la enfermedad y en el correcto saneamiento del material infectado. Al recibir una denuncia se debe intervenir de inmediato el establecimiento que aloja al colmenar. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 15 �Este queda bajo vigilancia oficial y se procede a realizar la inspección correspondiente. En caso de ser necesario, se convoca a un Inspector Sanitario Apícola acreditado por SENASA como apoyo técnico del veterinario oficial. El colmenar afectado no podrá movilizarse hasta tanto finalicen las correspondientes acciones de saneamiento y transcurra el tiempo necesario para asegurarse de la no recurrencia de la enfermedad. Se llenará el Acta de Constatación detallando lo acontecido durante la inspección. Se deben tomar muestras de material sospechoso, en este caso, se tomará un trozo de panal de 5 cm x 20 cm, o bien un panal entero y se remitirá al Laboratorio Central de SENASA o al laboratorio que el Programa de Control de Enfermedades de las Abejas haya autorizado a ingresar a la red de Vigilancia Apícola, junto con la planilla de envío de muestras correspondiente. (Ver 1.15) Se debe aislar preventivamente el colmenar, evitando el tránsito de personas, precintando las colmenas e informando a los apicultores para que no salga ningún material del asentamiento. Una vez confirmado el diagnóstico, se establecerá en torno al emplazamiento infectado un círculo de aislamiento de 1,5 km de radio, en el cual deben examinarse todas las colmenas y existencias de panales. Para disminuir el riesgo de difusión de la enfermedad, se utilizará en las actuaciones ropas protectoras y utensilios propios exclusivamente del establecimiento investigado o se asegurará su posterior esterilizado. El propio apicultor colaborará en el control de sus panales, quien también evitará arrojar descuidadamente material infectado. Se cerciorará de que se cumplen en forma adecuada las medidas de desinfección y tratará de evitar todas aquellas circunstancias que contribuyan a extender la enfer medad, como por ejemplo, evitar pillaje, no retirar del lugar material infectado que no fue destruido, dejar abiertas las colmenas vacías y no consentir las deficiencias higiénicas. 1.14. Procedimiento de atención de focos Si la zona está reconocida libre de la enfermedad, se destruirá todo el material afectado incluyendo abejas y material inerte (Ver Punto 1.12.3) Si la enfermedad está presente en la región se evaluará qué acciones seguir en función del alcance de la patología dentro del colmenar (cantidad de colmenas afectadas sobre el total de colmenas) y la gravedad de la misma en las colonias afectadas. Otro de los parámetros a considerar es la disponibilidad de material inerte de recambio con el que se cuenta en el lugar. A partir de entonces se podrá tomar la decisión de recuperar el material vivo e inerte y de aplicar tratamiento medicamentoso o no. (Ver Punto 1.12) Se considera que el brote de enfermedad ha desaparecido cuando en los controles de resultados efectuados al cabo de 6-8 semanas y en la primavera u otoño siguiente en la región problema, ninguna colmena exhibe manifestaciones de la enfermedad. 1.15. Toma y remisión de muestras Como se mencionó anteriormente, en todos los casos de sospecha se deberán tomar muestras y remitirlas al laboratorio central de SENASA o al laboratorio que el Programa de Control de Enfermedades de las Abejas haya autorizado a ingresar a la red de Vigilancia Apícola. Se enviará un trozo de panal sospechoso de 5 cm x 20 cm, envuelto en papel absorbente y luego en una caja de cartón, o bien el panal entero para permitir al laboratorista tener una visión completa de las características del panal. Se evitará utilizar plásticos, polietileno y nylon para contener la muestra, pues estos materiales condensan la humedad y favorecen a la proliferación de colonias de hongos que puedan alterar la muestra. 16 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Junto a la muestra se debe enviar el formulario correspondiente al envío de muestras, firmado por el veterinario de SENASA y/o el Inspector Sanitario Apícola que recolectó la muestra, y todos los datos solicitados en cuanto a la región y una breve reseña de los síntomas observados en las colmenas. Hasta tener el resultado laboratorial, todo el material sospechoso y el acompañante permanecerán en el establecimiento. 2. Loque Europea 2.1 Características También se la llama Loque benigna. Es una enfermedad bacteriana de las larvas de abejas, muy dependiente de las condiciones ambientales y el desarrollo del nido de cría. En el suelo de las celdas las larvas afectadas mueren, luego se forman costras castañas, al principio esponjosas, para luego desecarse y adoptar textura viscosa-escamosa, poco adheridas, que van cambiando de color, del blanco brillante normal hasta castaño amarillento y pardo negruzco. Cuando la infección es leve y las poblaciones tienen buena vitalidad, pueden soportar la enfermedad hasta su autocuración. Es excepcional la pérdida de estas poblaciones. La enfermedad no supone ninguna amenaza para la salud del hombre. 2.2 Presentación La loque europea (o benigna) está ampliamente difundida en casi todo el mundo. En el país ha dismi nuido la frecuencia de su aparición, pero en cualquier punto del territorio puede presentarse. 2.3 Diagnóstico Surgirá la sospecha de esta enfermedad cuando se observen panales con cría salteada, larvas redondas o estiradas muertas, por lo general antes del operculado de las celdas. El diagnóstico se corrobora en laboratorio identificando el germen causal en los residuos de las larvas afectadas. Para la diferenciación con otras enfermedades de las larvas, pueden utilizarse también antisueros específicos, bacteriófagos y el test de IF. 2.4 Etiología El agente causal de la loque europea, Melissococcus pluton White, a diferencia de la bacteria responsable de la Loque americana, no tiene la capacidad de esporular. Secundariamente intervienen otros agentes bacterianos, entre otros, el Paenibacilus alvei y Enterococcus fecalis. 2.5 Reservorios de gérmenes Gracias a la imposibilidad del Melissococcus pluton White para esporular, el material infeccioso no perdura en el material apícola inerte. Los panales de cría con larvas afectadas representan el principal reservorio. Las abejas adultas de las colmenas afectadas actúan como transmisoras de la enfermedad. 2.6 Población hospedadora Son receptoras las crías de abeja, que por lo general mueren arrolladas en las celdas antes de ser operculadas. Factores de estrés, como por ejemplo manejo y cuidados deficientes, la falta de polen o la acción de sustancias nocivas, desequilibrios entre nodrizas y adultas, traslados de colmenas, etc. pueden provocar brotes de la enfermedad. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 17 �2.7 Prevención y lucha Las medidas a adoptar se asemejan en objetivos y realización a las citadas al tratar loque americana. Las medidas para la protección de territorios limpios, así como las requeridas en caso de brotes de loque europea, se corresponden en líneas generales con las de la loque americana, si bien la benignidad de la loque europea permite limitar el aislamiento a sólo el establecimiento afectado. De acuerdo con la información proporcionada por la OIE referente al tiempo de incubación, las poblaciones sospechosas deben someterse a cuarentenas superiores a 15 días. Mediante medidas de manejo apícola puede estimularse el comportamiento de limpieza de las abejas y la selección de líneas genéticas sobre la base de esta característica. Por lo demás, basta corrientemente con eliminar los panales afectados, y en los casos más graves, con practicar el método del trasiego o paqueteado. Si bien los antibióticos son eficaces contra el agente de la loque europea, se recomienda establecer medidas preventivas de manejo más que la utilización de los mismos. Las medidas en territorios con la enfermedad enzoótica coinciden en buena medida con las de la loque americana, aun cuando no es preciso por lo común crear ningún círculo de aislamiento en torno al establecimiento afectado, con lo que los movimientos de abejas con la vecindad resultan menos limitados. 2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos Debido a que se trata de una enfermedad de escasa importancia en pérdidas económicas, difícilmente es capaz de provocar la muerte de la colonia, que la bacteria que la causa no es capaz de esporular y por lo tanto no representa mayores riesgos de dispersión, no se trata de una enfermedad cuya denuncia merezca atención inmediata. Las medidas para la protección de territorios limpios, así como las requeridas en caso de brotes de loque europea, se corresponden en líneas generales con las de la loque americana, si bien la benignidad de la loque europea permite limitar el aislamiento a sólo el establecimiento afectado. 3. Varroosis 3.1 Características Se trata de una enfermedad parasitaria provocada por un ácaro llamado Varroa destructor. En países con apicultura desarrollada como es el caso de la Argentina, se considera que es la enfermedad más grave junto a loque americana. Los ácaros se alimentan de la hemolinfa de las abejas, se fijan a los esternitos de las abejas adultas, perforan la cutícula y las debilitan afectando su comportamiento y provocando desorientación en el vuelo. También afecta a las crías. Además puede transmitir o crear las condiciones adecuadas para la aparición de otras enfermedades bacterianas, fúngicas o virales. En colonias de abejas asiáticas la cantidad de ácaros adultos varía de 0 a 700 individuos y se genera un equilibrio donde coexisten el hospedador y el parásito. Además, las varroas no llega a provocar un gran daño debido a que las abejas toleran y logran limpiar las varroas de la cría y de ellas mismas. El ciclo reproductivo se lleva a cabo en las celdas de zángano. En cambio, la interacción entre varroa y Apis mellifera no se encuentra en equilibrio. En este tipo de abejas, tiene la capacidad de reproducirse tanto en celdas de zánganos como de obreras, la reproducción es mucho mayor y puede causar la muerte de la colonia. 18 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �3.2 Presentación La descripción de Varroa sobre Apis cerana data de 1904. Recién en 1963 se detecta a este parásito sobre abejas de la especie A. mellifera. A partir de este momento, por causa del intercambio comercial entre países de un continente y otro, llega a distribuirse por todo el mundo. En la Argentina se la detecta por primera vez en el año 1976 en colmenas de Laguna Blanca, en la provincia de Formosa. En el transcurso de los dos años posteriores, la varroosis se diseminó por todo el país. La intensidad de la dispersión de esta enfermedad hace que hoy sea considerada como enfermedad endémica en nuestro país. 3.3 Daños Indirectos Además de correr el riesgo de contaminación de los productos de la colmena a raíz de los tratamientos para el control del ácaro, es posible que las varroas transmitan debido a su mecanismo de succión, enfermedades de tipo viral, aunque de cierta manera también interviene en enfermedades micóticas y bacterianas. También existe evidencia de que el ácaro es capaz de transportar esporas fúngicas del agente causal de la cría yesificada, Ascophaera apis en su superficie y así diseminarlas por la colmena. Sin embargo, esta circunstancia desde el punto de vista epidemiológico, no es significativa, pues los cuerpos fructíferos se encuentran presenten todo el tiempo en la colmena esperando la aparición de factores predisponentes para desarrollar la enfermedad. Es aquí donde se cree que varroa juega un papel importante ya que produce el debilitamiento de la colmena y el consecuente desequilibrio que favorece la aparición de momias micóticas. En cuanto a las enfermedades bacterianas, se destaca la capacidad del ácaro para transportar esporas de Paenibacillus larvae. Aunque no interviene en la patogenia de la enfermedad. Debido a la forma de alimentación del ácaro, perforando la cutícula de las abejas y succionando su hemolinfa, se lo considera un agente ideal para la inoculación de partículas virales. Otro de los daños indirectos que pueden mencionarse es la acción de los pesticidas sobre colonias infestadas por varroosis. La varroa, al alimentarse del adulto, disminuye la concentración de proteínas y ácidos grasos en hemolinfa, hecho que hace aumentar la susceptibilidad de las abejas a las dosis de pesticidas que en otras circunstancias serían inocuas, y que provoque en presencia de una alta tasa de infestación, la muerte de la colonia. 3.4 Etiología Varroa destructor es un ácaro que presenta dimorfismo sexual. Esto quiere decir que la hembra y el macho se diferencian en forma y tamaño. Las hembras adultas tienen la forma de un escudo oval, el cuerpo deprimido dorsoventralmente, son de color pardo rojizo y de un tamaño que varía aproximadamente entre 1,2 mm de largo por 1,5 mm de ancho. Su cuerpo está recubierto de vellos delgados que cumplen la función de palpación y les permiten fijarse a las abejas adultas durante el vuelo. Tienen cuatro pares de patas gruesas y cortas cuyos tarsos finalizan con unas ventosas que les permite fijarse a superficies planas. Su aparato bucal está adaptado para picar y chupar. El período de vida de una varroa puede ser de algunos días o de varios meses, dependiendo de la temperatura, la humedad y de la actividad reproductiva. Los machos son más pequeños, miden de 0,4 a 0,8 mm y presentan un color blanquecino grisáceo o amarillento. Pueden encontrarse solamente en las celdas de las crías. Los machos tienen sus quelíceros adaptados para la transferencia de esperma, por lo que no pueden alimentarse. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 19 �3.5 Ciclo Biológico Cuando una hembra fecundada se desprende de una abeja, se dirige inmediatamente a una celda próxima a opercular (aparentemente el ácaro detecta algunos componentes de la hormona del operculado que segregan las larvas -9 días en la obrera y 10 días en los zánganos-). Este momento coincide con el 5º estadío del desarrollo larval (L5). La hembra fértil inicia el ciclo al entrar en la celda. Puede entrar una sola o con otras hembras. Una vez que alcanza el interior de la celda, se aloja en el alimento de la larva y se mantiene inmóvil hasta que ésta lo consuma. Luego, succiona la hemolinfa de la pupa y comienza la postura de un primer huevo. Cuando esto sucede ya han transcurrido entre 60 a 70 horas desde su ingreso a la celda. Este primer huevo dará origen a un ácaro macho; 30 hs. más tarde pondrá otro huevo que dará origen a un varroa hembra, a partir de este momento continuará su postura cada 30 hs. con huevos que originarán varroas hembra. Una vez que el macho alcanza la madurez sexual, fecunda a sus hermanas aún sexualmente inmaduras quienes conservan el esperma en su espermateca. Luego de la cópula, el macho muere al igual que las hembras inmaduras una vez que nace la abeja adulta. El ciclo de huevo a adulto es en la hembra de 8 a 9 días mientras que en el macho es de 6 a 7 días. Una hembra de varroa fecundada puede poner hasta 5 huevos en las celdas de obreras y hasta 7 en las de zánganos. La cantidad de ovoposiciones dependerá del tiempo que necesita la larva de la abeja para completar su ciclo y llegar a adulta. Es por ello que la cantidad de huevos varia de acuerdo a la especie de abeja y al tipo de individuo (zángano, obrera, reina). 3.6 Cuadro clínico Cuando los niveles de infestación son bajos, no hay manifestación evidente de la enfermedad. Cuando hay alto grado de parasitismo pueden verse abejas con alas y patas deformadas y el abdomen reducido. En los marcos del nido de cría pueden verse los opérculos roídos y cría salteada. Si una colmena entra a la invernada con niveles de infestación superiores al 5%, es muy probable que esa colonia muera, pues en otoño, se produce una mayor intensidad del parasitismo al achicarse la colonia. Muchas colonias en esta situación suelen fugarse de la colmena en pleno invierno dejando un puñado de abejas y las reservas. Los daños que ocasionan pueden clasificarse como directos e indirectos. Entre los primeros, si no se produce el enjambre o directamente la muerte de la colonia, se puede mencionar una reducción del peso de las abejas y reducción del tiempo de vida. Tienen más posibilidades de desorientarse al regresar a la colmena, se reduce las proteínas y los cuerpos grasos de la hemolinfa, por lo que aumenta la susceptibilidad de ciertos tóxicos. Si estuvieron parasitadas durante su desarrollo en la celda, además de nacer con deformidades y de menor tamaño, la glándula hipofaringea puede sufrir hipoplasia. En los casos de alto parasitismo, la abeja no logra nacer y permanece muerta en la celda. Dentro de los daños indirectos, puede mencionarse la posibilidad de contaminación de la miel y otros productos de las colmenas por medio de los acaricidas de síntesis. Además, como ya fuemencionado, puede transmitir enfermedades de tipo viral. 3.7 Diagnóstico Hoy es prácticamente imposible encontrar colmenas en las regiones de mayor producción que no tengan varroas parasitando las colonias. Es por ello que los métodos de diagnóstico se orientan a determinar de manera cuantitativa la presencia del parásito, estimando los porcentajes de infestación. 3.7.1 Prueba del frasco Es el método más utilizado para determinar el porcentaje de infestación de los apiarios. Se debe tener en cuenta que el ácaro presenta al igual que muchos ectoparásitos la característica 20 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �de agregación. Esto quiere decir que tendremos áreas dentro de la colmena con gran cantidad de ácaros y otras áreas libres de estos. Por lo que un grupo de abejas adultas tendrá un alto nivel de parasitismo y otro grupo niveles de infestación ínfimos. Esto puede corregirse tomando, en el momento de la recolección de la muestra, unas 300 abejas de ambas caras de tres panales diferentes de cada colmena. De esta manera nos aseguramos una muestra representativa. Se deben muestrear 6 colmenas cuando el apiario tiene hasta 50 colmenas o el 10% de las colmenas del apiario cuando éste tiene más de 50 colmenas. Una vez tomada la muestra mediante un frasco de boca ancha, se le introduce agua y un poco de detergente o alcohol al 70% para lograr el desprendimiento de los parásitos. Después de agitar el recipiente durante al menos cinco minutos, filtramos el contenido y contamos los ácaros y las abejas. La proporción de ácaros sobre la cantidad de abejas examinadas, nos da multiplicando por 100, el porcentaje de infestación. Ej. 12 ácaros y 300 abejas: 12/300 x 100= 4% de infestación. Es importante tener en cuenta que este tipo de diagnóstico sólo tendrá en cuenta el parasitismo en fase forética, es decir que no se estimará el nivel de infestación de la cría. Cuando se realiza entrada la temporada y el nido de cría está desarrollado, se estima que el 70% de los ácaros están dentro de la celda, por lo que el resultado arrojado se referirá solo al 30% de los ácaros que tiene esa colonia. Métodos similares pueden describirse con la utilización de éter. Otro se describe con la utilización de azúcar, logrando el desprendimiento de los ácaros al agitar el recipiente y a su conteo. La ventaja de estos métodos es que no es necesario matar a las abejas. 3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso Es un método utilizado para detectar la enfermedad y estimar el nivel de parasitismo de la colmena. Además, es el método que utilizaremos para determinar la eficacia que presenta el producto acaricida que estamos usando. El piso trampa para varroa, consiste en un piso móvil de madera cubierto por una malla metálica que permite el paso de los ácaros caídos, pero no el de las abejas para limpiarlo. En lugar de este piso comercializado por algunas firmas proveedoras de insumos, pueden utilizarse una cartulina o una bandeja de plástico o chapa, siempre provistas de malla que impida la limpieza por parte de las abejas. En cualquiera de los casos debe untarse alguna sustancia adhesiva como vaselina o aceite vegetal hidrogenado para que queden adheridos los ácaros caídos y después recolectarlos para el conteo (si se utiliza para pruebas de eficacia no debe colocarse sustancia adhesiva). Al retirar el piso y al contar los ácaros muertos en forma natural obtenemos una aproximación del parasitismo de esa colonia. 3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría Este método consiste en tomar un panal de cría operculada de la colmena en estudio. Luego, se desoperculan unas 100 a 150 celdas de cría, y se cuenta el número de ácaros presentes en las celdas. Se debe trazar una línea diagonal y desopercular las larvas sobre esa línea. Otra opción sería una guarda griega o un zigzag. Luego se hace la relación entre la cantidad de ácaros y el número de larvas inspeccionadas. De esta manera se obtiene un resultado sobre la cantidad de ácaros en cría. 3.7.4 Método químico Este método consiste en colocar en una colmena con piso trampa, tres principios activos farmacológicamente diferentes a la vez, y a las 24 hs. recolectar los ácaros caídos. Se supone que con ese Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 21 �choque químico se elimina el 100% de los varroa, dato que puede extenderse para estimar la población de las colonias vecinas. 3.8 Difusión La difusión de la varroosis se ve facilitada dentro de los apiarios por medio de los zánganos; por abejas perdidas, hecho que ocurre agravado por una disminución en el sentido de la orientación en caso de sufrir la parasitosis, y por pillaje. Entre aparios, además de transmitirse por los mismos mecanismos que dentro de un mismo apiario, se puede introducir la parasitosis con la incorporación de material biológico infestado (reinas, paquetes, enjambres y núcleos nuevos). La trashumancia contribuye también a la difusión de esta enfermedad, agravando las parasitosis en aquellos lugares en los que se concentran muchas colmenas en una determinada época del año. 3.9 Reservorios de parásitos Los enjambres silvestres y los apiarios abandonados son posiblemente, los más importantes núcleos de enfermedad. 3.10 Transmisión Las principales fuentes de contagio son las poblaciones enfermas, los panales de larvas infestados y abandonados, y los enjambres producidos a partir de ellos. La transmisión se produce a través de las abejas adultas sobre todo por los zánganos, por abejas adultas desorientadas y pilladoras. La diseminación biológica estará sujeta a la densidad de la población de abejas, la capacidad de vuelo de las mismas, características del entorno, distribución de los emplazamientos y el grado de infestación. La propagación se ve aumentada varias veces con la práctica de la trashumancia. 3.11 Población hospedadora Es receptora la totalidad de la población. Presentan mayor susceptibilidad las larvas de zánganos por razones físicas y biológicas. En las celdillas de obreras, la segunda mitad de la puesta a partir del 4º huevo ya no proporciona ninguna hembra de Varroa con posibilidades de vida, por lo que resulta una tasa de descendencia de 2,6 (cría de zánganos) y 1,3 (cría de obreras) ácaros hijos fértiles por ciclo de reproducción. Los 16 días de duración del período de incubación de las celdillas de abeja reina constituyen un tiempo demasiado corto para el completo desarrollo del Varroa. 3.12 Prevención y lucha La varroosis de las abejas es una enfermedad endémica en Argentina. En la actualidad es imposible erradicarla considerando la existencia inevitable de enjambres naturales. El sacrificio general de las poblaciones infectadas no proporciona ningún éxito en el saneamiento, ya que por lo regular, cuando se descubren los ácaros, ya están infestados otros emplazamientos. La estrategia se centra en combinar medidas en la explotación apícola con tratamientos acaricidas para reducir la población de parásitos, frenar su difusión, y con ello atenuar las pérdidas económicas. A tal efecto resultan imprescindibles el escrupuloso control del estado de salud de las abejas y la decidida y disciplinada colaboración de los apicultores trabajando conjuntamente a nivel regional. 3.13 Tratamiento Al incrementarse considerablemente durante los últimos diez años la prevalencia parasitaria, y a la progresiva disminución de la susceptibilidad de los ácaros a ciertos agentes químicos, las preguntas que se plantea el apicultor con el paso del tiempo es cuándo y con qué tratar. Nadie tiene hoy la «receta» precisa. 22 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Lo ideal para el control de la varroosis, sería contar con herramientas de tipo biológico. De esta manera evitaríamos los riesgos de contaminación de los productos de la colmena con agentes químicos y los riesgos de sus efectos tóxicos sobre las abejas y sus crías. Desafortunadamente, por las características del ciclo biológico de la varroa, no hay posibilidades de intervenir en su etapa reproductiva mediante, por ejemplo, la TIE: Técnica de Insecto Estéril o machos estériles, que evita la descendencia de las plagas en otras actividades productivas. Dentro de este tipo de control solo contamos, por el momento, para mantener baja la población de ácaros, sobre todo en pequeñas explotaciones debido a lo engorroso del método, la utilización de panales zanganeros. Hay estudios que confirman la eliminación de más del 60% de varroas mediante la incorporación y posterior eliminación una vez operculados, de dos panales zanganeros. Sin embargo se debe prestar especial atención a las colmenas en las que se aplica este método sin dejar más de quince días los panales zanganeros dentro de la cámara, pues nacería un número muy elevado de ácaros comprometiendo la viabilidad de la colonia. Por eso se recomienda utilizarlo sólo en explotaciones a pequeña escala y en apiarios de fácil acceso. Otro de los métodos que se está estudiando para evitar el uso de agentes químicos para el control de la varroosis, es el de seleccionar líneas genéticas con alto comportamiento higiénico, tolerantes a la varroosis. Este fenómeno consiste en implementar un sistema de selección y mejoramiento genético identificando y eligiendo para la reproducción de material vivo, las colonias que presentan una menor susceptibilidad a la enfermedad, dada por la capacidad de eliminar las varroas adultas y de detectar y remover las crías afectadas por el parásito. Sin embargo, es probable que todo este mecanismo de selección, lleve mucho tiempo hasta que pueda extenderse a las distintas regiones geográficas y que sean aplicables como única herramienta para el control del ácaro. Por el momento nos vemos obligados a la utilización de productos químicos, de síntesis u orgánicos. 3.13.1 Control químico Podemos definir como un producto «ideal» a aquel que no altera el funcionamiento interno de la colonia, que es práctica su aplicación, el que presenta mayor eficacia con la menor cantidad de aplicaciones, que no signifique un riesgo de contaminación de la miel y la cera, que no sea perjudicial para la salud humana y que sea de bajo costo. Existen varios métodos para el control de la varroosis mediante diferentes productos con distintas formas de acción y elaborados con diferentes principios activos. 3.13.2 Formas de acción de los acaricidas Sistémicos: Ingeridos por las abejas. Por medio de la hemolinfa, produce la muerte de los ácaros que se encuentran sobre las abejas adultas. El inconveniente en la utilización de los productos que actúan de esta manera, es que hay que repetir las aplicaciones por lo que tiende a ser menos práctico que los de contacto. De contacto: También eliminan solo las varroas de las adultas, pero quedan dentro de la colmena por más tiempo y permanecen activos durante todo el ciclo reproductivo de las varroas. Es por eso que con una sola aplicación de alguno de estos productos, basta. 3.13.3 Formas de administración Humos o gases: Son volteadores de ácaros que parasitan abejas adultas. Se aplican por medio de gasificadores de propano o con el ahumador. Por evaporación: Así actúan las sustancias orgánicas. Esto está íntimamente relacionado con la Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 23 �temperatura ambiente y las características de los soportes y dosificadores. Solución: Hay ciertos productos que se aplican puros en recipientes dentro de la colmena y gracias a la bioventilación producida por las abejas, se difunde. También puede mencionarse dentro de este grupo a los que se aplican en el jarabe para su acción sistémica. Tiras de liberación lenta: son tiras por lo general plásticas, que por el contacto con las abejas liberan lentamente las partículas del activo. 3.14 Control de la Varroosis El ácaro V. destructor causa anualmente serias pérdidas en la producción apícola del país. En muchos casos ocasiona la muerte de las colonias, pero en otros genera serias pérdidas de producción, debido a un debilitamiento general de las colmenas. Esto se hace más acentuado en áreas con escasez de polen donde el déficit proteico ocasionado suele causar la muerte de las colmenas; o en zonas donde los inviernos son poco rigurosos y la cría permanece durante todo el periodo facilitando una reproducción ininterrumpida del ácaro mientras disminuye paulatinamente la población de abejas. Por estos motivos, entrar a la invernada con alto número de abejas, buena cantidad de reservas y sobre todo un bajo número de ácaros es imprescindible para lograr un buen desarrollo de las colmenas durante la primavera. Existen muchas opciones de control en el mundo, pero es necesario diseñar estrategias de control en cada región o en cada país ya que tanto el ácaro como las características climatológicas, íntimamente vinculadas a su reproducción, son propias de cada lugar. Sin embargo, existe un consenso mundial sobre la necesidad de incorporar al plan de tratamientos contra el ácaro una aplicación de acaricidas hacia fin de la cosecha, llamado tratamiento de verano (Imdorf, et al. 1996; Elzen, et al, 2001). Este tratamiento permite disminuir la carga de Varroa a fines de verano e ingresar al otoño, momento de gran reproducción, con un reducido número de ácaros. Basadas en esta información, se detallan a continuación una serie de recomendaciones para implementar un plan de control estratégico tendiente a disminuir las poblaciones de Varroa en las colmenas y los riesgos de que permanezcan en la miel residuos de los productos utilizados. 3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis Usar los productos acaricidas autorizados por SENASA para ser utilizados en apicultura. Deben ser de origen conocido, contar con especificaciones de uso, vencimiento y formula completa. Determinar los porcentajes de infestación antes y después de la aplicación del tratamiento. Emplear la dosificación correcta. Alternar los distintos métodos de control utilizados, de manera de eliminar en el siguiente tratamiento a los ácaros que resistieron la acción del producto utilizado anteriormente. Respetar los tiempos de carencia de los productos acaricidas Realizar curas sistemáticas entre los apicultores de la región, utilizando productos que garanticen la disminución de los niveles de infestación y los mínimos riesgos de contaminación de los productos de las colmenas. 3.14.2 Plan estratégico. Manejo Integral La magnitud del alcance de la enfermedad dependerá principalmente de las condiciones ecológicas de cada región y de la movilización de colmenas, que por lo general, adelantan la reproducción del ácaro. Por eso se recomendarán dos o tres curas, según los casos. Las siguientes recomendaciones se basan en cuatro pilares fundamentales necesarios para asegurar el éxito de las estrategias de control: 24 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �a. La rotación de acaricidas. b. El aumento en la utilización de acaricidas orgánicos. c. La evaluación del grado de infestación antes y después de aplicado el tratamiento. d. Tratamientos zonales coordinados. 3.14.2.a Rotación de los Principios Activos Es indispensable para evitar que los ácaros varroa desarrollen el fenómeno de resistencia a los acaricidas utilizados actualmente, la rotación obligatoria de los productos. La quimiorresistencia es un fenómeno en el que una parte de la población de individuos toleran las dosis que para el resto de la población de la misma especie son letales. Es una relación entre el producto y el parásito donde parte de la población de ácaros sobreviven a las dosis de aplicación recomendadas por el fabricante del producto. Los ácaros varroa al igual que otros insectos, han demostrado una alta capacidad para hacer frente a los plaguicidas debido a sus poblaciones numerosas y al corto intervalo entre generaciones. Esto eleva la posibilidad de que existan individuos más resistentes que el resto y favorece su multiplicación. Se debe recordar que la resistencia se transmite genéticamente entre una generación y otra. Se predispone a este fenómeno con el mal uso de los productos, las sub y sobredosificación, utilización de los productos durante un tiempo más prolongado a lo recomendado, y por la utilización ininterrumpida del mismo producto entre una cura y otra. Entonces para evitar el desarrollo de resistencia y con la finalidad de eliminar los ácaros varroa que pudieran haber resistido a la cura anterior, se cambiará de principio activo para el nuevo tratamiento. Por eso se debe exigir al proveedor que especifique además de la dosis a emplear, formas de uso y fecha de vencimiento del producto; el nombre del principio activo con el que fue formulado. Recuerde que todos los productos veterinarios están elaborados con excipientes, vehículos y un principio activo (ej. Amitraz, fluvalinato, flumetrina, Ac. oxálico, Ac. fórmico, etc.). A modo de ejemplo: Si Ud. curó en el otoño con Amitraz, en primavera lo debe hacer con ácido oxálico o fórmico. Si para la cura de verano utilizó un piretroide (ej. fluvalinato), no debe usar para la cura de otoño ningún piretroide (fluvalinato o flumetrina). Utilizando otro principio activo de características farmacológicas distintas, se asegura eliminar la población que pudiera haber resistido a la acción del producto anterior. Para detectar fenómenos de este tipo, resulta imprescindible que el apicultor comience a evaluar de un modo más certero la verdadera eficacia de los productos que utiliza. Para ello, es importante conocer los métodos de determinación del porcentaje de infestación para aplicarlos luego del tratamiento. En caso de determinar resistencia se debería dejar de usar el activo por al menos dos temporadas de modo de eliminar la población de ácaros resistentes. Aunque los acaricidas orgánicos por definición no producen resistencia, no es aconsejable utilizar siempre el mismo acaricida orgánico, a fin de evitar mecanismos comportamentales de Varroa, que disminuyan la eficacia de los mismos. 3.14.2.b Evitar los Residuos Para evitar los residuos en mieles es indispensable conocer el momento de aplicación de cada una de las drogas a utilizar. Se debe prestar mucho cuidado y trabajar con conciencia para evitar que queden residuos químicos en los productos de la colmena. La presencia de estas sustancias no sólo ponen en Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 25 �riesgo la continuidad del comercio de nuestra miel, sino que también constituyen un riesgo para las abejas y la salud humana. Los productos de la colmena pueden contaminarse en menor o mayor grado de acuerdo a la naturaleza química de la sustancia con la que estamos trabajando y la afinidad del mismo con la miel o la cera. Sin embargo que determinado producto tenga mayor afinidad por la cera, no significa que no pueda concentrarse en la miel, de hecho se han detectado mieles contaminadas con ellos y en menor escala en polen y propóleos. Por eso se debe suspender la aplicación de los productos de síntesis al menos 8 semanas antes de la colocación de las alzas melarias (tiempo de carencia), y aplicarlo solo en la cámara de cría. En caso de optar por el uso de coumaphos, debe considerarse administrarla básicamente en otoño o fines de verano, luego de la última cosecha teniendo en cuenta que en nuestro país está demostrada la existencia de varroas con altos niveles de resistencia a este principio activo. En primavera es aconsejable utilizar acaricidas orgánicos (oxálico, fórmico, timol) para evitar el riesgo de dejar residuos. Tenga en cuenta que los acaricidas deben dejar de aplicarse al menos ocho semanas antes de la mielada (período de carencia). Utilice las dosis recomendadas y respete las indicaciones de uso. En general para disminuir las visitas a los apiarios se varían las formas de aplicación generando problemas colaterales como residuos o mayor nocividad para las abejas, disminuyendo a la vez la eficacia. 3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación En general una vez realizados los tratamientos, muchos apicultores esperan hasta las próximas revisaciones para ver el estado de las colmenas. Por ser la varroosis una de las principales causas de pérdidas de colmenas, es básico verificar el éxito del tratamiento aplicado, ya que por cambios en el clima, alto nivel de infestación, apiarios cercanos sin tratar, enjambres, principios activos sin la eficacia suficiente o mal administrados, podemos mantener una alta carga de ácaros en el apiario tratado. Para realizar los diagnósticos pre y pos tratamiento podemos utilizar el método descripto en el punto Diagnóstico de Varroosis (1.b) 3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado Como cuarto pilar se considera a la coordinación zonal entre apicultores para la realización de tratamientos simultáneos en todos los apiarios y con el mismo principio activo. De esta manera se evita la reinfestación a través de los apiarios cercanos y se elimina en forma masiva la mayor cantidad posible de ácaros. Regiones bajo un plan sanitario pueden realizar esta acción conjunta. Tenga en cuenta que si usted cambia de principio activo por no haber obtenido buena eficacia quizás a causa de la resistencia, y su vecino no lo hace, la medida será inútil pues los ácaros resistentes del vecino llegarán a sus colmenas en un momento u otro a través de zánganos, abejas pilladoras, enjambres, etc. 3.15 Plan de Curas El plan consiste en la aplicación ya sea de uno, dos o tres tratamientos durante el primer año y una evaluación del éxito a fin de temporada y la elaboración del plan para el segundo año. La cantidad de tratamientos variará según el ciclo biológico de las abejas y por ende de los ácaros, coincidente con las características climáticas de cada zona. También se tendrá en cuenta el eventual adelanto de las temporadas apícolas por trashumancia o incentivo. 26 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �A. En las zonas con inviernos rigurosos, en donde la primavera comienza tarde y no hay desarrollo de cría durante el invierno, será suficiente aplicar dos tratamientos. 1. Primaveral tardío – cuando empiece a desarrollarse la cría pero no se ha extendido totalmente. Este tratamiento afectará principalmente a los ácaros en estado forético. Es aconsejable realizarlo con algún acaricida orgánico o de baja residualidad. 2. Principios de otoño – cuando se termina la cosecha y empieza a disminuir el nido de cría. En estas zonas se trata aproximadamente cada seis meses. B. En las zonas con inviernos menos rigurosos, o en el caso de la transhumancia, es aconsejable hacer tres tratamientos. Los tratamientos indispensables para el primer año se realizarán en las siguientes fechas: 1. Principios de primavera: consistirá en un tratamiento de las colmenas cuando el nido de cría empieza a expandirse. Atacará básicamente a los ácaros en estado forético. 2. Un tratamiento de verano, al finalizar la última vuelta de cosecha, con acaricidas que puedan actuar sobre los ácaros en estado forético y a la salida de su periodo reproductivo. 3. Un tratamiento de otoño, aplicado cuando el nido de cría se haya reducido en forma importante y los ácaros se hallen en su totalidad en estado forético (sobre las abejas). En estos casos es importante desarrollar a la vez técnicas de manejo que disminuyan el número total de ácaros, como ser, la formación de núcleos con mayor cantidad de cría operculada y realizar un tratamiento luego de quince días de formados ya que antes que comience la postura de la nueva reina siempre existirá un periodo en donde todas las varroas estén sobre las abejas. Listado de principios activos con efectos acaricidas: Primavera - Salida del invierno (apertura del bolo invernal - activación del nido de cría): Oxálico Fórmico Timol Amitraz. Verano (después de la última vuelta de la cosecha): Fórmico Amitraz Coumaphos Fluvalinato Flumetrina. Otoño (antes de entrar a la invernada): Timol Oxálico Amitraz Coumaphos Fluvalinato Flumetrina. Listado de productos aprobados para su uso en apicultura: No todos los principios activos acaricidas mencionados están disponibles en el mercado a través de productos veterinarios aprobados por SENASA para su uso en apicultura. Por lo tanto, el Plan de Curas deberá diseñarse teniendo en cuenta, entre otras cosas, que los productos elegidos se encuentren aprobados por la autoridad competente para su uso en apicultura, lo cual deberá chequear a través del Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 27 �listado actualizado difundido por el Organismo. El registro de productos veterinarios es dinámico y sufre, eventualmente, bajas y altas de productos. Por lo tanto, previo a la adquisición de productos acaricidas se deberá consultar y verificar que los productos elegidos estén aprobados. Respetando el período de carencia y utilizando exclusivamente medicamentos autorizados se asegura la calidad y se garantiza que no se favorecerá al desarrollo de resistencia ni quedarán residuos en los productos de la colmena. Por otro lado, durante toda la temporada los apicultores podrán utilizar mecanismos para la disminución de la carga del ácaro, pero que es sabido no controlan las poblaciones. Los mecanismos permitidos son: Pisos trampa para Varroa. Utilización de panales zanganeros. Importante El uso de cualquiera de estos mecanismos, no elimina ninguno de los tratamientos indispensables para el control de Varroa. A raíz de la gran cantidad de información circulante que carece de rigor científico en torno al uso de la vaselina y a la gran mortandad causada en colmenas solo tratadas con vaselina, nos vemos en la obligación de advertir que la vaselina no es un acaricida y que su eficacia real no supera los límites de daño económico. 3.16 Procedimientos ante la denuncia El apicultor vigilará de forma continuada, por su propia iniciativa y por estar obligado legalmente, el estado sanitario de sus abejas aplicando los métodos de diagnóstico descriptos. Figura 1. Curva estimada de desarrollo de población de abejas en colmenas y momentos de aplicación de acaricidas. 1i, 2i y 3i: los tratamientos indispensables para el caso B. Tener en cuenta que esta curva corresponde a una zona de clima templado por lo que debe adaptarse de acuerdo al desarrollo poblacional de otras regiones. Ya que la trashumancia es uno de los factores difusores de la parasitosis, requisitos previos para proteger los territorios limpios son la colaboración del Servicio Veterinario oficial en el exacto cumplimiento de los programas de desplazamientos de colmenas y del oportuno mantenimiento de éstas por el apicultor afectado, así como la observación de las pertinentes disposiciones legales. Al recibir material vivo, se someterá a un diagnóstico de la enfermedad y al inmediato tratamiento en caso de que fuera necesario. 28 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �3.17 Procedimientos ante sospechas En caso de sospecha, se pondrán en práctica las medidas generales habituales para la prevención de epizootias (aislamiento del asentamiento, toma de muestras y envío al laboratorio autorizado, denuncia obligatoria). Comprobado el diagnóstico, se creará en torno al emplazamiento afectado una zona de aislamiento de 1,5 km de radio, en la que no se permitirá el tránsito de material vivo, debiendo someterse todas las colmenas y asentamientos en ella ubicados a subsiguientes investigaciones y tratamientos acaricidas correspondientes. Las poblaciones de emplazamientos infestados no pueden movilizarse del lugar hasta tanto transcurran 48 horas de la aplicación de un producto acaricida oficialmente autorizado para uso en apicultura y siguiendo las instrucciones de empleo del mismo. Quedará constancia escrita del tratamiento seguido. Si es necesaria la recepción de colmenas desde otro establecimiento, todas las poblaciones del asentamiento afectado habrán sido sometidas antes, fehacientemente, al tratamiento medicamentoso. Los tratamientos deben combinarse con otros procedimientos que hacen a la estrategia de control de la enfermedad. (Ver punto Estrategias de Control de Varroosis) 4. Nosemosis 4.1. Características Es una enfermedad parasitaria intestinal, invasiva y contagiosa que afecta a las abejas adultas (obre ras, zánganos y reina). Es provocada por un hongo llamado Nosema apis y, más recientemente, Nosema ceranae. Su distribución es cosmopolita, aunque se la considera importante en países templados ya que está muy asociada a factores climáticos como la temperatura, humedad y precipitaciones. Provoca grandes daños económicos al reducir significativamente la capacidad de producción. 4.2. Daños directos Debido a las fuertes lesiones en el intestino medio, las abejas aparecen con el abdomen abultado, débiles, presentan inicialmente cierta excitabilidad, después letargo, pierden la capacidad de vuelo, se imposibilita el aguijoneo, sufren una notable parálisis y finalmente se mueren. Desde el punto de vista fisiológico, se pierde la incorporación de nutrientes, la concentración de lípidos y proteínas en hemolinfa y la vida media de las abejas afectadas se reduce de un 20 a 40%. Esto provoca una marcada disminución en la población de abejas adultas en la colonia. No afecta directamente a la cría. 4.3. Daños Indirectos Las consecuencias de la parasitación por Nosema, son de suma gravedad. Al estar lesionado el aparato digestivo, las abejas no pueden digerir adecuadamente los alimentos por lo que el consumo de las reservas aumenta entre un 20 y 30%. Esto lleva a una disminución en la producción de miel. Al no poder digerir los nutrientes necesarios para el correcto funcionamiento del sistema glandular, se pierde la actividad de las glándulas hipofaríngeas que terminan atrofiándose y dejan de ser funciona les, por lo tanto, la cría tampoco recibe la alimentación correcta en cantidad y calidad. Las abejas jóvenes mueren rápidamente, no pueden reemplazar a las pecoreadoras y se desencadena un desequilibrio en la población, la colonia se debilita y nunca llega a desarrollar. Debido al daño producido en el tracto digestivo, no se aprovechan convenientemente los alimento s ingeridos por la abeja, provocando una debilitación progresiva y generalizada de la colonia, que se manifiesta en la disminución de su vitalidad, disminución de la vida media de las abejas, de los movi mientos y la respuesta a los estímulos de los individuos afectados. Las reinas enfermas, además de estos síntomas, presentan una disminución en su actividad de postura. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 29 �La tolerancia a otras enfermedades es menor cuando las colonias están afectadas por Nosemosis, ya que algunos virus que ingresan al organismo de la abeja por vía digestiva encuentran el medio óptimo para su desarrollo en aquellas abejas cuyo intestino se encuentra alterado por acción del parásito (virus X, Y y Filamentoso). 4.4. Etiología Nosema apis y ceranae son organismos unicelulares, hongos microsporidios, caracterizados por un largo filamento polar arrollado (hasta 400 micras de largo). Son parásitos intracelular obligados. Presentan formas esporulares de resistencia llamadas esporos que miden entre 3,5 micras de ancho por 6 de largo (existen ligeras diferencias de tamaño según sea de apis o ceranae). Estos esporos son ovalados y refringentes al visualizarlos al microscopio óptico. Constituyen la forma infectante de la nosemosis. Los esporos de Nosema apis y ceranae viven como parásito en las células del epitelio del intestino medio y poseen una membrana gruesa conformada por tres capas que los hacen sumamente resistentes. En el agua congelada pueden permanecer resistentes durante años; en la miel tres meses; en el suelo y a la sombra, dos meses; y en la abeja en estadío de putrefacción, entre 10 y 20 días. Se destruyen por calentamiento a 59 ºC durante diez minutos en la miel y en el agua a 65 ºC durante un minuto. 4.5. Población susceptible La enfermedad afecta a abejas adultas, tanto a obreras, zánganos y reinas. Es muy importante la temperatura en la evolución del parasitismo de Nosema. Si ésta se mantiene entre 30 y 35 ºC, una sola espora es capaz de infectar todo el ventrículo. Aunque la dosis infectiva media es de aproximadamente 30 o 90 esporas por abeja. Cuando la infección alcanza su nivel máximo, el organismo de una sola abeja puede albergar entre 30 a 50 millones de esporas. 4.6. Patogenia Las esporas son ingeridas por las abejas desde el alimento o el agua contaminada, llegan al buche melario y a partir de aquí, después de atravesar el proventrículo, se dirigen al intestino medio después de unos diez minutos de haber sido ingeridos, donde favorecidas por los jugos intestinales, germinan. La germinación ejerce una presión interna en el esporo por la cual se produce la evaginación del filamento polar y gracias a éste, penetran a las células de la pared ventricular. A través del filamento, que es hueco, se libera el contenido del esporo e invaden la célula. Allí se multiplican y desarrollan con mucha rapidez utilizando los componentes de la célula parasitada. La infección se inicia en la parte posterior del ventrículo y de allí se disemina a la parte anterior. Una vez dentro de la célula, el parásito aumenta su tamaño, inicia la división celular y pasa por todos los estadíos (meronte, merozoíto, esporonte, esporozoíto) hasta finalizar con una enorme cantidad de nuevos esporos. Bajo condiciones óptimas, el desarrollo se completa entre 48 y 60 horas. Las células endoteliales afectadas por distintas fases del desarrollo del parásito se desprenden del revestimiento intestinal y caen a la luz del intestino liberando nuevos esporos y estadíos evolutivos de Nosema. Una parte de estos nuevos esporos infestan las células endoteliales vecinas sanas o regeneradas (autoinfección) y otra parte se elimina por medio de las heces al medio ambiente, reiniciando el ciclo en otras abejas. Como se mencionó anteriormente, la temperatura óptima para el desarrollo de las esporas es de 30 a 35 ºC. Si la temperatura se mantiene por encima de los 30 ºC, en dos semanas se infecta la totalidad del intestino medio de la abeja, provocando un gran daño celular. Se provoca la pérdida del tono 30 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �muscular del órgano lo que provoca la desaparición de sus estrías dejándolo fláccido. También afecta la coloración normal del ventrículo, tornando el color normal marrón verde amarillento a un color blanco lechoso. 4.7. Transmisión La transmisión tiene lugar de abeja a abeja durante los períodos de confinamiento en invierno, como resultado de la contaminación de los panales y los pisos por las deyecciones de las abejas. Sin embargo los esporos requieren temperaturas mayores a las del invierno para su potencial desarrollo por lo que recién a la salida del período invernal comienza su reproducción, afectando a un gran número de abejas. La transmisión dentro del apiario se produce principalmente por la deriva de abejas parasitadas, el pillaje de miel de colmenas enfermas, los alimentadores que se usan durante un largo período también pueden ser una fuente de transmisión del parásito. Todas las circunstancias que lleven al encierro y hacinamiento de la colonia, son factores que predisponen a la aparición de la enfermedad. 4.8. Diagnóstico No hay signos específicos de la enfermedad, sin embargo pueden visualizarse a campo algunos signos en las colonias afectadas. Algunos de ellos son comunes a las manifestaciones producidas por algunas enfermedades virales como ser el temblor, el abdomen abultado, la incapacidad de vuelo, etc. Otros también pueden ser compartidos con otras enfermedades de tipo disentérico como las deyecciones aguachentas en los techos y en las planchas de vuelo. Una manifestación al nivel de los panales de cría es la ausencia o deficiencia de jalea real en las celdas larvales. La observación a campo de los ventrículos, buscando las alteraciones en su tonalidad y color, nos puede dar una pauta de la presencia de Nosemosis, pero muchas veces se encuentran ventrículos aparentemente normales no porque no estén afectados por Nosema, sino porque la invasión de sus células recién comienza. Cualquiera de estos signos pueden encontrarse en las colmenas pero cuando la enfermedad alcanzó niveles extremos, por lo tanto, no podemos esperar a encontrarlos. Se debe tomar muestras y recurrir al diagnóstico de laboratorio. 4.8.1. Diagnóstico de laboratorio - Determinación del nivel de infestación. En todos los casos, las muestras deben ser abejas adultas, tomadas de la piquera. Se toman muestras individuales, es decir, una muestra por colmena y de al menos el 10 % de las colmenas que conforman el colmenar. Se envían en formol 4% o refrigeradas, dependiendo de los requerimientos del laboratorio. Comúnmente se utilizan dos métodos para determinar el nivel de infestación por Nosema. En ambos métodos se macera el material en estudio, se lo procesa y observa en el microscopio óptico para realizar el conteo de esporos. Ambas técnicas son válidas siempre que se relacionen los resultados obtenidos con el comportamiento de la parasitosis en la región, época del año, observaciones a campo, etc. a) Método de Cantwell (1970) modificado por Fries (1984) Se necesitan 100 abejas mayores de 10 días de edad, tomadas de la piquera, conservadas en formol 4%, el cual debe cubrir la totalidad de las abejas. Utilizando formol, la muestra se conserva por meses sin alterar el análisis posterior. Según la cantidad promedio de esporos, por abeja, el resultado se expresa en nivel de infestación: débil, mediano o fuerte. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 31 �Clasificación según resultado del conteo Nº de esporas por abeja Nivel de infestación Entre 0 y 500.000 DEBIL Entre 500.000 y 1.000.000 MEDIANO Más de 1.000.000 FUERTE b) Método de Cornejo-Rossi Son suficientes 35 abejas, mayores de 10 días de edad, tomadas de la piquera, conservadas en frío, con orificios en la tapa del frasco. Según la cantidad de esporos por mm 3, el resultado se expresa en niveles de infestación de 1 a 5. Clasificación según Cornejo-Rossi Nivel de infestación Nº de esporas por mm3 Nivel 1 10.000 a 100.000 Nivel 2 100.000 a 600.000 Nivel 3 600.000 a 800.000 Nivel 4 800.000 a 1.000.000 Nivel 5 Superior a 1.000.000 4.9. Tratamiento y Control Debido a la extensión de ciertas prácticas de manejo para la profilaxis de otras enfermedades como la loque americana, mediante la eliminación del material inerte de las esporas de esta bacteria, se eliminan también los de Nosema. La decisión de aplicar un tratamiento dependerá del nivel de infestación arrojado por cualquiera de las dos técnicas de laboratorio. El resultado del recuento debe relacionarse con las condiciones de producción, estado general de las colmenas y medio ambiente, como los aspectos de manejo, estrés nutricional, ciclos de floración, etc. Generalmente, aplicar las prácticas preventivas (Punto 4.10) resulta suficiente para evitar la aparición de la enfermedad, no obstante, ante altos niveles de infestación todas las colonias del colmenar deberán recibir tratamiento medicamentoso. Para el tratamiento se debe administrar algún producto veterinario aprobado por SENASA, elaborado con el principio activo fumagilina, antibiótico que hasta el momento resultó ser el que presenta mayor eficacia. 4.10. Prevención Es posible prevenir la aparición de la enfermedad o lograr mantener niveles de infección de Nosema por debajo de los límites que llegan a afectar el correcto desarrollo de las colonias y la disminución en la producción de miel debido el aumento del consumo de las reservas. Entre las medidas preventivas se recomienda: Renovar material anualmente: esterilizar el material al inicio de cada temporada, reemplazar los panales de cría frecuentemente, eliminando los panales negros, etc. Controlar la temperatura y la humedad: evitar la sombra en forma permanente, evitar formar núcleos al final de temporada, evitar la inundación y condensación de agua dentro de las colmenas, etc. Manejo nutricional: asegurar la disponibilidad de polen a fin de lograr la acumulación de reservas proteicas para el invierno, asegurar una distribución racional de los jarabes azucarados durante el invierno. Ingreso a la invernada: procurar salir del otoño con un excelente estado sanitario y, en lo posible, con reinas nuevas. 32 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Determinar periódicamente el nivel de infestación: muestrear el 10% de las colmenas del apiario, de manera individual, en otoño y en primavera, evaluando en cada caso, la aplicación o no de tratamiento medicamentoso. 4.11. Procedimiento ante la sospecha En caso de sospecha o denuncias, se pondrán en práctica las medidas generales habituales para la prevención de epizootias (aislamiento del asentamiento, toma de muestras y envío al laboratorio autorizado, denuncia obligatoria). La investigación consistirá en recolectar muestras de abejas adultas (tomadas de la piquera) y enviarlas al laboratorio para el diagnóstico cuantitativo. De acuerdo a los resultados y otros factores ambientales, se determinará la necesidad de aplicar un tratamiento. Comprobado el diagnóstico, se creará en torno al emplazamiento afectado una zona de aislamiento de 1,5 km de radio, en la que no se permitirá el tránsito de abejas, debiendo someterse todas las colmenas y asentamientos en ella ubicados a subsiguientes investigaciones y tratamientos correspondientes. 5. Ascophaerosis 5.1. Características Es una enfermedad micótica provocada por un hongo de la especie Ascophaera que afecta a las larvas de las abejas entre los 3 y 4 días de edad. Fundamentalmente a las crías de zánganos, en segundo término a las de obreras y ocasionalmente a las que darán origen a las reinas. También se la llama Cría Encalada, Cría de Tiza, Cría Calcárea o Chalkbrood. Los hongos por sí solos no causan daño y difícilmente maten a la colonia afectada. La cría yesificada se manifiesta por la presencia de factores predisponentes como la humedad, bajas temperaturas, mala ventilación y escasez de reservas proteicas. Las colonias débiles y pequeñas son las más susceptibles pues en ellas aparecen todos estos factores. Existen otros factores de tipo yatrogénico (provocados por el apicultor) como el uso indiscriminado de antibióticos que afecta la flora banal de las abejas provocando un desequilibrio que aprovecha el hongo para infectar, y la falta de renovación de panales, entre otros. 5.2. Presentación Está presente en prácticamente todos los países en los que se practica la apicultura, exceptuando algunos de Centro América en los que aún no se ha descripto. En Argentina se la detectó por primera vez en el año 1980. Si bien esta enfermedad, no se la considera importante, últimamente ha aumentado la incidencia, convirtiéndose en un problema de cierta relevancia económica. 5.3. Etiología El hongo Ascophaera fue descubierto a comienzos del siglo pasado aunque recién fue descripto en 1921 bajo otros nombres. Recién en el año 1955 Spiltoir y Olive reclasificaron al hongo dándole el nombre de Ascophaera. Este hongo pertenece a la clase de los aschomicetos, que se reproduce heterotálicamente cuando los micelios entran en contacto entre sí, originando los esporos que son la forma infectante de la enfermedad. Los micelios son de color blanco mientras que los esporos lo son oscuros. Se han descripto hasta el momento unas ocho especies de hongos que pueden aparecer en la colmena. Muchas de ellas son saprófitas que viven a expensas del alimento larval o bien de las deyecciones, y Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 33 �otras aparecen como patógenas como es el caso de Ascophaera y los Aspergillus (fumigatus, niger, flavus) agentes causales de la Stone Brood o Cría de Piedra. Se han descripto hasta hoy, dos variedades del hongo Ascophaera con poder patógeno sobre Apis mellifera: Ascophaera major (Skou, 1972) cuyos esporos miden de 3 a 4 micras de diámetro; y el Ascophaera apis (Spiltoir y Olive, 1955), de esporas más pequeños, entre 1 y 2 micras de diámetro. Ambas especies son capaces de producir los síntomas de la enfermedad, aunque la más común es la variedad apis. Estas variedades de Ascophaera no pueden reproducirse entre sí. 5.4. Patogenia El agente ingresa a la colmena acarreado por las abejas pecoreadoras. También se ha comprobado que los ácaros varroa serían portadores de esporos fúngicos. Sin embargo, la sola presencia del hongo en las colmenas no significa que se desarrollará la enfermedad. Para que la Cría Yesificada se manifieste, hace falta que se presenten los factores predisponentes antes mencionados, principalmente humedad y temperatura que favorezca el crecimiento del hongo (entre 20 y 30ºC). Las larvas de mayor susceptibilidad son las de 3 y 4 días de edad, principalmente las de zánganos, no por una cuestión biológica, sino simplemente porque se encuentran en la periferia de los marcos donde la temperatura por lo general es menor. Las larvas ingieren los esporos inoculados por las nodrizas junto con el alimento larval. Al ser ingeridos, una vez en el intestino medio, específicamente en el extremo posterior, germinan y se inicia el crecimiento del micelio. El micelio atraviesa la pared intestinal y buscando el oxígeno necesario para su desarrollo, rompe el extremo posterior de la larva dejando por lo general inafectada la cabeza. Cuando esto sucede se forman los cuerpos fructíferos en la superficie exterior de la larva muerta. Las Ascophaeras no se multiplican en abejas adultas. Las larvas mueren por ascophaerosis, por lo general, 6 o 7 días después de infectadas, cuando las celdas ya fueron operculadas. Los cadáveres aparecen al principio con un aspecto esponjoso y tume factas, adquiriendo la forma hexagonal de la celda. Más tarde se encogen y endurecen, tomando la consistencia y el aspecto de un pedazo de yeso o tiza. Una vez que las larvas mueren y endurecen, los esporos se agrupan en ascos y a su vez se encierran en quistes que tienen un diámetro entre 50 y 140 micras. Los esporos son muy resistentes en el medio ambiente, pueden sobrevivir hasta 15 años. 5.5. Factores predisponentes Humedad y temperatura: Exceso de humedad, bajas temperaturas, cambios bruscos de temperatura, mala ventilación, etc. Escasez de reservas proteicas. Colonias débiles y pequeñas: desequilibrio entre crías y nodrizas. Situaciones de estrés dentro de la colmena: falta de miel, carencia de polen, cese en la entrada de néctar, etc. Uso indiscriminado de antibióticos: provoca un desequilibrio afecta la flora banal de las abejas provocando que aprovecha el hongo para infectar. Manejo: falta de renovación de panales de cría. 5.6. Cuadro clínico Como ya se ha mencionado, lo más probable es que la enfermedad se presente en aquellas colmenas débiles o pequeñas. Sin embargo si las condiciones ambientales son óptimas para el desarrollo del 34 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �hongo, puede afectar, aunque con menor gravedad, cualquier tipo de colmena. Es una enfermedad estacional. La época en que empiezan a visualizarse los signos es al principio de la temporada, cuando se inicia la postura y el número de abejas aún no es suficiente para atender las crías, regular la temperatura y ventilar todo exceso de humedad. Antes de abrir las colmenas, podemos detectar la enfermedad por la presencia de momias en las piqueras, consecuencia del comportamiento de limpieza de algunas colonias. En los marcos de crías se ven larvas muertas momificadas, operculadas o no. Algunas momias presentan un color blanquecino correspondiente a los micelios, mientras que otras tienen un color oscuro que indica la presencia del hongo en su estado infectante, el de esporo. En las colonias gravemente afectadas, encontramos muchas celdas con restos larvales duros y sueltos. Al agitar estos marcos reproducimos un ruido característico. 5.7. Diagnóstico El diagnóstico clínico a campo es suficiente para determinar la presencia de la enfermedad. Sin embargo hay posibilidades de realizar en laboratorio un frotis húmedo para visualizar los quistes y los esporos. También puede confirmarse el diagnóstico por medio de cultivos del material patógeno en laboratorio especializado, en los que desarrollarán abundantes cuerpos fructíferos. 5.8. Tratamiento y prevención No existe un tratamiento específico para el control de esta enfermedad. Por lo general se produce la curación espontánea de la colmena cuando la colonia logra eliminar las momias y se equilibran los principales factores que desencadenaron la enfermedad. Dada la poca importancia relativa de la Cría Yesificada, no se han realizado muchos ensayos que permitan determinar la eficacia de los productos químicos para tratarla. Por otro lado muchos intentos han fracasado por la susceptibilidad de la abeja a los productos y la inestabilidad de los mismos. Hay muchos productos antifúngicos pero que a la vez inhiben la formación de quitina en la abeja por lo que no se recomiendan. Durante los últimos años se han ensayado fumigaciones con algunos desinfectantes como el óxido de etileno en diferentes concen- traciones (2% durante 24 hs.; 3% durante 6 hs. y 7% durante 1 hora), amonios cuaternarios, formal- dehído al 4%, Timol al 0,7%, ácido acético glacial al 80% e inclusive simples soluciones jabonosas. Más importante que los tratamientos con productos químicos es adoptar medidas de manejo que orienten a reducir los factores de riesgo y la carga patógena, como al mantenimiento de la salud general de la colonia. Dentro de las principales pautas de manejo, tanto para tratar como para prevenir la enfermedad, se pueden mencionar las siguientes: Quemar los panales afectados y retirar las momias de los pisos que actúan como reservorio de los esporos fúngicos. Eliminar de la cámara de cría los panales viejos. No intercambiar panales entre colmenas enfermas y sanas. Rociar jarabe estimulante sobre los marcos de cría afectados para favorecer la limpieza de las momias dentro de las celdas. Regular el espacio de la colmena para evitar la condensación de humedad y lograr la temperatura óptima. Suministrar suplementos proteicos si las reservas de polen son insuficientes. Manual de Procedimientos / Trámites en apicultura 35 �Evitar el enfriamiento de la cría: No colocar marcos de cría operculada en colmenas débiles o levemente afectadas, no retirar abejas adultas de colonias enfermas y débiles, ni darles crías extra para desarrollar, evitar revisar colmenas y núcleos en días fríos. Orientar la piquera de manera de evitar los vientos fríos. Cambiar las reinas de colmenas afectadas por reinas nuevas. La selección de material vivo por aptitud de limpieza, al igual que en la prevención de otras enfermedades apícolas, hace a las colonias más tolerantes a la cría yesificada. 6. Apiarios abandonados La denuncia de apiarios abandonados será motivo de alerta sanitario pues resultan un potencial riesgo de difusión de enfermedades. Deben ser inspeccionados por la autoridad veterinaria o por quien ésta designe y acompañe. Tener en cuenta que debe confirmarse la veracidad sobre el abandono de las colmenas antes de decidir el destino de las mismas. En caso de encontrar colmenas enfermas se procederá a su destrucción o saneamiento. Las colmenas sanas podrán ser donadas de acuerdo al criterio del veterinario oficial, posibilidades y recursos disponibles. 7. Enfermedades Exoticas 7.1 Introducción Una enfermedad exótica es una enfermedad que nunca fue detectada en una región o país determinado. De la cual no fueron observados sus signos clínicos ni su agente etiológico. Las plagas parasitarias descriptas en esta sección son consideradas exóticas en nuestro país. Su condición de “exóticas”, sumado a la poca información sobre su comportamiento, hace que se desconozca la magnitud de los daños que ocasionaría la aparición de alguna de ellas en nuestro país. En caso que esto ocurriese, solamente una rápida y efectiva reacción de la comunidad junto a la autoridad sanitaria podrían minimizar las gravísimas consecuencias. A través de la Resolución 422/03, las enfermedades exóticas de todas las especies animales se encuentran incorporadas al grupo de enfermedades referidas en el artículo 4º del Reglamento General de Policía Sanitaria, aprobado por Decreto de fecha 8 de noviembre de 1906, reglamentario de la Ley Nº 3959. El mismo, dice: “Todo propietario o persona que, de cualquier manera, tenga a su cargo el cuidado o asistencia de animales atacados por enfermedades contagiosas o sospechosos de tenerlas, está obligado a hacer inmediatamente la declaración del hecho a la autoridad local que los reglamentos sanitarios determinen”. En este caso, la autoridad sanitaria será la Oficina Local SENASA, el Programa de Control de Enfermedades, autoridades municipales o provinciales. El hecho de no denunciar o no notificar a la autoridad sanitaria este evento (sospecha o presencia) no significa que la enfermedad o plaga desaparezca o no exista. Por el contrario, impide la realización de las acciones sanitarias necesarias para evitar la difusión del foco. Las consecuencias sanitarias no sólo se manifestarán en el colmenar detectado inicialmente, sino en colmenares de los alrededores, inclusive hasta en todo el territorio nacional. Como se mencionó anteriormente, el ingreso a nuestro país de alguna de ellas podría ocasionar graves consecuencias sanitarias y pérdidas económicas incalculables. Además, esta nueva condición perjudicaría fuertemente la comercialización de nuestros productos apícolas en el exterior. 36 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia En caso de sospechar o detectar la presencia de alguna de estas plagas parasitarias se procederá de acuerdo a la legislación vigente sobre la notificación de enfermedades denunciables (Ley Nº 3959 del año 1906 y la Res. SENASA 422/02): Notificación: se realizará de forma inmediata a la Oficina Local del SENASA, al Programa de Control de Enfermedades de las Abejas de SENASA Central, a las autoridades sanitarias provinciales o municipales. Inspección oficial del apiario: se realizará una investigación epidemiológica exhaustiva para identificar a todos los apiarios expuestos al riesgo. Interdicción e inmovilización: Se efectuará el aislamiento, vigilancia, identificación de las colmenas enfermas, saneamiento. Asimismo, no se permitirá la salida ni entrada de ningún material apícola vivo ni materiales inertes en la zona o región declarada como infectada. Comunicación del evento a las otras regiones Toma de muestras: En todos los casos se tomarán muestras, se acondicionarán y enviarán al Laboratorio Central de SENASA Inspección e inmovilización de apiarios vecinos: No se permitirá el movimiento, salida o entrada de material vivo ni material inerte dentro de un radio de 3 km a partir del foco primario. Se inspeccionarán todos los apiarios dentro de ese radio. Confirmación del diagnóstico Saneamiento: en caso de confirmarse el diagnóstico, se procederá a la destrucción in situ del material infectado. Según el artículo 24º de la Ley, el productor tendrá derecho a exigir una indemnización en dinero, igual al valor de los animales o materiales perdidos. También se deberá destruir o desinfectar toda construcción u objetos que hayan estado en contacto con las colmenas enfermas o que sirvan como vehículo de contagio. Levantamiento de la interdicción: sucederá en tiempo variable, lo decidirá el Servicio Veterinario según la enfermedad, período de incubación, permanencia en el ambiente, cantidad de colmenas afectadas, resultado de las inspecciones, etc. 7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae 7.3.1 Características generales y distribución Tropilaelaps clareae es un ectoparásito que afecta a la cría de las abejas. Son ácaros que dependen de la cría de las abejas para alimentarse y reproducirse. No son capaces de alimentarse de las abejas adultas debido a que sus quelíceros son primitivos y no están desarrollados para ello. Por ese motivo, en áreas del mundo donde hay corte de postura, los ácaros no pueden sobrevivir, ya que no resisten más de 7 días sin la presencia de cría. Por lo tanto, la mayor incidencia de esta parasitosis se presenta en países con climas cálidos que mantienen todo el año, o gran parte del año, cría en las colmenas. Se encuentra ampliamente distribuido en el sudeste asiático, donde parasita a su huésped original, Apis dorsata. Fue descripta por primera vez en Apis mellifera en Filipinas (Delfinado y Baker) en el año 1961 y ha sido encontrada también en Afganistán, China y otros países asiáticos. Hasta el momento, no fue notificada su presencia en Occidente. 7.3.2 Agente etiológico Son ácaros de color entre castaño y castaño oscuro y se encuentran cubiertos de pelos. Poseen una parte dorsal dura, donde se insertan los pelos, y una zona ventral compleja, que es blanda y que Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 37 �contiene los aparatos bucal, respiratorio, excretor y reproductor. La hembra adulta mide 1 mm de largo por 0,5 mm de ancho. Se hincha considerablemente cuando se alimenta. Normalmente mide 0,3 mm y llega a aumentar hasta 1 mm. Los machos son tan grandes como las hembras aunque más blandos en su parte superior. 7.3.3 Ciclo biológico El ciclo reproductivo es similar al del ácaro Varroa destructor. Desde el estadio de huevo a adulto transcurren seis días. La hembra Tropilaelaps, luego de una breve etapa forética, ingresa a la celda a punto de ser operculada. El primer huevo es puesto aproximadamente a las 48 hs. después de producirse el cierre de la celda. Las hembras colocan entre 1 a 4 huevos por celda. Cuando la abeja emerge, los ácaros hembras fecundadas salen junto con ella, pero ante la imposibilidad de alimentarse de la abeja adulta, ingresan inmediatamente a una nueva celdilla, continuando así su reproducción. No existe marcada preferencia por las celdas de la cría de los zánganos, como ocurre con el ácaro Varroa destructor. El hecho de no poder fijarse a la abeja, sumado a la dependencia de la cría hace que la etapa forética sea muy breve (Promedio: 1,6 días) 7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito Como se mencionó anteriormente, Apis dorsata es el huésped original. En general, debido al equilibrio huésped-parásito, las infestaciones en este biotipo suelen ser leves. La abeja es capaz de destruir al ácaro por sus propios medios, siendo frecuente encontrarlos muertos en el piso de la colmena. En cambio, el daño que podría ocasionar en una colonia de A. Mellifera es severo. En abejas adultas podrían verse consecuencias en infestaciones menores a las que necesita la varroasis para manifestarlas. Por este motivo, en regiones donde conviven ambas enfermedades predominaría la infestación con Tropilaelaps. 7.3.5 Signos clínicos Machos y hembras adultos pueden observarse fuera de las celdas de cría, moviéndose libremente sobre los cuadros y piso de la colmena. Son fácilmente desprendidos y observados si se sacude el material. Signos tempranos de la infestación suelen pasar desapercibidos, pero el crecimiento de la población de ácaros alcanza rápidamente niveles que provocan una alta mortandad de colmenas. Cuando la infestación es grave, las larvas se encuentran morfológicamente alteradas. Las pupas infectadas pueden presentar manchas oscuras, principalmente en las extremidades. La cría presenta una distribución salteada y las adultas nacen con signos similares a los provocados por Varroa destructor: abdomen acortado, alas y patas deformes, etc. 7.3.6 Transmisión La transmisión se produce a través de: pillaje, deriva, intercambio de material vivo, movimiento de abejas y crías, etc. El ácaro también puede actuar como vector para la transmisión de agentes virales. 7.3.7. Diagnóstico 7.3.7.a Diagnóstico clínico Al tratarse de una enfermedad exótica, resulta de suma importancia reconocer la enfermedad lo antes posible. El diagnóstico clínico consiste en la observación detallada de los cuadros de cría, los marcos, el piso, piso-trampa, interior de las celdas (desopercular), en busca de la presencia del parásito adulto. Por otro lado, en infestaciones graves, además de observar el ácaro se evidenciarán los signos clínicos antes descriptos. 38 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7.3.7.b Diagnóstico químico Es similar al efectuado para la detección de Varroa destructor. Luego de la aplicación de un producto químico adecuado se recolectan los parásitos que caen en una bandeja con vaselina previamente colocada en el piso. 7.3.7.c Diagnóstico diferencial En todos los casos se debe realizar el diagnóstico diferencial con Varroa destructor, con el cual existen evidentes diferencias morfológicas. 7.3.8 Toma de muestras Para la confirmación del diagnóstico de Tropilaelaps clareae se enviará un trozo de panal qu e contenga la cría con el parásito sospechoso en un frasco de boca ancha con formol al 4% para su identificación taxonómica. En caso de recolectar ácaros se conservarán en agua y alcohol al 50% o formol 4%. 7.3.9 Tratamiento 7.3.9.a Manejo sanitario El control de este parásito apuntará a la necesidad que tiene el ácaro de alimentarse de la cría. Una vez desaparecida ésta, los ácaros morirán en un tiempo variable. Las colmenas infestadas se tratarán mediante la remoción de la cría: Se colocan los cuadros con cría en un nuclero y luego de que emerjan las abejas, se dejan transcurrir seis días más para devolverlas a la colonia. Otra alternativa es enjaular las reinas durante 21 días. Se recomienda realizar esta maniobra al final de la entrada de néctar de manera de minimizar las pérdidas. 7.3.9.b Control químico Los químicos que controlan Varroa destructor son adecuados para Tropilaelaps spp, aunque los tratamientos mediante fumigación no son aconsejables porque sólo afectan al ácaro en fase forética, no siendo muy efectivos en el caso de Tropilaelaps. Aparentemente el ácido fórmico resulta ser el principio activo más efectivo para el control químico debido a su capacidad para penetrar a través de los opérculos. 7.4 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas) 7.4.1 Características generales y distribución Aethina tumida es un coleóptero, también llamado “Pequeño escarabajo de las colmenas”. Es originario de las regiones tropicales y sub-tropicales de Africa. Fuera de Africa fue detectado en los Estados Unidos (Georgia y Florida - año 1998), en Egipto (2000), en Australia (Sidney - 2002) y Canadá (2003). Una parte fundamental de su ciclo reproductivo transcurre dentro de las colmenas de las abejas provocando la destrucción total de la misma. Son escarabajos voladores de color negro que miden entre 5 y 7 mm de largo y de 3 a 4,5 mm de ancho. 7.4.2 Ciclo biológico El ciclo biológico tiene una duración que varía entre 31 a 81 días. El escarabajo adulto ingresa volando a las colmenas, atraído por la miel y la cría. Allí encuentra el lugar y el alimento necesario para iniciar su ciclo reproductivo. Colocan uno o varios huevos (similares a los de las abejas) en las celdas de los panales. Eclosionan larvas alargadas y de color blanquecino que llegan a medir hasta 10 mm de largo. Las larvas cavan galerías en los panales mientras consumen miel, cría y polen. Luego de 10 a 16 días, el desarrollo de la larva finaliza, pasando al estadio de pupa. Esta abandona la colmena, dejándose caer y enterrándose en la tierra. Durante 3 a 4 semanas, enterrada aproxi- Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 39 �madamente entre 10 y 20 cm de la superficie, la pupa sufrirá su metamorfosis dando como resultado a un adulto. Al desenterrarse, el escarabajo adulto es de color amarillento, luego se convierte en rojizo, marrón claro, luego marrón oscuro hasta llegar a negro. Estos adultos copularán, y las hembras fecundadas reiniciarán el ciclo ingresando a nuevas colmenas. 7.4.3 Diagnóstico Durante la revisación de la colmena pueden observarse una gran cantidad de escarabajos moviéndose a gran velocidad por los panales, en el piso de las colmenas, en las zonas más oscuras o entre los cabezales de los marcos. El diagnóstico consiste en la observación del escarabajo adulto, sus huevos, sus larvas y/o los daños que ocasiona en la colmena. 7.4.4 Daños Cuando las larvas comienzan a cavar galerías y destruir los cuadros, derraman la miel que, al mezclarse con sus deyecciones, fermenta y despide un olor similar a naranjas en descomposición que resulta repelente para las abejas. La colonia atacada, finalmente, abandona la colmena. 7.4.5 Toma de muestras A los fines de realizar la identificación taxonómica se deberá enviar al laboratorio el/los ejemplares sospechosos en un recipiente que contenga: alcohol y agua 50% o formol al 4%. 7.4.6 Transmisión El escarabajo puede trasladarse a través de su vuelo, por trashumancia, intercambio de material vivo o inerte, comercialización de frutas (kiwi, bananas, melón) y verduras, a través del comercio de plantas con tierra. 7.4.7 Control En los países que poseen esta plaga, el cumafós parece ser hasta el momento, el único principio activo capaz de destruir a los escarabajos. Sin embargo es conveniente atenerse a medidas profilácticas. 7.4.8 Medidas preventivas Mantener la limpieza alrededor de las colmenas: desmalezado, higiene general del apiario. No apilar alzas con miel con aberturas que permitan la entrada del escarabajo (sin abejas guardianas se facilita la introducción) Evitar falsas piqueras Seleccionar líneas genéticas con alto comportamiento higiénico Remover la tierra cercana a las colmenas con el fin de interrumpir el ciclo del escarabajo. Información Adicional Puede obtenerse información actualizada (listado de productos, novedades, legislación aplicable, etc. ) de las páginas web de SENASA y SAGPyA (www.senasa.gov.ar y www.alimentosargentinos.gov.ar respectivamente). O bien con los responsables del Programa de control de Enfermedades de las Abejas al siguiente correo electrónico: apicultura@senasa.gov.ar 40 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 41 �ANEXO III INSCRIPCION EN EL REGISTRO DE ESTABLECIMIENTOS HABILITADOS PARA LA PRODUCCION Y COMERCIALIZACION DE MATERIAL APICOLA VIVO RENAPA N° Fecha: ............../................./ ................... PROPIETARIO Nombre y Apellido o Razón Social: .................................................................................................................................. DNI/CUIL/CUIT: ....................................................... Domicilio: ........................................................................................................................................................................ Pdo./Dpto.: ..................................................................Cod.Postal: ................... Provincia: .............................................. Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ ESTABLECIMIENTO Razón Social: ................................................................................................. CUIT: ....................................................... Ubicación: ........................................................................................................................................................................ Pdo./Dpto.: ..................................................................Cod.Postal: ................... Provincia: .............................................. Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ Cantidad de Apiarios Afectados a la Producción de Material Vivo: ..................................... TIPO DE PRODFCCION Reinas Celdas Reales Núcleos Paquetes Otros: ................................ ESTIMACION DE LA PRODFCCION ANFAL Reinas Celdas Reales Paquetes Otros: ................................ Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ CORRESPONSABLE SANITARIO Inspector Sanitario Apícola: ............................................................................................................................................. DNI N° ...................................................................... Acreditación SENASA N° .......................................... .............................................................................. Firma del Interesado C.218 Aclaración: ................................................................ �ANEXO V INSPECCION SANITARIA ESTABLECIMIENTO APICOLA DE PRODFCCION Y COMERCIALIZACION DE MATERIAL VIVO INSPECCION N° Lugar y Fecha: ................................................................. ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................................... Apiario N°: .............................................................. Cantidad de Colmenas ............................................. Habilitación N° ........................... Propietario:.................................................................................................................... DIAGNOSTICO CLINICO A CAMPO Loque Americana Cria Yesificada Loque Europea Varroasis Nosemosis Otras: ............................. Cantidad de Colmenas Afectadas (aclarar enfermedad y totalidad de colmenas inspeccionadas): ........................................ ........................................................................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... ENVIO DE MFESTRAS A LABORATORIO ........................................................................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ................................................................................................................................................................................................ ............ ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ INSPECTOR ACTFANTE OFICINA LOCAL DE SENASA .............................................................................. Firma C.219 Aclaración: .................................................................................... Firma y Sello del Responsable ................................................................ Acreditación SENASA N° ......................................... �ANEXO VI ENVIO DE MUESTRAS ESTABLECIMIENTO APICOLA DE PRODFCCION YCOMERCIALIZACIONDE MATERIAL VIVO RENAPA N° Lugar y Fecha: ........................................................................ ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................................... Propietario:........................................................................................................................................................................ Dirección: ........................................................................................................................................................................ Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ MFESTRAS Números: .......................................................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ DIAGNOSTICO LABORATORIAL ENFERMEDAD: ............................................................................................................................................................................... RESULTADO: Positivo Negativo Métodos de Diagnóstico Empleados: ............................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................................... FECHA DE EMISION ................./......................................../.......................... Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ......................................................................................................................................................... ................................................... ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ INSPECTOR SANITARIO .............................................................................. TECNICO ACTFANTE DILAB .............................................................................. Firma Firma Aclaración: ................................................................ Aclaración: ................................................................ DNI N° ............................................. C217 DNI N° ............................................. Remitir Resultaao a la Oficina Local Corresponaiente a la Jurisaicción ael Establecimiento DQCUMENTQ VALIDQ PQR 30 DIAS A PARTIR DE LA FECHA DE TQMA DE MUESTRA �ANEXO V NOTIFICACION DE INGRESO DE MATERIAL APICOLA VIVO AL ESTABLECIMIENTO RENAPA N° Lugar y Fecha: ............................................................... ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................. Habilitación N°: ................................................................................................................................................................ Propietario o Responsable: ................................................................................................................................................ MATERIAL VIVO INGRESADO Indique cantidad, tipo y subespecie: ................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................ .......................................................................................................................................................................................... Fecha de Ingreso: ............../................../.............. Origen del Material: ............................................................................. Importación Mercado Interno País de Origen: ............................................. Establecimiento Productor: .......................................................................... Localidad: .......................................................................................................... Provincia: .............................................. Nombre del Propietario o Responsable: .............................................................................................................................. EN CASO DE CORRESPONDER A MATERIAL IMPORTADO, SOLO INDIQFE EL PAIS DE ORIGEN Y EL NOMBRE DEL ESTABLECIMIENTO PRODFCTOR Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ .............................................................................. Firma del Propietario o Responsable Aclaración: ................................................................ C.220 �Inspección correspondiente a OTOÑO/PRIMAVERA del Año CANTIDAD DE Apicultores Asesorados Colmenas Inspeccionadas Apiarios Inspeccionados COLMENAS ENFERMAS Loque Americana Cantidad Total Varroasis Otras: .......................................................................................................................................................................................................................................................... ............. TOMA Y ENVIO DE MUESTRAS Muestras Emitidas Loque Americana Varroasis ..................................................................................................................... Lugar y Fecha Nosema Otras ............................................................................... Firma y Sello Inspector �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Enfermedades de las abejas: Manual de procedimiento. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2020 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Sanidad Animal Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0104 Abstract A summary of the resource. El presente documento se dirige principalmente a los agentes sanitarios acredita-dos (Inspector Asesor Sanitario Apícola), veterinarios de las Oficinas Locales de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, profesionales privados, sectores interesa-dos y a las autoridades provinciales, municipales y nacionales locales; por tanto, se centra en aspectos operativos del Programa Nacional de Control de Enferme-dades de las Abejas. Table Of Contents A list of subunits of the resource. 1. LOQUE AMERICANA 1.1 Características 1.2 Presentación 1.3 Patogenia 1.4 Diagnóstico 1.5 Cuadro clínico 1.6 Etiología 1.7 Proceso epizoótico 1.8 Reservorios de gérmenes 1.9 Transmisión 1.10 Población hospedadora 1.11 Prevención y lucha 1.12 Tratamiento 1.12.1 Recuperación del Material Vivo a. Trasiego Directo b. Trasiego Doble 1.12.2 Recuperación del Material Inerte a. Calor - Fuego Directo b. Calor - Inmersión c. Calor y Presión d. Químicos e. Irradiación 1.12.3 Eliminación del material inerte 1.12.4. Tratamiento medicamentoso 1.13. Procedimientos ante la denuncia 1.14. Procedimiento de atención de focos 1.15. Toma y remisión de muestras 2. LOQUE EUROPEA 2.1 Características 2.2 Presentación 2.3 Diagnóstico 2.4 Etiología 2.5 Reservorios de gérmenes 2.6 Población hospedadora 2.7 Prevención y lucha 2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos 3. VARRAOSIS 3.1 Características 3.2 Presentación 3.3 Daños Indirectos 3.4 Etiología 3.5 Ciclo Biológico 3.6 Cuadro clínico 3.7 Diagnóstico 3.7.1 Prueba del frasco 3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso 3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría 3.7.4 Método químico 3.8 Difusión 3.9 Reservorios de parásitos 3.10 Transmisión 3.11 Población hospedadora 3.12 Prevención y lucha 3.13 Tratamiento 3.13.1 Control químico 3.13.2 Formas de acción de los acaricidas 3.13.3 Formas de administración 3.14 Control de la Varroasis 3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis 3.14.2 Plan estratégico 3.14.2.a Rotación de los Principios Activos 3.14.2.b Evitar los Residuos 3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación 3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado 3.15 Plan de Curas 3.16 Procedimientos ante la denuncia 3.17 Procedimientos ante sospechas 4. NOSEMOSIS 4.1. Características 4.2. Daños directos 4.3. Daños Indirectos 4.4. Etiología 4.5. Población susceptible 4.6. Patogenia 4.7. Transmisión 4.8. Diagnóstico 4.9. Tratamiento y Control 4.10. Prevención 4.11. Procedimiento ante la sospecha 5. ASCOPHAEROSIS 5.1. Características 5.2. Presentación 5.3. Etiología 5.4. Patogenia 5.5. Factores predisponentes 5.6. Cuadro clínico 5.7. Diagnóstico 5.8. Tratamiento y prevención 6. APIARIOS ABANDONADOS 7. ENFERMEDADES EXOTICAS 7.1 Introducción 7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia 7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae 7.3.1 Características generales y distribución 7.3.2 Agente etiológico 7.3.3 Ciclo biológico 7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito 7.3.5 Signos clínicos 7.3.6 Transmisión 7.3.7. Diagnóstico 7.3.7.a Diagnóstico clínico 7.3.7.b Diagnóstico químico 7.3.7.c Diagnóstico diferencial 7.3.8 Toma de muestras 7.3.9 Tratamiento 7.3.9.a Manejo sanitario 7.3.9.b Control químico 7.4 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas) 7.4.1 Características generales y distribución 7.4.2 Ciclo biológico 7.4.3 Diagnóstico 7.4.4 Daños 7.4.5 Toma de muestras 7.4.6 Transmisión 7.4.7 Control 7.4.8 Medidas preventivas INFORMACIÓN ADICIONAL ENFERMEDADES DE LAS ABEJAS https://biblioteca.senasa.gov.ar/files/original/e9267bc9eab63dd97a6c87ddc46a3a63.pdf 36938b47e0a7d024c2a92f38c01e7c01 PDF Text Text Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Enfermedades de las abejas M a n u a l de P r o c e d i m i e n t o s Dr. Marcelo de la Sota Dirección de Luchas Sanitarias Dr. Mariano Bacci Programa de Control de Enfermedades de las Abejas Dirección Nacional de Sanidad Animal Buenos Aires, 2005 Versión actualizada 2020 �SENASA Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Av. Paseo Colón 367 C1063ACD Ciudad de Buenos Aires - República Argentina. Tel. (054) (011) 4331-6041 y números rotativos. website: http://www.senasa.gov.ar email: apicultura@senasa.gov.ar Coordinación General: Dr. Marcelo Daniel de la Sota (Dirección Nacional de Sanidad Animal) email: mdelasot@senasa.gov.ar Responsables de los contenidos: Dr. Marcelo D. de la Sota (Dirección de Luchas Sanitarias) Dr. Mariano Bacci (Programa de Control de Enfermedades de las Abejas) email: mbacci@senasa.gov.ar Revisión de contenido: Dirección de Epidemiología y Coordinación General de Campo. Edición: Lic. Cristina del Llano (Coordinación de Gestión Técnica) Armado y diagramación: Area de Diseño Gráfico. Buenos Aires, junio de 2005. 2 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Autoridades Dr. Jorge Nástor Amaya Presidente Ing. Carlos Casamiquela Vicepresidente Dr. Jorge Horacio Dillon Director Nacional de Sanidad Animal Dr. Gastón Funes Director de Epidemiología Dr. Marcelo Daniel de la Sota Director de Luchas Sanitarias Dr. Josá Luis Antonelli Coordinador General de Campo Dr. Mariano Bacci Programa de Control de Enfermedades de las Abejas Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 3 �4 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Indice 1. LOQUE AMERICANA ................................................................................................... 11 1.1 Características......................................................................................................... 11 1.2 Presentación ............................................................................................................11 1.3 Patogenia ................................................................................................................11 1.4 Diagnóstico ..............................................................................................................12 1.5 Cuadro clínico ......................................................................................................... 12 1.6 Etiología ..................................................................................................................12 1.7 Proceso epizoótico ....................................................................................................13 1.8 Reservorios de gérmenes ......................................................................................... 13 1.9 Transmisión .............................................................................................................13 1.10 Población hospedadora ............................................................................................. 13 1.11 Prevención y lucha................................................................................................... 13 1.12 Tratamiento .............................................................................................................13 1.12.1 Recuperación del Material Vivo .......................................................................13 a. Trasiego Directo ................................................................................14 b. Trasiego Doble ..................................................................................14 1.12.2 Recuperación del Material Inerte.................................................................... 14 a. Calor - Fuego Directo ........................................................................ 14 b. Calor - Inmersión.............................................................................. 14 c. Calor y Presión ................................................................................. 14 d. Químicos .......................................................................................... 15 e. Irradiación ........................................................................................15 1.12.3 Eliminación del material inerte....................................................................... 15 1.12.4. Tratamiento medicamentoso ........................................................................ 15 1.13. Procedimientos ante la denuncia.................................................................................15 1.14. Procedimiento de atención de focos ........................................................................... 16 1.15. Toma y remisión de muestras ................................................................................... 16 2. LOQUE EUROPEA ....................................................................................................... 17 2.1 Características......................................................................................................... 17 2.2 Presentación ............................................................................................................17 2.3 Diagnóstico ..............................................................................................................17 2.4 Etiología ..................................................................................................................17 2.5 Reservorios de gérmenes ......................................................................................... 17 2.6 Población hospedadora ............................................................................................. 17 2.7 Prevención y lucha....................................................................................................18 2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos ...................................................... 18 3. VARRAOSIS ....................................................................................................... 18 3.1 Características......................................................................................................... 18 3.2 Presentación ............................................................................................................19 3.3 Daños Indirectos ......................................................................................................19 3.4 Etiología ..................................................................................................................19 3.5 Ciclo Biológico ..........................................................................................................20 3.6 Cuadro clínico ......................................................................................................... 20 3.7 Diagnóstico ..............................................................................................................20 Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 5 �3.7.1 Prueba del frasco ......................................................................................... 20 3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso .......................................................... 21 3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría ......................................................... 21 3.7.4 Método químico ........................................................................................... 21 3.8 Difusión .................................................................................................................. 22 3.9 Reservorios de parásitos ........................................................................................... 22 3.10 Transmisión ............................................................................................................ 22 3.11 Población hospedadora ............................................................................................. 22 3.12 Prevención y lucha ................................................................................................... 22 3.13 Tratamiento ............................................................................................................ 22 3.13.1 Control químico............................................................................................ 23 3.13.2 Formas de acción de los acaricidas ................................................................. 23 3.13.3 Formas de administración ............................................................................. 23 3.14 Control de la Varroasis ............................................................................................. 24 3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis ............................................................ 24 3.14.2 Plan estratégico ........................................................................................... 24 3.14.2.a Rotación de los Principios Activos ................................................... 25 3.14.2.b Evitar los Residuos ....................................................................... 25 3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación ................................................. 26 3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado ....................................................... 26 3.15 Plan de Curas .......................................................................................................... 26 3.16 Procedimientos ante la denuncia ................................................................................ 28 3.17 Procedimientos ante sospechas ................................................................................. 29 4. NOSEMOSIS ..................................................................................................... 29 4.1. Características ......................................................................................................... 29 4.2. Daños directos......................................................................................................... 29 4.3. Daños Indirectos...................................................................................................... 29 4.4. Etiología ................................................................................................................. 30 4.5. Población susceptible................................................................................................ 30 4.6. Patogenia ................................................................................................................ 30 4.7. Transmisión ............................................................................................................ 31 4.8. Diagnóstico ............................................................................................................. 31 4.9. Tratamiento y Control .............................................................................................. 32 4.10. Prevención .............................................................................................................. 32 4.11. Procedimiento ante la sospecha ................................................................................. 33 5. ASCOPHAEROSIS ............................................................................................ 33 5.1. Características ......................................................................................................... 33 5.2. Presentación ............................................................................................................ 33 5.3. Etiología ................................................................................................................. 33 5.4. Patogenia ................................................................................................................ 34 5.5. Factores predisponentes ........................................................................................... 34 5.6. Cuadro clínico .......................................................................................................... 34 5.7. Diagnóstico ............................................................................................................. 35 5.8. Tratamiento y prevención ......................................................................................... 35 6. APIARIOS ABANDONADOS .............................................................................. 36 6 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7. ENFERMEDADES EXOTICAS...................................................................................... 36 7.1 Introducción.............................................................................................................36 7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia ............................................................... 37 7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae ............................................................................37 7.3.1 Características generales y distribución .......................................................... 37 7.3.2 Agente etiológico ......................................................................................... 37 7.3.3 Ciclo biológico ..............................................................................................38 7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito........................................................................... 38 7.3.5 Signos clínicos ..............................................................................................38 7.3.6 Transmisión .................................................................................................38 7.3.7. Diagnóstico ................................................................................................. 7.3.7.a Diagnóstico clínico......................................................................... 7.3.7.b Diagnóstico químico ...................................................................... 7.3.7.c Diagnóstico diferencial ................................................................... 7.4 38 38 39 39 7.3.8 Toma de muestras ........................................................................................39 7.3.9 Tratamiento .................................................................................................39 7.3.9.a Manejo sanitario ........................................................................... 39 7.3.9.b Control químico ........................................................................... 39 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas).......................................39 7.4.1 Características generales y distribución .......................................................... 39 7.4.2 Ciclo biológico ..............................................................................................39 7.4.3 Diagnóstico ................................................................................................. 40 7.4.4 Daños......................................................................................................... 40 7.4.5 Toma de muestras ........................................................................................40 7.4.6 Transmisión .................................................................................................40 7.4.7 Control ....................................................................................................... 40 7.4.8 Medidas preventivas .....................................................................................40 INFORMACION ADICIONAL ................................................................................... 40 Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 7 �8 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Prefacio El presente Manual fue redactado por el responsable del Programa de Control de Enfermedades de las Abejas, Dr. Mariano Bacci, de la Dirección de Luchas Sanitarias, a cargo del Dr. Marcelo de la Sota, con la colaboración de la Comisión Nacional de Sanidad Apícola (CONASA). Cuenta con la revisión de la Dirección de Epidemiología y la Coordinación General de Campo, todas dependencias de la Dirección Nacional de Sanidad Animal del Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA). El presente documento se dirige principalmente a los agentes sanitarios acreditados (Inspector Asesor Sanitario Apícola), veterinarios de las Oficinas Locales de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, profesionales privados, sectores interesados y a las autoridades provinciales, municipales y nacionales locales; por tanto, se centra en aspectos operativos del Programa Nacional de Control de Enfermedades de las Abejas. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 9 �10 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Manu al d e Pr oc e d imie ntos Enfermedades de las Abejas Policía Sanitaria Las enfermedades de las abejas que se describen se encuentran incorporadas al grupo de enfermedades a las que se refiere el Artículo 4º y el 6º del Reglamento General de Policía Sanitaria, aprobado por Decreto de fecha 8 de noviembre de 1906, reglamentario de la Ley Nº 3959 de Policía Sanitaria de los Animales por Resolución de la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Pesca y Alimentación Nº 103 del 14 de octubre de 1998 que incluye a las enfermedades de las abejas denominadas Varroasis, Loque Europea y Nosemosis y la Nº 383 del 16 de agosto de 1990 que incorpora a la Loque Americana. Al mismo tiempo por Resolución SENASA Nº 422/2003 se incluyen la totalidad de las enfermedades apícolas consideradas por la Organización Mundial de la Sanidad Animal (OIE), por lo tanto son de aplicación para las mismas las regulaciones previstas en la Ley Nº 3959 y su Decreto reglamentario, entre las que se incluye la denuncia obligatoria, interdicción preventiva ante la presencia de casos, etc. 1. Loque Americana 1.1 Características La loque americana es una enfermedad de las crías de las abejas cuyo agente causal es el Paenibacillus larvae. Los síntomas principales son la coloración pardusca creciente y el aspecto pegajoso de las larvas situadas en el interior de las celdas, mostrando estas últimas los opérculos hundidos y porosos, de aspecto grasoso o conteniendo restos resecos de larvas: «escamas». La enfermedad no supone amenaza para la salud humana. 1.2 Presentación Fue detectada por primera vez en el país en el año 1989. Son muy pocos los países en el mundo reconocidos libres de esta enfermedad ante la OIE. 1.3 Patogenia Las esporas ingresan en la colmena por medio de abejas pecoreadoras que las traen en sus buches melarios, abejas pilladoras de colmenas infectadas, herramientas del apicultor, por la introducción de panales con cría infectados, alimentación con miel contaminada y cualquier intercambio de material proveniente de colmenas enfermas. Una vez dentro de la colmena, las esporas son llevadas a la cría por medio de las abejas nodrizas que las depositan junto con el alimento en las celdillas. Las larvas ingieren estas esporas que adoptan sus formas vegetativas, dadas las condiciones adecuadas que tiene el intestino, como pH y tenor de oxígeno. Cuando la larva deja de ser tal y alcanza su estado de prepupa, las bacterias que aún no fueron eliminadas por las heces, migran introduciéndose, gracias a sus flagelos, en las células endoteliales del intestino, llegan a la hemolinfa y se reproducen hasta provocar la muerte en este estado o en uno posterior (pupa). Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 11 �Si bien no se ha comprobado con exactitud la cantidad de esporas necesarias para provocar la enfermedad en una colonia, algunos autores consideran que para una larva de 48 hs de vida, son necesarias miles de esporas, mientras que para una larva de 24 hs, alcanza con solo diez o menos esporas. Hay publicaciones que indican que debe considerarse como dosis infectante a una concentración de 50.000 esporas por litro de miel. 1.4 Diagnóstico Se sospechará de la existencia de loque americana cuando se aprecien alteraciones en las larvas y aparezcan masas filamentosas y costras oscuras o negruzcas en el piso de las celdas de cría. El diagnóstico puede confirmarse en laboratorio. La técnica más utilizada en el país es la técnica de microscopía mediante cultivo bacteriológico. Existen medios de cultivo semi-específicos para el desarrollo de esporas de P. larvae. También se utilizan para el diagnóstico algunas tinciones tradicionales como Gram, Giemsa, Raquette, azul de metileno. Pueden utilizarse antisueros específicos de conejo para la precipitación o aglutinación, bacteriófagos específicos y el test de IF y la técnica molecular del PCR. 1.5 Cuadro clínico Los panales de cría de las colmenas afectadas presentan características particulares de la enfermedad. La cría es salteada y los opérculos se ven hundidos y roídos (por acción de las abejas limpiadoras que intentan sacar las crías ya muertas), en otras celdas se pueden observar las prepupas que han perdido su posición natural, se ven estiradas y sin brillo, el color va pasando del blanco brillante original a un amarillo pálido para convertirse más adelante en un material viscoso, pegajoso y amorfo, de color marrón. Los opérculos pierden su color café característico para tornarse castaño oscuros, casi negros. Transcurridos unos 10 ó 15 días desde la muerte de la larva, aparece la característica patognomónica de la enfermedad, un material viscoso que al introducir un palito dentro de la celda que lo contiene y luego al retirarlo, se estira hasta una longitud que supera los 2,5 cm, de ahí el nombre que se le ha dado a este material: “chicle”. Más adelante este “chicle” se seca y se fija fuertemente al fondo de la celda. En este momento se lo denomina “escama”. Cuando las abejas intentan limpiar las celdas, no hacen más que reiniciar el ciclo de la enfermedad, llevando estas esporas de una celda a otra. Otra característica de las colmenas infectadas es el olor nauseabundo que despiden. 1.6 Etiología El agente causal es una bacteria denominada Paenibacillus larvae, bacilo Gram+ esporulado. Sus formas vegetativas miden entre 2,3 a 5 micrómetros de largo por 0,5 a 0,6 micrómetros de ancho, móviles mediante flagelos perítricos. Sus esporas son ovaladas, miden 1,3- 1,5 por 0,6 –0,7 micrómetros y pueden visualizarse al microscopio sus movimientos brownianos, mediante la técnica de gota pendiente (Hanging drop) modificada, característica que diferencia a las esporas de esta especie de otros bacilos esporulados que afectan a las abejas. Sólo las esporas son infecciosas. Pese a la alta virulencia que de ordinario muestran para las larvas de abejas y a la gran infecciosidad, no siempre enferma la totalidad de la colonia. Mientras que la forma vegetativa es relativamente sensible a la desecación y a la luz solar, los esporos pueden sobrevivir en panales con crías putrefactas y restos de larvas durante décadas (se han desarrollado esporos al cabo de 67 años); también en la miel perduran durante años. 12 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �1.7 Proceso epizoótico La colmena cuenta con ciertas defensas, por lo que, para que se produzca la afección de las larvas por la loque americana, existen circunstancias distintas dependientes de la vitalidad de la población afectada, del inóculo (cantidad de esporas) y de ciertas condiciones externas. 1.8 Reservorios de gérmenes Son las colmenas y panales con la enfermedad latente o clínicamente manifiesta (chicles, escamas, larvas muertas). Emplazamientos abandonados y olvidados pueden ser causa de repetidos brotes de la enfermedad. También pueden serlo la miel y otros productos apícolas. 1.9 Transmisión Los reservorios de esporas son las principales fuentes de contagio. Su importancia varía de acuerdo con la fase de la enfermedad, el tipo de manejo con las abejas y las particularidades locales y regionales. El germen ingresa en forma de esporas por vía digestiva a las larvas susceptibles, traídas por las abejas nodrizas. Al limpiar las celdas, las abejas transmiten esporas a nuevas crías. También pueden transmitirse por miel almacenada y con el polen conservado con miel contaminada; la difusión se produce también entre colmenas y emplazamientos por el intercambio frecuente de abejas (deriva, abejas desorientadas en su vuelo, abejas pilladoras, etc.). Los enjambres deben tratarse siempre como material sospechoso por lo que se tomarán los recaudos correspondientes antes de incorporarlos al colmenar. También el propio apicultor disemina la enfermedad al trabajar con colmenas, panales y utensilios contaminados, cuando pretende aumentar la población con crías infectadas, al fusionar núcleos de abejas enfermas, al transportarlas y al hacerse cargo de enjambres desconocidos, etc. 1.10 Población hospedadora Son susceptibles las larvas de abejas, sobre todo las de 24 hs. La dosis infectante de esporas de P. larvae varía de acuerdo con la constitución de la colonia y la edad de la larva hospedadora. Se producen infecciones en larvas de 24 horas de vida con 10-25 esporos (30-50%). Mientras que larvas de 48 hs. necesitan miles de esporas para enfermar. Las abejas cuentan con varios mecanismos de defensa (seudorresistencia). La acción de criba ejercida por los embudos de válvula para los esporos y sus formas germinales eliminan gran cantidad de esporos de la miel; también se elimina material infeccioso cuando las larvas jóvenes infectadas son destruidas por las abejas, así como los residuos de larvas, antes de la multiplicación del germen (comportamiento de limpieza). 1.11 Prevención y lucha Para evitar el ingreso de esporas son necesarios el control escrupuloso y continuado del estado de salud de las abejas y sus crías. En el Código Zoosanitario de la OIE se fija el plazo de incubación en 15 días. La erradicación de la enfermedad resulta prácticamente imposible por razones económicas y organiza tivas y debido a su frecuente presentación encubierta (enjambres perdidos y naturales). Las medidas se concentran en proteger las zonas libres de loque, en identificar cuanto antes la enfermedad y en el correcto saneamiento del material infectado. 1.12 Tratamiento 1.12.1 Recuperación del Material Vivo Una vez que evaluamos la conveniencia de recuperar el material vivo, debemos decidir mediante qué método lo haremos. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 13 �Existen dos métodos para este procedimiento: Trasiego Directo o Cepillado y Trasiego Doble o Paqueteado. Elegiremos uno u otro de acuerdo a la época del año, posibilidad de recurrencia, disponibilidad de recursos y practicidad del método. También debe evaluarse la posibilidad de aplicar el mejor tratamiento de acuerdo a los materiales disponibles por el apicultor que estamos asesorando. Se debe entonces proceder de la mejor manera posible pero dejando bien claro cuál es el procedimiento más efectivo. a. Trasiego Directo Lo primero que debe hacerse es encontrar a la reina y mantenerla enjaulada fuera de la colonia. Luego debemos cepillar o sacudir las abejas de la colmena enferma dentro de una nueva alza previamente esterilizada o bien, de primer uso. Antes de iniciar la sacudida podemos rociar con agua a las abejas para facilitar el procedimiento y evitar que vuelen demasiado. Una vez sacudidas todas las abejas, incorporamos panales nuevos con sus láminas de cera estampada, un alimentador con jarabe, liberamos la reina, administramos o no, el tratamiento medicamentoso y protegemos con un «poncho» (pedazo de nylon que se coloca encima de los marcos y que sirve para recubrir la colmena y protegerla del frío). No es conveniente volver a abrir la colmena hasta los cinco o siete días posteriores. b. Trasiego Doble También se lo llama paqueteado. El método consiste en trasegar todas las abejas de la colmena a un portapaquete (caja pequeña con una abertura superior por donde se introducen las abejas). Si la cantidad de abejas trasegadas no alcanzan a pesar entre 1,2 kg a 1,5 kg, se debe reforzar con abejas de otras colonias. Previo al encierro de las abejas se debe encontrar a la reina y enjaularla. Este paquete se deja bien cerrado en un lugar oscuro y ventilado durante 48 hs, luego se abre y se introduce en una colmena nueva con panales nuevos con sus láminas de cera estampada y se deja abierto para que las abejas liberen a la reina y se vayan liberando también ellas por sí solas. También se aplica el tratamiento medicamentoso y se cubre con un «poncho». Este último método si bien es más trabajoso, más caro y es necesario más material y tiempo disponible, es el más efectivo en cuanto a la recurrencia de la enfermedad. Se ha comprobado que realizando un trasiego directo hay recurrencia del 20% mientras que por medio del paqueteado, se reduce al 3%. 1.12.2 Recuperación del Material Inerte Hay varios métodos para este procedimiento. Pueden clasificarse de la siguiente manera. a. Calor - Fuego Directo Pueden flamearse alzas, pisos y techos por medio de un soplete. El material debe quedar con aspecto corchoso en un espesor de aprox. 0,5 cm. b. Calor - Inmersión Puede introducirse el material de madera en bateas con cera microcristalina ó parafina de grado alimentario a una temperatura de 130-160ºC. Se deja actuar inmerso durante al menos 10 minutos. Este es uno de los métodos de mayor eficacia en la eliminación de esporos, siendo relativamente práctico y barato. c. Calor y Presión Para este método pueden utilizarse autoclaves espaciosos. Se esteriliza a una temperatura a 121ºC y con una presión de 2 atmósferas, durante 30 minutos. 14 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �d. Químicos No son muchos los productos químicos capaces de destruir a las esporas de Paenibacillus larvae. Sin embargo la soda cáustica al 10% sumergido durante 10 minutos lo logra en el material de madera. También el óxido de etileno, aunque su uso en muy engorroso, peligroso y caro por lo que no se lo recomienda. El Hipoclorito de Sodio al 1%, durante 15 minutos, resulta efectivo sobre superficies no porosas. e. Irradiación Es el método más efectivo, además permite la esterilización de los panales, inclusive aquellos con larvas muertas por la enfermedad en sus estadios de chicle o escama. Consiste en exponer al material a una fuente de Cobalto 60, durante un cierto tiempo y una determinada dosis, de manera que los rayos gamma produzcan la esterilización del medio y la inhibición de la actividad bacteriana. 1.12.3 Eliminación del material inerte Hay casos en los que no es conveniente conservar el material. Hay que proceder de la siguiente manera: debemos realizar un pozo de una circunferencia y profundidad considerables de acuerdo al material que vamos a quemar. Con una esponja o un trapo embebido en nafta o algún otro combustible, eliminaremos las abejas, se quemarán todos los panales de la colmena afectada, tomando las precauciones necesarias para no derramar la miel, luego se echarán al fuego los techos, entretapas, alzas y pisos. Una vez incinerados, se tapa el pozo para evitar el pillaje de los restos de cera y miel que pudieran quedar. Se debe realizar el procedimiento cuando la mayor cantidad posible de abejas está dentro de la colmena. 1.12.4. Tratamiento medicamentoso A partir del año 2017 no se dispone de productos veterinarios autorizados para uso en apicultura para el tratamiento de las enfermedades bacterianas de las abejas. Los antibióticos que estuvieron aprobados para uso en apicultura, no tienen la capacidad de destruir a los esporos del Paenibacillus larvae y dejan latente el potencial infeccioso de las colonias. Sólo destruyen su forma vegetativa. De ahí la importancia del tratamiento integral del material vivo e inerte sin el uso de antibióticos. El riesgo que implica el uso de antibióticos a las colmenas se evidencia en residuos de las drogas utilizadas en la cera, miel, polen y propóleos, afectando potencialmente la salud de los consumidores, y el perjuicio que acarrea a nuestro país la comercialización de dichos productos. 1.13. Procedimientos ante la denuncia Las medidas se concentran en proteger las zonas libres de loque, en identificar cuanto antes la enfermedad y en el correcto saneamiento del material infectado. Al recibir una denuncia se debe intervenir de inmediato el establecimiento que aloja al colmenar. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 15 �Este queda bajo vigilancia oficial y se procede a realizar la inspección correspondiente. En caso de ser necesario, se convoca a un Inspector Sanitario Apícola acreditado por SENASA como apoyo técnico del veterinario oficial. El colmenar afectado no podrá movilizarse hasta tanto finalicen las correspondientes acciones de saneamiento y transcurra el tiempo necesario para asegurarse de la no recurrencia de la enfermedad. Se llenará el Acta de Constatación detallando lo acontecido durante la inspección. Se deben tomar muestras de material sospechoso, en este caso, se tomará un trozo de panal de 5 cm x 20 cm, o bien un panal entero y se remitirá al Laboratorio Central de SENASA o al laboratorio que el Programa de Control de Enfermedades de las Abejas haya autorizado a ingresar a la red de Vigilancia Apícola, junto con la planilla de envío de muestras correspondiente. (Ver 1.15) Se debe aislar preventivamente el colmenar, evitando el tránsito de personas, precintando las colmenas e informando a los apicultores para que no salga ningún material del asentamiento. Una vez confirmado el diagnóstico, se establecerá en torno al emplazamiento infectado un círculo de aislamiento de 1,5 km de radio, en el cual deben examinarse todas las colmenas y existencias de panales. Para disminuir el riesgo de difusión de la enfermedad, se utilizará en las actuaciones ropas protectoras y utensilios propios exclusivamente del establecimiento investigado o se asegurará su posterior esterilizado. El propio apicultor colaborará en el control de sus panales, quien también evitará arrojar descuidadamente material infectado. Se cerciorará de que se cumplen en forma adecuada las medidas de desinfección y tratará de evitar todas aquellas circunstancias que contribuyan a extender la enfer medad, como por ejemplo, evitar pillaje, no retirar del lugar material infectado que no fue destruido, dejar abiertas las colmenas vacías y no consentir las deficiencias higiénicas. 1.14. Procedimiento de atención de focos Si la zona está reconocida libre de la enfermedad, se destruirá todo el material afectado incluyendo abejas y material inerte (Ver Punto 1.12.3) Si la enfermedad está presente en la región se evaluará qué acciones seguir en función del alcance de la patología dentro del colmenar (cantidad de colmenas afectadas sobre el total de colmenas) y la gravedad de la misma en las colonias afectadas. Otro de los parámetros a considerar es la disponibilidad de material inerte de recambio con el que se cuenta en el lugar. A partir de entonces se podrá tomar la decisión de recuperar el material vivo e inerte y de aplicar tratamiento medicamentoso o no. (Ver Punto 1.12) Se considera que el brote de enfermedad ha desaparecido cuando en los controles de resultados efectuados al cabo de 6-8 semanas y en la primavera u otoño siguiente en la región problema, ninguna colmena exhibe manifestaciones de la enfermedad. 1.15. Toma y remisión de muestras Como se mencionó anteriormente, en todos los casos de sospecha se deberán tomar muestras y remitirlas al laboratorio central de SENASA o al laboratorio que el Programa de Control de Enfermedades de las Abejas haya autorizado a ingresar a la red de Vigilancia Apícola. Se enviará un trozo de panal sospechoso de 5 cm x 20 cm, envuelto en papel absorbente y luego en una caja de cartón, o bien el panal entero para permitir al laboratorista tener una visión completa de las características del panal. Se evitará utilizar plásticos, polietileno y nylon para contener la muestra, pues estos materiales condensan la humedad y favorecen a la proliferación de colonias de hongos que puedan alterar la muestra. 16 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Junto a la muestra se debe enviar el formulario correspondiente al envío de muestras, firmado por el veterinario de SENASA y/o el Inspector Sanitario Apícola que recolectó la muestra, y todos los datos solicitados en cuanto a la región y una breve reseña de los síntomas observados en las colmenas. Hasta tener el resultado laboratorial, todo el material sospechoso y el acompañante permanecerán en el establecimiento. 2. Loque Europea 2.1 Características También se la llama Loque benigna. Es una enfermedad bacteriana de las larvas de abejas, muy dependiente de las condiciones ambientales y el desarrollo del nido de cría. En el suelo de las celdas las larvas afectadas mueren, luego se forman costras castañas, al principio esponjosas, para luego desecarse y adoptar textura viscosa-escamosa, poco adheridas, que van cambiando de color, del blanco brillante normal hasta castaño amarillento y pardo negruzco. Cuando la infección es leve y las poblaciones tienen buena vitalidad, pueden soportar la enfermedad hasta su autocuración. Es excepcional la pérdida de estas poblaciones. La enfermedad no supone ninguna amenaza para la salud del hombre. 2.2 Presentación La loque europea (o benigna) está ampliamente difundida en casi todo el mundo. En el país ha dismi nuido la frecuencia de su aparición, pero en cualquier punto del territorio puede presentarse. 2.3 Diagnóstico Surgirá la sospecha de esta enfermedad cuando se observen panales con cría salteada, larvas redondas o estiradas muertas, por lo general antes del operculado de las celdas. El diagnóstico se corrobora en laboratorio identificando el germen causal en los residuos de las larvas afectadas. Para la diferenciación con otras enfermedades de las larvas, pueden utilizarse también antisueros específicos, bacteriófagos y el test de IF. 2.4 Etiología El agente causal de la loque europea, Melissococcus pluton White, a diferencia de la bacteria responsable de la Loque americana, no tiene la capacidad de esporular. Secundariamente intervienen otros agentes bacterianos, entre otros, el Paenibacilus alvei y Enterococcus fecalis. 2.5 Reservorios de gérmenes Gracias a la imposibilidad del Melissococcus pluton White para esporular, el material infeccioso no perdura en el material apícola inerte. Los panales de cría con larvas afectadas representan el principal reservorio. Las abejas adultas de las colmenas afectadas actúan como transmisoras de la enfermedad. 2.6 Población hospedadora Son receptoras las crías de abeja, que por lo general mueren arrolladas en las celdas antes de ser operculadas. Factores de estrés, como por ejemplo manejo y cuidados deficientes, la falta de polen o la acción de sustancias nocivas, desequilibrios entre nodrizas y adultas, traslados de colmenas, etc. pueden provocar brotes de la enfermedad. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 17 �2.7 Prevención y lucha Las medidas a adoptar se asemejan en objetivos y realización a las citadas al tratar loque americana. Las medidas para la protección de territorios limpios, así como las requeridas en caso de brotes de loque europea, se corresponden en líneas generales con las de la loque americana, si bien la benignidad de la loque europea permite limitar el aislamiento a sólo el establecimiento afectado. De acuerdo con la información proporcionada por la OIE referente al tiempo de incubación, las poblaciones sospechosas deben someterse a cuarentenas superiores a 15 días. Mediante medidas de manejo apícola puede estimularse el comportamiento de limpieza de las abejas y la selección de líneas genéticas sobre la base de esta característica. Por lo demás, basta corrientemente con eliminar los panales afectados, y en los casos más graves, con practicar el método del trasiego o paqueteado. Si bien los antibióticos son eficaces contra el agente de la loque europea, se recomienda establecer medidas preventivas de manejo más que la utilización de los mismos. Las medidas en territorios con la enfermedad enzoótica coinciden en buena medida con las de la loque americana, aun cuando no es preciso por lo común crear ningún círculo de aislamiento en torno al establecimiento afectado, con lo que los movimientos de abejas con la vecindad resultan menos limitados. 2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos Debido a que se trata de una enfermedad de escasa importancia en pérdidas económicas, difícilmente es capaz de provocar la muerte de la colonia, que la bacteria que la causa no es capaz de esporular y por lo tanto no representa mayores riesgos de dispersión, no se trata de una enfermedad cuya denuncia merezca atención inmediata. Las medidas para la protección de territorios limpios, así como las requeridas en caso de brotes de loque europea, se corresponden en líneas generales con las de la loque americana, si bien la benignidad de la loque europea permite limitar el aislamiento a sólo el establecimiento afectado. 3. Varroosis 3.1 Características Se trata de una enfermedad parasitaria provocada por un ácaro llamado Varroa destructor. En países con apicultura desarrollada como es el caso de la Argentina, se considera que es la enfermedad más grave junto a loque americana. Los ácaros se alimentan de la hemolinfa de las abejas, se fijan a los esternitos de las abejas adultas, perforan la cutícula y las debilitan afectando su comportamiento y provocando desorientación en el vuelo. También afecta a las crías. Además puede transmitir o crear las condiciones adecuadas para la aparición de otras enfermedades bacterianas, fúngicas o virales. En colonias de abejas asiáticas la cantidad de ácaros adultos varía de 0 a 700 individuos y se genera un equilibrio donde coexisten el hospedador y el parásito. Además, las varroas no llega a provocar un gran daño debido a que las abejas toleran y logran limpiar las varroas de la cría y de ellas mismas. El ciclo reproductivo se lleva a cabo en las celdas de zángano. En cambio, la interacción entre varroa y Apis mellifera no se encuentra en equilibrio. En este tipo de abejas, tiene la capacidad de reproducirse tanto en celdas de zánganos como de obreras, la reproducción es mucho mayor y puede causar la muerte de la colonia. 18 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �3.2 Presentación La descripción de Varroa sobre Apis cerana data de 1904. Recién en 1963 se detecta a este parásito sobre abejas de la especie A. mellifera. A partir de este momento, por causa del intercambio comercial entre países de un continente y otro, llega a distribuirse por todo el mundo. En la Argentina se la detecta por primera vez en el año 1976 en colmenas de Laguna Blanca, en la provincia de Formosa. En el transcurso de los dos años posteriores, la varroosis se diseminó por todo el país. La intensidad de la dispersión de esta enfermedad hace que hoy sea considerada como enfermedad endémica en nuestro país. 3.3 Daños Indirectos Además de correr el riesgo de contaminación de los productos de la colmena a raíz de los tratamientos para el control del ácaro, es posible que las varroas transmitan debido a su mecanismo de succión, enfermedades de tipo viral, aunque de cierta manera también interviene en enfermedades micóticas y bacterianas. También existe evidencia de que el ácaro es capaz de transportar esporas fúngicas del agente causal de la cría yesificada, Ascophaera apis en su superficie y así diseminarlas por la colmena. Sin embargo, esta circunstancia desde el punto de vista epidemiológico, no es significativa, pues los cuerpos fructíferos se encuentran presenten todo el tiempo en la colmena esperando la aparición de factores predisponentes para desarrollar la enfermedad. Es aquí donde se cree que varroa juega un papel importante ya que produce el debilitamiento de la colmena y el consecuente desequilibrio que favorece la aparición de momias micóticas. En cuanto a las enfermedades bacterianas, se destaca la capacidad del ácaro para transportar esporas de Paenibacillus larvae. Aunque no interviene en la patogenia de la enfermedad. Debido a la forma de alimentación del ácaro, perforando la cutícula de las abejas y succionando su hemolinfa, se lo considera un agente ideal para la inoculación de partículas virales. Otro de los daños indirectos que pueden mencionarse es la acción de los pesticidas sobre colonias infestadas por varroosis. La varroa, al alimentarse del adulto, disminuye la concentración de proteínas y ácidos grasos en hemolinfa, hecho que hace aumentar la susceptibilidad de las abejas a las dosis de pesticidas que en otras circunstancias serían inocuas, y que provoque en presencia de una alta tasa de infestación, la muerte de la colonia. 3.4 Etiología Varroa destructor es un ácaro que presenta dimorfismo sexual. Esto quiere decir que la hembra y el macho se diferencian en forma y tamaño. Las hembras adultas tienen la forma de un escudo oval, el cuerpo deprimido dorsoventralmente, son de color pardo rojizo y de un tamaño que varía aproximadamente entre 1,2 mm de largo por 1,5 mm de ancho. Su cuerpo está recubierto de vellos delgados que cumplen la función de palpación y les permiten fijarse a las abejas adultas durante el vuelo. Tienen cuatro pares de patas gruesas y cortas cuyos tarsos finalizan con unas ventosas que les permite fijarse a superficies planas. Su aparato bucal está adaptado para picar y chupar. El período de vida de una varroa puede ser de algunos días o de varios meses, dependiendo de la temperatura, la humedad y de la actividad reproductiva. Los machos son más pequeños, miden de 0,4 a 0,8 mm y presentan un color blanquecino grisáceo o amarillento. Pueden encontrarse solamente en las celdas de las crías. Los machos tienen sus quelíceros adaptados para la transferencia de esperma, por lo que no pueden alimentarse. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 19 �3.5 Ciclo Biológico Cuando una hembra fecundada se desprende de una abeja, se dirige inmediatamente a una celda próxima a opercular (aparentemente el ácaro detecta algunos componentes de la hormona del operculado que segregan las larvas -9 días en la obrera y 10 días en los zánganos-). Este momento coincide con el 5º estadío del desarrollo larval (L5). La hembra fértil inicia el ciclo al entrar en la celda. Puede entrar una sola o con otras hembras. Una vez que alcanza el interior de la celda, se aloja en el alimento de la larva y se mantiene inmóvil hasta que ésta lo consuma. Luego, succiona la hemolinfa de la pupa y comienza la postura de un primer huevo. Cuando esto sucede ya han transcurrido entre 60 a 70 horas desde su ingreso a la celda. Este primer huevo dará origen a un ácaro macho; 30 hs. más tarde pondrá otro huevo que dará origen a un varroa hembra, a partir de este momento continuará su postura cada 30 hs. con huevos que originarán varroas hembra. Una vez que el macho alcanza la madurez sexual, fecunda a sus hermanas aún sexualmente inmaduras quienes conservan el esperma en su espermateca. Luego de la cópula, el macho muere al igual que las hembras inmaduras una vez que nace la abeja adulta. El ciclo de huevo a adulto es en la hembra de 8 a 9 días mientras que en el macho es de 6 a 7 días. Una hembra de varroa fecundada puede poner hasta 5 huevos en las celdas de obreras y hasta 7 en las de zánganos. La cantidad de ovoposiciones dependerá del tiempo que necesita la larva de la abeja para completar su ciclo y llegar a adulta. Es por ello que la cantidad de huevos varia de acuerdo a la especie de abeja y al tipo de individuo (zángano, obrera, reina). 3.6 Cuadro clínico Cuando los niveles de infestación son bajos, no hay manifestación evidente de la enfermedad. Cuando hay alto grado de parasitismo pueden verse abejas con alas y patas deformadas y el abdomen reducido. En los marcos del nido de cría pueden verse los opérculos roídos y cría salteada. Si una colmena entra a la invernada con niveles de infestación superiores al 5%, es muy probable que esa colonia muera, pues en otoño, se produce una mayor intensidad del parasitismo al achicarse la colonia. Muchas colonias en esta situación suelen fugarse de la colmena en pleno invierno dejando un puñado de abejas y las reservas. Los daños que ocasionan pueden clasificarse como directos e indirectos. Entre los primeros, si no se produce el enjambre o directamente la muerte de la colonia, se puede mencionar una reducción del peso de las abejas y reducción del tiempo de vida. Tienen más posibilidades de desorientarse al regresar a la colmena, se reduce las proteínas y los cuerpos grasos de la hemolinfa, por lo que aumenta la susceptibilidad de ciertos tóxicos. Si estuvieron parasitadas durante su desarrollo en la celda, además de nacer con deformidades y de menor tamaño, la glándula hipofaringea puede sufrir hipoplasia. En los casos de alto parasitismo, la abeja no logra nacer y permanece muerta en la celda. Dentro de los daños indirectos, puede mencionarse la posibilidad de contaminación de la miel y otros productos de las colmenas por medio de los acaricidas de síntesis. Además, como ya fuemencionado, puede transmitir enfermedades de tipo viral. 3.7 Diagnóstico Hoy es prácticamente imposible encontrar colmenas en las regiones de mayor producción que no tengan varroas parasitando las colonias. Es por ello que los métodos de diagnóstico se orientan a determinar de manera cuantitativa la presencia del parásito, estimando los porcentajes de infestación. 3.7.1 Prueba del frasco Es el método más utilizado para determinar el porcentaje de infestación de los apiarios. Se debe tener en cuenta que el ácaro presenta al igual que muchos ectoparásitos la característica 20 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �de agregación. Esto quiere decir que tendremos áreas dentro de la colmena con gran cantidad de ácaros y otras áreas libres de estos. Por lo que un grupo de abejas adultas tendrá un alto nivel de parasitismo y otro grupo niveles de infestación ínfimos. Esto puede corregirse tomando, en el momento de la recolección de la muestra, unas 300 abejas de ambas caras de tres panales diferentes de cada colmena. De esta manera nos aseguramos una muestra representativa. Se deben muestrear 6 colmenas cuando el apiario tiene hasta 50 colmenas o el 10% de las colmenas del apiario cuando éste tiene más de 50 colmenas. Una vez tomada la muestra mediante un frasco de boca ancha, se le introduce agua y un poco de detergente o alcohol al 70% para lograr el desprendimiento de los parásitos. Después de agitar el recipiente durante al menos cinco minutos, filtramos el contenido y contamos los ácaros y las abejas. La proporción de ácaros sobre la cantidad de abejas examinadas, nos da multiplicando por 100, el porcentaje de infestación. Ej. 12 ácaros y 300 abejas: 12/300 x 100= 4% de infestación. Es importante tener en cuenta que este tipo de diagnóstico sólo tendrá en cuenta el parasitismo en fase forética, es decir que no se estimará el nivel de infestación de la cría. Cuando se realiza entrada la temporada y el nido de cría está desarrollado, se estima que el 70% de los ácaros están dentro de la celda, por lo que el resultado arrojado se referirá solo al 30% de los ácaros que tiene esa colonia. Métodos similares pueden describirse con la utilización de éter. Otro se describe con la utilización de azúcar, logrando el desprendimiento de los ácaros al agitar el recipiente y a su conteo. La ventaja de estos métodos es que no es necesario matar a las abejas. 3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso Es un método utilizado para detectar la enfermedad y estimar el nivel de parasitismo de la colmena. Además, es el método que utilizaremos para determinar la eficacia que presenta el producto acaricida que estamos usando. El piso trampa para varroa, consiste en un piso móvil de madera cubierto por una malla metálica que permite el paso de los ácaros caídos, pero no el de las abejas para limpiarlo. En lugar de este piso comercializado por algunas firmas proveedoras de insumos, pueden utilizarse una cartulina o una bandeja de plástico o chapa, siempre provistas de malla que impida la limpieza por parte de las abejas. En cualquiera de los casos debe untarse alguna sustancia adhesiva como vaselina o aceite vegetal hidrogenado para que queden adheridos los ácaros caídos y después recolectarlos para el conteo (si se utiliza para pruebas de eficacia no debe colocarse sustancia adhesiva). Al retirar el piso y al contar los ácaros muertos en forma natural obtenemos una aproximación del parasitismo de esa colonia. 3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría Este método consiste en tomar un panal de cría operculada de la colmena en estudio. Luego, se desoperculan unas 100 a 150 celdas de cría, y se cuenta el número de ácaros presentes en las celdas. Se debe trazar una línea diagonal y desopercular las larvas sobre esa línea. Otra opción sería una guarda griega o un zigzag. Luego se hace la relación entre la cantidad de ácaros y el número de larvas inspeccionadas. De esta manera se obtiene un resultado sobre la cantidad de ácaros en cría. 3.7.4 Método químico Este método consiste en colocar en una colmena con piso trampa, tres principios activos farmacológicamente diferentes a la vez, y a las 24 hs. recolectar los ácaros caídos. Se supone que con ese Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 21 �choque químico se elimina el 100% de los varroa, dato que puede extenderse para estimar la población de las colonias vecinas. 3.8 Difusión La difusión de la varroosis se ve facilitada dentro de los apiarios por medio de los zánganos; por abejas perdidas, hecho que ocurre agravado por una disminución en el sentido de la orientación en caso de sufrir la parasitosis, y por pillaje. Entre aparios, además de transmitirse por los mismos mecanismos que dentro de un mismo apiario, se puede introducir la parasitosis con la incorporación de material biológico infestado (reinas, paquetes, enjambres y núcleos nuevos). La trashumancia contribuye también a la difusión de esta enfermedad, agravando las parasitosis en aquellos lugares en los que se concentran muchas colmenas en una determinada época del año. 3.9 Reservorios de parásitos Los enjambres silvestres y los apiarios abandonados son posiblemente, los más importantes núcleos de enfermedad. 3.10 Transmisión Las principales fuentes de contagio son las poblaciones enfermas, los panales de larvas infestados y abandonados, y los enjambres producidos a partir de ellos. La transmisión se produce a través de las abejas adultas sobre todo por los zánganos, por abejas adultas desorientadas y pilladoras. La diseminación biológica estará sujeta a la densidad de la población de abejas, la capacidad de vuelo de las mismas, características del entorno, distribución de los emplazamientos y el grado de infestación. La propagación se ve aumentada varias veces con la práctica de la trashumancia. 3.11 Población hospedadora Es receptora la totalidad de la población. Presentan mayor susceptibilidad las larvas de zánganos por razones físicas y biológicas. En las celdillas de obreras, la segunda mitad de la puesta a partir del 4º huevo ya no proporciona ninguna hembra de Varroa con posibilidades de vida, por lo que resulta una tasa de descendencia de 2,6 (cría de zánganos) y 1,3 (cría de obreras) ácaros hijos fértiles por ciclo de reproducción. Los 16 días de duración del período de incubación de las celdillas de abeja reina constituyen un tiempo demasiado corto para el completo desarrollo del Varroa. 3.12 Prevención y lucha La varroosis de las abejas es una enfermedad endémica en Argentina. En la actualidad es imposible erradicarla considerando la existencia inevitable de enjambres naturales. El sacrificio general de las poblaciones infectadas no proporciona ningún éxito en el saneamiento, ya que por lo regular, cuando se descubren los ácaros, ya están infestados otros emplazamientos. La estrategia se centra en combinar medidas en la explotación apícola con tratamientos acaricidas para reducir la población de parásitos, frenar su difusión, y con ello atenuar las pérdidas económicas. A tal efecto resultan imprescindibles el escrupuloso control del estado de salud de las abejas y la decidida y disciplinada colaboración de los apicultores trabajando conjuntamente a nivel regional. 3.13 Tratamiento Al incrementarse considerablemente durante los últimos diez años la prevalencia parasitaria, y a la progresiva disminución de la susceptibilidad de los ácaros a ciertos agentes químicos, las preguntas que se plantea el apicultor con el paso del tiempo es cuándo y con qué tratar. Nadie tiene hoy la «receta» precisa. 22 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Lo ideal para el control de la varroosis, sería contar con herramientas de tipo biológico. De esta manera evitaríamos los riesgos de contaminación de los productos de la colmena con agentes químicos y los riesgos de sus efectos tóxicos sobre las abejas y sus crías. Desafortunadamente, por las características del ciclo biológico de la varroa, no hay posibilidades de intervenir en su etapa reproductiva mediante, por ejemplo, la TIE: Técnica de Insecto Estéril o machos estériles, que evita la descendencia de las plagas en otras actividades productivas. Dentro de este tipo de control solo contamos, por el momento, para mantener baja la población de ácaros, sobre todo en pequeñas explotaciones debido a lo engorroso del método, la utilización de panales zanganeros. Hay estudios que confirman la eliminación de más del 60% de varroas mediante la incorporación y posterior eliminación una vez operculados, de dos panales zanganeros. Sin embargo se debe prestar especial atención a las colmenas en las que se aplica este método sin dejar más de quince días los panales zanganeros dentro de la cámara, pues nacería un número muy elevado de ácaros comprometiendo la viabilidad de la colonia. Por eso se recomienda utilizarlo sólo en explotaciones a pequeña escala y en apiarios de fácil acceso. Otro de los métodos que se está estudiando para evitar el uso de agentes químicos para el control de la varroosis, es el de seleccionar líneas genéticas con alto comportamiento higiénico, tolerantes a la varroosis. Este fenómeno consiste en implementar un sistema de selección y mejoramiento genético identificando y eligiendo para la reproducción de material vivo, las colonias que presentan una menor susceptibilidad a la enfermedad, dada por la capacidad de eliminar las varroas adultas y de detectar y remover las crías afectadas por el parásito. Sin embargo, es probable que todo este mecanismo de selección, lleve mucho tiempo hasta que pueda extenderse a las distintas regiones geográficas y que sean aplicables como única herramienta para el control del ácaro. Por el momento nos vemos obligados a la utilización de productos químicos, de síntesis u orgánicos. 3.13.1 Control químico Podemos definir como un producto «ideal» a aquel que no altera el funcionamiento interno de la colonia, que es práctica su aplicación, el que presenta mayor eficacia con la menor cantidad de aplicaciones, que no signifique un riesgo de contaminación de la miel y la cera, que no sea perjudicial para la salud humana y que sea de bajo costo. Existen varios métodos para el control de la varroosis mediante diferentes productos con distintas formas de acción y elaborados con diferentes principios activos. 3.13.2 Formas de acción de los acaricidas Sistémicos: Ingeridos por las abejas. Por medio de la hemolinfa, produce la muerte de los ácaros que se encuentran sobre las abejas adultas. El inconveniente en la utilización de los productos que actúan de esta manera, es que hay que repetir las aplicaciones por lo que tiende a ser menos práctico que los de contacto. De contacto: También eliminan solo las varroas de las adultas, pero quedan dentro de la colmena por más tiempo y permanecen activos durante todo el ciclo reproductivo de las varroas. Es por eso que con una sola aplicación de alguno de estos productos, basta. 3.13.3 Formas de administración Humos o gases: Son volteadores de ácaros que parasitan abejas adultas. Se aplican por medio de gasificadores de propano o con el ahumador. Por evaporación: Así actúan las sustancias orgánicas. Esto está íntimamente relacionado con la Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 23 �temperatura ambiente y las características de los soportes y dosificadores. Solución: Hay ciertos productos que se aplican puros en recipientes dentro de la colmena y gracias a la bioventilación producida por las abejas, se difunde. También puede mencionarse dentro de este grupo a los que se aplican en el jarabe para su acción sistémica. Tiras de liberación lenta: son tiras por lo general plásticas, que por el contacto con las abejas liberan lentamente las partículas del activo. 3.14 Control de la Varroosis El ácaro V. destructor causa anualmente serias pérdidas en la producción apícola del país. En muchos casos ocasiona la muerte de las colonias, pero en otros genera serias pérdidas de producción, debido a un debilitamiento general de las colmenas. Esto se hace más acentuado en áreas con escasez de polen donde el déficit proteico ocasionado suele causar la muerte de las colmenas; o en zonas donde los inviernos son poco rigurosos y la cría permanece durante todo el periodo facilitando una reproducción ininterrumpida del ácaro mientras disminuye paulatinamente la población de abejas. Por estos motivos, entrar a la invernada con alto número de abejas, buena cantidad de reservas y sobre todo un bajo número de ácaros es imprescindible para lograr un buen desarrollo de las colmenas durante la primavera. Existen muchas opciones de control en el mundo, pero es necesario diseñar estrategias de control en cada región o en cada país ya que tanto el ácaro como las características climatológicas, íntimamente vinculadas a su reproducción, son propias de cada lugar. Sin embargo, existe un consenso mundial sobre la necesidad de incorporar al plan de tratamientos contra el ácaro una aplicación de acaricidas hacia fin de la cosecha, llamado tratamiento de verano (Imdorf, et al. 1996; Elzen, et al, 2001). Este tratamiento permite disminuir la carga de Varroa a fines de verano e ingresar al otoño, momento de gran reproducción, con un reducido número de ácaros. Basadas en esta información, se detallan a continuación una serie de recomendaciones para implementar un plan de control estratégico tendiente a disminuir las poblaciones de Varroa en las colmenas y los riesgos de que permanezcan en la miel residuos de los productos utilizados. 3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis Usar los productos acaricidas autorizados por SENASA para ser utilizados en apicultura. Deben ser de origen conocido, contar con especificaciones de uso, vencimiento y formula completa. Determinar los porcentajes de infestación antes y después de la aplicación del tratamiento. Emplear la dosificación correcta. Alternar los distintos métodos de control utilizados, de manera de eliminar en el siguiente tratamiento a los ácaros que resistieron la acción del producto utilizado anteriormente. Respetar los tiempos de carencia de los productos acaricidas Realizar curas sistemáticas entre los apicultores de la región, utilizando productos que garanticen la disminución de los niveles de infestación y los mínimos riesgos de contaminación de los productos de las colmenas. 3.14.2 Plan estratégico. Manejo Integral La magnitud del alcance de la enfermedad dependerá principalmente de las condiciones ecológicas de cada región y de la movilización de colmenas, que por lo general, adelantan la reproducción del ácaro. Por eso se recomendarán dos o tres curas, según los casos. Las siguientes recomendaciones se basan en cuatro pilares fundamentales necesarios para asegurar el éxito de las estrategias de control: 24 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �a. La rotación de acaricidas. b. El aumento en la utilización de acaricidas orgánicos. c. La evaluación del grado de infestación antes y después de aplicado el tratamiento. d. Tratamientos zonales coordinados. 3.14.2.a Rotación de los Principios Activos Es indispensable para evitar que los ácaros varroa desarrollen el fenómeno de resistencia a los acaricidas utilizados actualmente, la rotación obligatoria de los productos. La quimiorresistencia es un fenómeno en el que una parte de la población de individuos toleran las dosis que para el resto de la población de la misma especie son letales. Es una relación entre el producto y el parásito donde parte de la población de ácaros sobreviven a las dosis de aplicación recomendadas por el fabricante del producto. Los ácaros varroa al igual que otros insectos, han demostrado una alta capacidad para hacer frente a los plaguicidas debido a sus poblaciones numerosas y al corto intervalo entre generaciones. Esto eleva la posibilidad de que existan individuos más resistentes que el resto y favorece su multiplicación. Se debe recordar que la resistencia se transmite genéticamente entre una generación y otra. Se predispone a este fenómeno con el mal uso de los productos, las sub y sobredosificación, utilización de los productos durante un tiempo más prolongado a lo recomendado, y por la utilización ininterrumpida del mismo producto entre una cura y otra. Entonces para evitar el desarrollo de resistencia y con la finalidad de eliminar los ácaros varroa que pudieran haber resistido a la cura anterior, se cambiará de principio activo para el nuevo tratamiento. Por eso se debe exigir al proveedor que especifique además de la dosis a emplear, formas de uso y fecha de vencimiento del producto; el nombre del principio activo con el que fue formulado. Recuerde que todos los productos veterinarios están elaborados con excipientes, vehículos y un principio activo (ej. Amitraz, fluvalinato, flumetrina, Ac. oxálico, Ac. fórmico, etc.). A modo de ejemplo: Si Ud. curó en el otoño con Amitraz, en primavera lo debe hacer con ácido oxálico o fórmico. Si para la cura de verano utilizó un piretroide (ej. fluvalinato), no debe usar para la cura de otoño ningún piretroide (fluvalinato o flumetrina). Utilizando otro principio activo de características farmacológicas distintas, se asegura eliminar la población que pudiera haber resistido a la acción del producto anterior. Para detectar fenómenos de este tipo, resulta imprescindible que el apicultor comience a evaluar de un modo más certero la verdadera eficacia de los productos que utiliza. Para ello, es importante conocer los métodos de determinación del porcentaje de infestación para aplicarlos luego del tratamiento. En caso de determinar resistencia se debería dejar de usar el activo por al menos dos temporadas de modo de eliminar la población de ácaros resistentes. Aunque los acaricidas orgánicos por definición no producen resistencia, no es aconsejable utilizar siempre el mismo acaricida orgánico, a fin de evitar mecanismos comportamentales de Varroa, que disminuyan la eficacia de los mismos. 3.14.2.b Evitar los Residuos Para evitar los residuos en mieles es indispensable conocer el momento de aplicación de cada una de las drogas a utilizar. Se debe prestar mucho cuidado y trabajar con conciencia para evitar que queden residuos químicos en los productos de la colmena. La presencia de estas sustancias no sólo ponen en Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 25 �riesgo la continuidad del comercio de nuestra miel, sino que también constituyen un riesgo para las abejas y la salud humana. Los productos de la colmena pueden contaminarse en menor o mayor grado de acuerdo a la naturaleza química de la sustancia con la que estamos trabajando y la afinidad del mismo con la miel o la cera. Sin embargo que determinado producto tenga mayor afinidad por la cera, no significa que no pueda concentrarse en la miel, de hecho se han detectado mieles contaminadas con ellos y en menor escala en polen y propóleos. Por eso se debe suspender la aplicación de los productos de síntesis al menos 8 semanas antes de la colocación de las alzas melarias (tiempo de carencia), y aplicarlo solo en la cámara de cría. En caso de optar por el uso de coumaphos, debe considerarse administrarla básicamente en otoño o fines de verano, luego de la última cosecha teniendo en cuenta que en nuestro país está demostrada la existencia de varroas con altos niveles de resistencia a este principio activo. En primavera es aconsejable utilizar acaricidas orgánicos (oxálico, fórmico, timol) para evitar el riesgo de dejar residuos. Tenga en cuenta que los acaricidas deben dejar de aplicarse al menos ocho semanas antes de la mielada (período de carencia). Utilice las dosis recomendadas y respete las indicaciones de uso. En general para disminuir las visitas a los apiarios se varían las formas de aplicación generando problemas colaterales como residuos o mayor nocividad para las abejas, disminuyendo a la vez la eficacia. 3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación En general una vez realizados los tratamientos, muchos apicultores esperan hasta las próximas revisaciones para ver el estado de las colmenas. Por ser la varroosis una de las principales causas de pérdidas de colmenas, es básico verificar el éxito del tratamiento aplicado, ya que por cambios en el clima, alto nivel de infestación, apiarios cercanos sin tratar, enjambres, principios activos sin la eficacia suficiente o mal administrados, podemos mantener una alta carga de ácaros en el apiario tratado. Para realizar los diagnósticos pre y pos tratamiento podemos utilizar el método descripto en el punto Diagnóstico de Varroosis (1.b) 3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado Como cuarto pilar se considera a la coordinación zonal entre apicultores para la realización de tratamientos simultáneos en todos los apiarios y con el mismo principio activo. De esta manera se evita la reinfestación a través de los apiarios cercanos y se elimina en forma masiva la mayor cantidad posible de ácaros. Regiones bajo un plan sanitario pueden realizar esta acción conjunta. Tenga en cuenta que si usted cambia de principio activo por no haber obtenido buena eficacia quizás a causa de la resistencia, y su vecino no lo hace, la medida será inútil pues los ácaros resistentes del vecino llegarán a sus colmenas en un momento u otro a través de zánganos, abejas pilladoras, enjambres, etc. 3.15 Plan de Curas El plan consiste en la aplicación ya sea de uno, dos o tres tratamientos durante el primer año y una evaluación del éxito a fin de temporada y la elaboración del plan para el segundo año. La cantidad de tratamientos variará según el ciclo biológico de las abejas y por ende de los ácaros, coincidente con las características climáticas de cada zona. También se tendrá en cuenta el eventual adelanto de las temporadas apícolas por trashumancia o incentivo. 26 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �A. En las zonas con inviernos rigurosos, en donde la primavera comienza tarde y no hay desarrollo de cría durante el invierno, será suficiente aplicar dos tratamientos. 1. Primaveral tardío – cuando empiece a desarrollarse la cría pero no se ha extendido totalmente. Este tratamiento afectará principalmente a los ácaros en estado forético. Es aconsejable realizarlo con algún acaricida orgánico o de baja residualidad. 2. Principios de otoño – cuando se termina la cosecha y empieza a disminuir el nido de cría. En estas zonas se trata aproximadamente cada seis meses. B. En las zonas con inviernos menos rigurosos, o en el caso de la transhumancia, es aconsejable hacer tres tratamientos. Los tratamientos indispensables para el primer año se realizarán en las siguientes fechas: 1. Principios de primavera: consistirá en un tratamiento de las colmenas cuando el nido de cría empieza a expandirse. Atacará básicamente a los ácaros en estado forético. 2. Un tratamiento de verano, al finalizar la última vuelta de cosecha, con acaricidas que puedan actuar sobre los ácaros en estado forético y a la salida de su periodo reproductivo. 3. Un tratamiento de otoño, aplicado cuando el nido de cría se haya reducido en forma importante y los ácaros se hallen en su totalidad en estado forético (sobre las abejas). En estos casos es importante desarrollar a la vez técnicas de manejo que disminuyan el número total de ácaros, como ser, la formación de núcleos con mayor cantidad de cría operculada y realizar un tratamiento luego de quince días de formados ya que antes que comience la postura de la nueva reina siempre existirá un periodo en donde todas las varroas estén sobre las abejas. Listado de principios activos con efectos acaricidas: Primavera - Salida del invierno (apertura del bolo invernal - activación del nido de cría): Oxálico Fórmico Timol Amitraz. Verano (después de la última vuelta de la cosecha): Fórmico Amitraz Coumaphos Fluvalinato Flumetrina. Otoño (antes de entrar a la invernada): Timol Oxálico Amitraz Coumaphos Fluvalinato Flumetrina. Listado de productos aprobados para su uso en apicultura: No todos los principios activos acaricidas mencionados están disponibles en el mercado a través de productos veterinarios aprobados por SENASA para su uso en apicultura. Por lo tanto, el Plan de Curas deberá diseñarse teniendo en cuenta, entre otras cosas, que los productos elegidos se encuentren aprobados por la autoridad competente para su uso en apicultura, lo cual deberá chequear a través del Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 27 �listado actualizado difundido por el Organismo. El registro de productos veterinarios es dinámico y sufre, eventualmente, bajas y altas de productos. Por lo tanto, previo a la adquisición de productos acaricidas se deberá consultar y verificar que los productos elegidos estén aprobados. Respetando el período de carencia y utilizando exclusivamente medicamentos autorizados se asegura la calidad y se garantiza que no se favorecerá al desarrollo de resistencia ni quedarán residuos en los productos de la colmena. Por otro lado, durante toda la temporada los apicultores podrán utilizar mecanismos para la disminución de la carga del ácaro, pero que es sabido no controlan las poblaciones. Los mecanismos permitidos son: Pisos trampa para Varroa. Utilización de panales zanganeros. Importante El uso de cualquiera de estos mecanismos, no elimina ninguno de los tratamientos indispensables para el control de Varroa. A raíz de la gran cantidad de información circulante que carece de rigor científico en torno al uso de la vaselina y a la gran mortandad causada en colmenas solo tratadas con vaselina, nos vemos en la obligación de advertir que la vaselina no es un acaricida y que su eficacia real no supera los límites de daño económico. 3.16 Procedimientos ante la denuncia El apicultor vigilará de forma continuada, por su propia iniciativa y por estar obligado legalmente, el estado sanitario de sus abejas aplicando los métodos de diagnóstico descriptos. Figura 1. Curva estimada de desarrollo de población de abejas en colmenas y momentos de aplicación de acaricidas. 1i, 2i y 3i: los tratamientos indispensables para el caso B. Tener en cuenta que esta curva corresponde a una zona de clima templado por lo que debe adaptarse de acuerdo al desarrollo poblacional de otras regiones. Ya que la trashumancia es uno de los factores difusores de la parasitosis, requisitos previos para proteger los territorios limpios son la colaboración del Servicio Veterinario oficial en el exacto cumplimiento de los programas de desplazamientos de colmenas y del oportuno mantenimiento de éstas por el apicultor afectado, así como la observación de las pertinentes disposiciones legales. Al recibir material vivo, se someterá a un diagnóstico de la enfermedad y al inmediato tratamiento en caso de que fuera necesario. 28 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �3.17 Procedimientos ante sospechas En caso de sospecha, se pondrán en práctica las medidas generales habituales para la prevención de epizootias (aislamiento del asentamiento, toma de muestras y envío al laboratorio autorizado, denuncia obligatoria). Comprobado el diagnóstico, se creará en torno al emplazamiento afectado una zona de aislamiento de 1,5 km de radio, en la que no se permitirá el tránsito de material vivo, debiendo someterse todas las colmenas y asentamientos en ella ubicados a subsiguientes investigaciones y tratamientos acaricidas correspondientes. Las poblaciones de emplazamientos infestados no pueden movilizarse del lugar hasta tanto transcurran 48 horas de la aplicación de un producto acaricida oficialmente autorizado para uso en apicultura y siguiendo las instrucciones de empleo del mismo. Quedará constancia escrita del tratamiento seguido. Si es necesaria la recepción de colmenas desde otro establecimiento, todas las poblaciones del asentamiento afectado habrán sido sometidas antes, fehacientemente, al tratamiento medicamentoso. Los tratamientos deben combinarse con otros procedimientos que hacen a la estrategia de control de la enfermedad. (Ver punto Estrategias de Control de Varroosis) 4. Nosemosis 4.1. Características Es una enfermedad parasitaria intestinal, invasiva y contagiosa que afecta a las abejas adultas (obre ras, zánganos y reina). Es provocada por un hongo llamado Nosema apis y, más recientemente, Nosema ceranae. Su distribución es cosmopolita, aunque se la considera importante en países templados ya que está muy asociada a factores climáticos como la temperatura, humedad y precipitaciones. Provoca grandes daños económicos al reducir significativamente la capacidad de producción. 4.2. Daños directos Debido a las fuertes lesiones en el intestino medio, las abejas aparecen con el abdomen abultado, débiles, presentan inicialmente cierta excitabilidad, después letargo, pierden la capacidad de vuelo, se imposibilita el aguijoneo, sufren una notable parálisis y finalmente se mueren. Desde el punto de vista fisiológico, se pierde la incorporación de nutrientes, la concentración de lípidos y proteínas en hemolinfa y la vida media de las abejas afectadas se reduce de un 20 a 40%. Esto provoca una marcada disminución en la población de abejas adultas en la colonia. No afecta directamente a la cría. 4.3. Daños Indirectos Las consecuencias de la parasitación por Nosema, son de suma gravedad. Al estar lesionado el aparato digestivo, las abejas no pueden digerir adecuadamente los alimentos por lo que el consumo de las reservas aumenta entre un 20 y 30%. Esto lleva a una disminución en la producción de miel. Al no poder digerir los nutrientes necesarios para el correcto funcionamiento del sistema glandular, se pierde la actividad de las glándulas hipofaríngeas que terminan atrofiándose y dejan de ser funciona les, por lo tanto, la cría tampoco recibe la alimentación correcta en cantidad y calidad. Las abejas jóvenes mueren rápidamente, no pueden reemplazar a las pecoreadoras y se desencadena un desequilibrio en la población, la colonia se debilita y nunca llega a desarrollar. Debido al daño producido en el tracto digestivo, no se aprovechan convenientemente los alimento s ingeridos por la abeja, provocando una debilitación progresiva y generalizada de la colonia, que se manifiesta en la disminución de su vitalidad, disminución de la vida media de las abejas, de los movi mientos y la respuesta a los estímulos de los individuos afectados. Las reinas enfermas, además de estos síntomas, presentan una disminución en su actividad de postura. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 29 �La tolerancia a otras enfermedades es menor cuando las colonias están afectadas por Nosemosis, ya que algunos virus que ingresan al organismo de la abeja por vía digestiva encuentran el medio óptimo para su desarrollo en aquellas abejas cuyo intestino se encuentra alterado por acción del parásito (virus X, Y y Filamentoso). 4.4. Etiología Nosema apis y ceranae son organismos unicelulares, hongos microsporidios, caracterizados por un largo filamento polar arrollado (hasta 400 micras de largo). Son parásitos intracelular obligados. Presentan formas esporulares de resistencia llamadas esporos que miden entre 3,5 micras de ancho por 6 de largo (existen ligeras diferencias de tamaño según sea de apis o ceranae). Estos esporos son ovalados y refringentes al visualizarlos al microscopio óptico. Constituyen la forma infectante de la nosemosis. Los esporos de Nosema apis y ceranae viven como parásito en las células del epitelio del intestino medio y poseen una membrana gruesa conformada por tres capas que los hacen sumamente resistentes. En el agua congelada pueden permanecer resistentes durante años; en la miel tres meses; en el suelo y a la sombra, dos meses; y en la abeja en estadío de putrefacción, entre 10 y 20 días. Se destruyen por calentamiento a 59 ºC durante diez minutos en la miel y en el agua a 65 ºC durante un minuto. 4.5. Población susceptible La enfermedad afecta a abejas adultas, tanto a obreras, zánganos y reinas. Es muy importante la temperatura en la evolución del parasitismo de Nosema. Si ésta se mantiene entre 30 y 35 ºC, una sola espora es capaz de infectar todo el ventrículo. Aunque la dosis infectiva media es de aproximadamente 30 o 90 esporas por abeja. Cuando la infección alcanza su nivel máximo, el organismo de una sola abeja puede albergar entre 30 a 50 millones de esporas. 4.6. Patogenia Las esporas son ingeridas por las abejas desde el alimento o el agua contaminada, llegan al buche melario y a partir de aquí, después de atravesar el proventrículo, se dirigen al intestino medio después de unos diez minutos de haber sido ingeridos, donde favorecidas por los jugos intestinales, germinan. La germinación ejerce una presión interna en el esporo por la cual se produce la evaginación del filamento polar y gracias a éste, penetran a las células de la pared ventricular. A través del filamento, que es hueco, se libera el contenido del esporo e invaden la célula. Allí se multiplican y desarrollan con mucha rapidez utilizando los componentes de la célula parasitada. La infección se inicia en la parte posterior del ventrículo y de allí se disemina a la parte anterior. Una vez dentro de la célula, el parásito aumenta su tamaño, inicia la división celular y pasa por todos los estadíos (meronte, merozoíto, esporonte, esporozoíto) hasta finalizar con una enorme cantidad de nuevos esporos. Bajo condiciones óptimas, el desarrollo se completa entre 48 y 60 horas. Las células endoteliales afectadas por distintas fases del desarrollo del parásito se desprenden del revestimiento intestinal y caen a la luz del intestino liberando nuevos esporos y estadíos evolutivos de Nosema. Una parte de estos nuevos esporos infestan las células endoteliales vecinas sanas o regeneradas (autoinfección) y otra parte se elimina por medio de las heces al medio ambiente, reiniciando el ciclo en otras abejas. Como se mencionó anteriormente, la temperatura óptima para el desarrollo de las esporas es de 30 a 35 ºC. Si la temperatura se mantiene por encima de los 30 ºC, en dos semanas se infecta la totalidad del intestino medio de la abeja, provocando un gran daño celular. Se provoca la pérdida del tono 30 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �muscular del órgano lo que provoca la desaparición de sus estrías dejándolo fláccido. También afecta la coloración normal del ventrículo, tornando el color normal marrón verde amarillento a un color blanco lechoso. 4.7. Transmisión La transmisión tiene lugar de abeja a abeja durante los períodos de confinamiento en invierno, como resultado de la contaminación de los panales y los pisos por las deyecciones de las abejas. Sin embargo los esporos requieren temperaturas mayores a las del invierno para su potencial desarrollo por lo que recién a la salida del período invernal comienza su reproducción, afectando a un gran número de abejas. La transmisión dentro del apiario se produce principalmente por la deriva de abejas parasitadas, el pillaje de miel de colmenas enfermas, los alimentadores que se usan durante un largo período también pueden ser una fuente de transmisión del parásito. Todas las circunstancias que lleven al encierro y hacinamiento de la colonia, son factores que predisponen a la aparición de la enfermedad. 4.8. Diagnóstico No hay signos específicos de la enfermedad, sin embargo pueden visualizarse a campo algunos signos en las colonias afectadas. Algunos de ellos son comunes a las manifestaciones producidas por algunas enfermedades virales como ser el temblor, el abdomen abultado, la incapacidad de vuelo, etc. Otros también pueden ser compartidos con otras enfermedades de tipo disentérico como las deyecciones aguachentas en los techos y en las planchas de vuelo. Una manifestación al nivel de los panales de cría es la ausencia o deficiencia de jalea real en las celdas larvales. La observación a campo de los ventrículos, buscando las alteraciones en su tonalidad y color, nos puede dar una pauta de la presencia de Nosemosis, pero muchas veces se encuentran ventrículos aparentemente normales no porque no estén afectados por Nosema, sino porque la invasión de sus células recién comienza. Cualquiera de estos signos pueden encontrarse en las colmenas pero cuando la enfermedad alcanzó niveles extremos, por lo tanto, no podemos esperar a encontrarlos. Se debe tomar muestras y recurrir al diagnóstico de laboratorio. 4.8.1. Diagnóstico de laboratorio - Determinación del nivel de infestación. En todos los casos, las muestras deben ser abejas adultas, tomadas de la piquera. Se toman muestras individuales, es decir, una muestra por colmena y de al menos el 10 % de las colmenas que conforman el colmenar. Se envían en formol 4% o refrigeradas, dependiendo de los requerimientos del laboratorio. Comúnmente se utilizan dos métodos para determinar el nivel de infestación por Nosema. En ambos métodos se macera el material en estudio, se lo procesa y observa en el microscopio óptico para realizar el conteo de esporos. Ambas técnicas son válidas siempre que se relacionen los resultados obtenidos con el comportamiento de la parasitosis en la región, época del año, observaciones a campo, etc. a) Método de Cantwell (1970) modificado por Fries (1984) Se necesitan 100 abejas mayores de 10 días de edad, tomadas de la piquera, conservadas en formol 4%, el cual debe cubrir la totalidad de las abejas. Utilizando formol, la muestra se conserva por meses sin alterar el análisis posterior. Según la cantidad promedio de esporos, por abeja, el resultado se expresa en nivel de infestación: débil, mediano o fuerte. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 31 �Clasificación según resultado del conteo Nº de esporas por abeja Nivel de infestación Entre 0 y 500.000 DEBIL Entre 500.000 y 1.000.000 MEDIANO Más de 1.000.000 FUERTE b) Método de Cornejo-Rossi Son suficientes 35 abejas, mayores de 10 días de edad, tomadas de la piquera, conservadas en frío, con orificios en la tapa del frasco. Según la cantidad de esporos por mm 3, el resultado se expresa en niveles de infestación de 1 a 5. Clasificación según Cornejo-Rossi Nivel de infestación Nº de esporas por mm3 Nivel 1 10.000 a 100.000 Nivel 2 100.000 a 600.000 Nivel 3 600.000 a 800.000 Nivel 4 800.000 a 1.000.000 Nivel 5 Superior a 1.000.000 4.9. Tratamiento y Control Debido a la extensión de ciertas prácticas de manejo para la profilaxis de otras enfermedades como la loque americana, mediante la eliminación del material inerte de las esporas de esta bacteria, se eliminan también los de Nosema. La decisión de aplicar un tratamiento dependerá del nivel de infestación arrojado por cualquiera de las dos técnicas de laboratorio. El resultado del recuento debe relacionarse con las condiciones de producción, estado general de las colmenas y medio ambiente, como los aspectos de manejo, estrés nutricional, ciclos de floración, etc. Generalmente, aplicar las prácticas preventivas (Punto 4.10) resulta suficiente para evitar la aparición de la enfermedad, no obstante, ante altos niveles de infestación todas las colonias del colmenar deberán recibir tratamiento medicamentoso. Para el tratamiento se debe administrar algún producto veterinario aprobado por SENASA, elaborado con el principio activo fumagilina, antibiótico que hasta el momento resultó ser el que presenta mayor eficacia. 4.10. Prevención Es posible prevenir la aparición de la enfermedad o lograr mantener niveles de infección de Nosema por debajo de los límites que llegan a afectar el correcto desarrollo de las colonias y la disminución en la producción de miel debido el aumento del consumo de las reservas. Entre las medidas preventivas se recomienda: Renovar material anualmente: esterilizar el material al inicio de cada temporada, reemplazar los panales de cría frecuentemente, eliminando los panales negros, etc. Controlar la temperatura y la humedad: evitar la sombra en forma permanente, evitar formar núcleos al final de temporada, evitar la inundación y condensación de agua dentro de las colmenas, etc. Manejo nutricional: asegurar la disponibilidad de polen a fin de lograr la acumulación de reservas proteicas para el invierno, asegurar una distribución racional de los jarabes azucarados durante el invierno. Ingreso a la invernada: procurar salir del otoño con un excelente estado sanitario y, en lo posible, con reinas nuevas. 32 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Determinar periódicamente el nivel de infestación: muestrear el 10% de las colmenas del apiario, de manera individual, en otoño y en primavera, evaluando en cada caso, la aplicación o no de tratamiento medicamentoso. 4.11. Procedimiento ante la sospecha En caso de sospecha o denuncias, se pondrán en práctica las medidas generales habituales para la prevención de epizootias (aislamiento del asentamiento, toma de muestras y envío al laboratorio autorizado, denuncia obligatoria). La investigación consistirá en recolectar muestras de abejas adultas (tomadas de la piquera) y enviarlas al laboratorio para el diagnóstico cuantitativo. De acuerdo a los resultados y otros factores ambientales, se determinará la necesidad de aplicar un tratamiento. Comprobado el diagnóstico, se creará en torno al emplazamiento afectado una zona de aislamiento de 1,5 km de radio, en la que no se permitirá el tránsito de abejas, debiendo someterse todas las colmenas y asentamientos en ella ubicados a subsiguientes investigaciones y tratamientos correspondientes. 5. Ascophaerosis 5.1. Características Es una enfermedad micótica provocada por un hongo de la especie Ascophaera que afecta a las larvas de las abejas entre los 3 y 4 días de edad. Fundamentalmente a las crías de zánganos, en segundo término a las de obreras y ocasionalmente a las que darán origen a las reinas. También se la llama Cría Encalada, Cría de Tiza, Cría Calcárea o Chalkbrood. Los hongos por sí solos no causan daño y difícilmente maten a la colonia afectada. La cría yesificada se manifiesta por la presencia de factores predisponentes como la humedad, bajas temperaturas, mala ventilación y escasez de reservas proteicas. Las colonias débiles y pequeñas son las más susceptibles pues en ellas aparecen todos estos factores. Existen otros factores de tipo yatrogénico (provocados por el apicultor) como el uso indiscriminado de antibióticos que afecta la flora banal de las abejas provocando un desequilibrio que aprovecha el hongo para infectar, y la falta de renovación de panales, entre otros. 5.2. Presentación Está presente en prácticamente todos los países en los que se practica la apicultura, exceptuando algunos de Centro América en los que aún no se ha descripto. En Argentina se la detectó por primera vez en el año 1980. Si bien esta enfermedad, no se la considera importante, últimamente ha aumentado la incidencia, convirtiéndose en un problema de cierta relevancia económica. 5.3. Etiología El hongo Ascophaera fue descubierto a comienzos del siglo pasado aunque recién fue descripto en 1921 bajo otros nombres. Recién en el año 1955 Spiltoir y Olive reclasificaron al hongo dándole el nombre de Ascophaera. Este hongo pertenece a la clase de los aschomicetos, que se reproduce heterotálicamente cuando los micelios entran en contacto entre sí, originando los esporos que son la forma infectante de la enfermedad. Los micelios son de color blanco mientras que los esporos lo son oscuros. Se han descripto hasta el momento unas ocho especies de hongos que pueden aparecer en la colmena. Muchas de ellas son saprófitas que viven a expensas del alimento larval o bien de las deyecciones, y Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 33 �otras aparecen como patógenas como es el caso de Ascophaera y los Aspergillus (fumigatus, niger, flavus) agentes causales de la Stone Brood o Cría de Piedra. Se han descripto hasta hoy, dos variedades del hongo Ascophaera con poder patógeno sobre Apis mellifera: Ascophaera major (Skou, 1972) cuyos esporos miden de 3 a 4 micras de diámetro; y el Ascophaera apis (Spiltoir y Olive, 1955), de esporas más pequeños, entre 1 y 2 micras de diámetro. Ambas especies son capaces de producir los síntomas de la enfermedad, aunque la más común es la variedad apis. Estas variedades de Ascophaera no pueden reproducirse entre sí. 5.4. Patogenia El agente ingresa a la colmena acarreado por las abejas pecoreadoras. También se ha comprobado que los ácaros varroa serían portadores de esporos fúngicos. Sin embargo, la sola presencia del hongo en las colmenas no significa que se desarrollará la enfermedad. Para que la Cría Yesificada se manifieste, hace falta que se presenten los factores predisponentes antes mencionados, principalmente humedad y temperatura que favorezca el crecimiento del hongo (entre 20 y 30ºC). Las larvas de mayor susceptibilidad son las de 3 y 4 días de edad, principalmente las de zánganos, no por una cuestión biológica, sino simplemente porque se encuentran en la periferia de los marcos donde la temperatura por lo general es menor. Las larvas ingieren los esporos inoculados por las nodrizas junto con el alimento larval. Al ser ingeridos, una vez en el intestino medio, específicamente en el extremo posterior, germinan y se inicia el crecimiento del micelio. El micelio atraviesa la pared intestinal y buscando el oxígeno necesario para su desarrollo, rompe el extremo posterior de la larva dejando por lo general inafectada la cabeza. Cuando esto sucede se forman los cuerpos fructíferos en la superficie exterior de la larva muerta. Las Ascophaeras no se multiplican en abejas adultas. Las larvas mueren por ascophaerosis, por lo general, 6 o 7 días después de infectadas, cuando las celdas ya fueron operculadas. Los cadáveres aparecen al principio con un aspecto esponjoso y tume factas, adquiriendo la forma hexagonal de la celda. Más tarde se encogen y endurecen, tomando la consistencia y el aspecto de un pedazo de yeso o tiza. Una vez que las larvas mueren y endurecen, los esporos se agrupan en ascos y a su vez se encierran en quistes que tienen un diámetro entre 50 y 140 micras. Los esporos son muy resistentes en el medio ambiente, pueden sobrevivir hasta 15 años. 5.5. Factores predisponentes Humedad y temperatura: Exceso de humedad, bajas temperaturas, cambios bruscos de temperatura, mala ventilación, etc. Escasez de reservas proteicas. Colonias débiles y pequeñas: desequilibrio entre crías y nodrizas. Situaciones de estrés dentro de la colmena: falta de miel, carencia de polen, cese en la entrada de néctar, etc. Uso indiscriminado de antibióticos: provoca un desequilibrio afecta la flora banal de las abejas provocando que aprovecha el hongo para infectar. Manejo: falta de renovación de panales de cría. 5.6. Cuadro clínico Como ya se ha mencionado, lo más probable es que la enfermedad se presente en aquellas colmenas débiles o pequeñas. Sin embargo si las condiciones ambientales son óptimas para el desarrollo del 34 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �hongo, puede afectar, aunque con menor gravedad, cualquier tipo de colmena. Es una enfermedad estacional. La época en que empiezan a visualizarse los signos es al principio de la temporada, cuando se inicia la postura y el número de abejas aún no es suficiente para atender las crías, regular la temperatura y ventilar todo exceso de humedad. Antes de abrir las colmenas, podemos detectar la enfermedad por la presencia de momias en las piqueras, consecuencia del comportamiento de limpieza de algunas colonias. En los marcos de crías se ven larvas muertas momificadas, operculadas o no. Algunas momias presentan un color blanquecino correspondiente a los micelios, mientras que otras tienen un color oscuro que indica la presencia del hongo en su estado infectante, el de esporo. En las colonias gravemente afectadas, encontramos muchas celdas con restos larvales duros y sueltos. Al agitar estos marcos reproducimos un ruido característico. 5.7. Diagnóstico El diagnóstico clínico a campo es suficiente para determinar la presencia de la enfermedad. Sin embargo hay posibilidades de realizar en laboratorio un frotis húmedo para visualizar los quistes y los esporos. También puede confirmarse el diagnóstico por medio de cultivos del material patógeno en laboratorio especializado, en los que desarrollarán abundantes cuerpos fructíferos. 5.8. Tratamiento y prevención No existe un tratamiento específico para el control de esta enfermedad. Por lo general se produce la curación espontánea de la colmena cuando la colonia logra eliminar las momias y se equilibran los principales factores que desencadenaron la enfermedad. Dada la poca importancia relativa de la Cría Yesificada, no se han realizado muchos ensayos que permitan determinar la eficacia de los productos químicos para tratarla. Por otro lado muchos intentos han fracasado por la susceptibilidad de la abeja a los productos y la inestabilidad de los mismos. Hay muchos productos antifúngicos pero que a la vez inhiben la formación de quitina en la abeja por lo que no se recomiendan. Durante los últimos años se han ensayado fumigaciones con algunos desinfectantes como el óxido de etileno en diferentes concen- traciones (2% durante 24 hs.; 3% durante 6 hs. y 7% durante 1 hora), amonios cuaternarios, formal- dehído al 4%, Timol al 0,7%, ácido acético glacial al 80% e inclusive simples soluciones jabonosas. Más importante que los tratamientos con productos químicos es adoptar medidas de manejo que orienten a reducir los factores de riesgo y la carga patógena, como al mantenimiento de la salud general de la colonia. Dentro de las principales pautas de manejo, tanto para tratar como para prevenir la enfermedad, se pueden mencionar las siguientes: Quemar los panales afectados y retirar las momias de los pisos que actúan como reservorio de los esporos fúngicos. Eliminar de la cámara de cría los panales viejos. No intercambiar panales entre colmenas enfermas y sanas. Rociar jarabe estimulante sobre los marcos de cría afectados para favorecer la limpieza de las momias dentro de las celdas. Regular el espacio de la colmena para evitar la condensación de humedad y lograr la temperatura óptima. Suministrar suplementos proteicos si las reservas de polen son insuficientes. Manual de Procedimientos / Trámites en apicultura 35 �Evitar el enfriamiento de la cría: No colocar marcos de cría operculada en colmenas débiles o levemente afectadas, no retirar abejas adultas de colonias enfermas y débiles, ni darles crías extra para desarrollar, evitar revisar colmenas y núcleos en días fríos. Orientar la piquera de manera de evitar los vientos fríos. Cambiar las reinas de colmenas afectadas por reinas nuevas. La selección de material vivo por aptitud de limpieza, al igual que en la prevención de otras enfermedades apícolas, hace a las colonias más tolerantes a la cría yesificada. 6. Apiarios abandonados La denuncia de apiarios abandonados será motivo de alerta sanitario pues resultan un potencial riesgo de difusión de enfermedades. Deben ser inspeccionados por la autoridad veterinaria o por quien ésta designe y acompañe. Tener en cuenta que debe confirmarse la veracidad sobre el abandono de las colmenas antes de decidir el destino de las mismas. En caso de encontrar colmenas enfermas se procederá a su destrucción o saneamiento. Las colmenas sanas podrán ser donadas de acuerdo al criterio del veterinario oficial, posibilidades y recursos disponibles. 7. Enfermedades Exoticas 7.1 Introducción Una enfermedad exótica es una enfermedad que nunca fue detectada en una región o país determinado. De la cual no fueron observados sus signos clínicos ni su agente etiológico. Las plagas parasitarias descriptas en esta sección son consideradas exóticas en nuestro país. Su condición de “exóticas”, sumado a la poca información sobre su comportamiento, hace que se desconozca la magnitud de los daños que ocasionaría la aparición de alguna de ellas en nuestro país. En caso que esto ocurriese, solamente una rápida y efectiva reacción de la comunidad junto a la autoridad sanitaria podrían minimizar las gravísimas consecuencias. A través de la Resolución 422/03, las enfermedades exóticas de todas las especies animales se encuentran incorporadas al grupo de enfermedades referidas en el artículo 4º del Reglamento General de Policía Sanitaria, aprobado por Decreto de fecha 8 de noviembre de 1906, reglamentario de la Ley Nº 3959. El mismo, dice: “Todo propietario o persona que, de cualquier manera, tenga a su cargo el cuidado o asistencia de animales atacados por enfermedades contagiosas o sospechosos de tenerlas, está obligado a hacer inmediatamente la declaración del hecho a la autoridad local que los reglamentos sanitarios determinen”. En este caso, la autoridad sanitaria será la Oficina Local SENASA, el Programa de Control de Enfermedades, autoridades municipales o provinciales. El hecho de no denunciar o no notificar a la autoridad sanitaria este evento (sospecha o presencia) no significa que la enfermedad o plaga desaparezca o no exista. Por el contrario, impide la realización de las acciones sanitarias necesarias para evitar la difusión del foco. Las consecuencias sanitarias no sólo se manifestarán en el colmenar detectado inicialmente, sino en colmenares de los alrededores, inclusive hasta en todo el territorio nacional. Como se mencionó anteriormente, el ingreso a nuestro país de alguna de ellas podría ocasionar graves consecuencias sanitarias y pérdidas económicas incalculables. Además, esta nueva condición perjudicaría fuertemente la comercialización de nuestros productos apícolas en el exterior. 36 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia En caso de sospechar o detectar la presencia de alguna de estas plagas parasitarias se procederá de acuerdo a la legislación vigente sobre la notificación de enfermedades denunciables (Ley Nº 3959 del año 1906 y la Res. SENASA 422/02): Notificación: se realizará de forma inmediata a la Oficina Local del SENASA, al Programa de Control de Enfermedades de las Abejas de SENASA Central, a las autoridades sanitarias provinciales o municipales. Inspección oficial del apiario: se realizará una investigación epidemiológica exhaustiva para identificar a todos los apiarios expuestos al riesgo. Interdicción e inmovilización: Se efectuará el aislamiento, vigilancia, identificación de las colmenas enfermas, saneamiento. Asimismo, no se permitirá la salida ni entrada de ningún material apícola vivo ni materiales inertes en la zona o región declarada como infectada. Comunicación del evento a las otras regiones Toma de muestras: En todos los casos se tomarán muestras, se acondicionarán y enviarán al Laboratorio Central de SENASA Inspección e inmovilización de apiarios vecinos: No se permitirá el movimiento, salida o entrada de material vivo ni material inerte dentro de un radio de 3 km a partir del foco primario. Se inspeccionarán todos los apiarios dentro de ese radio. Confirmación del diagnóstico Saneamiento: en caso de confirmarse el diagnóstico, se procederá a la destrucción in situ del material infectado. Según el artículo 24º de la Ley, el productor tendrá derecho a exigir una indemnización en dinero, igual al valor de los animales o materiales perdidos. También se deberá destruir o desinfectar toda construcción u objetos que hayan estado en contacto con las colmenas enfermas o que sirvan como vehículo de contagio. Levantamiento de la interdicción: sucederá en tiempo variable, lo decidirá el Servicio Veterinario según la enfermedad, período de incubación, permanencia en el ambiente, cantidad de colmenas afectadas, resultado de las inspecciones, etc. 7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae 7.3.1 Características generales y distribución Tropilaelaps clareae es un ectoparásito que afecta a la cría de las abejas. Son ácaros que dependen de la cría de las abejas para alimentarse y reproducirse. No son capaces de alimentarse de las abejas adultas debido a que sus quelíceros son primitivos y no están desarrollados para ello. Por ese motivo, en áreas del mundo donde hay corte de postura, los ácaros no pueden sobrevivir, ya que no resisten más de 7 días sin la presencia de cría. Por lo tanto, la mayor incidencia de esta parasitosis se presenta en países con climas cálidos que mantienen todo el año, o gran parte del año, cría en las colmenas. Se encuentra ampliamente distribuido en el sudeste asiático, donde parasita a su huésped original, Apis dorsata. Fue descripta por primera vez en Apis mellifera en Filipinas (Delfinado y Baker) en el año 1961 y ha sido encontrada también en Afganistán, China y otros países asiáticos. Hasta el momento, no fue notificada su presencia en Occidente. 7.3.2 Agente etiológico Son ácaros de color entre castaño y castaño oscuro y se encuentran cubiertos de pelos. Poseen una parte dorsal dura, donde se insertan los pelos, y una zona ventral compleja, que es blanda y que Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 37 �contiene los aparatos bucal, respiratorio, excretor y reproductor. La hembra adulta mide 1 mm de largo por 0,5 mm de ancho. Se hincha considerablemente cuando se alimenta. Normalmente mide 0,3 mm y llega a aumentar hasta 1 mm. Los machos son tan grandes como las hembras aunque más blandos en su parte superior. 7.3.3 Ciclo biológico El ciclo reproductivo es similar al del ácaro Varroa destructor. Desde el estadio de huevo a adulto transcurren seis días. La hembra Tropilaelaps, luego de una breve etapa forética, ingresa a la celda a punto de ser operculada. El primer huevo es puesto aproximadamente a las 48 hs. después de producirse el cierre de la celda. Las hembras colocan entre 1 a 4 huevos por celda. Cuando la abeja emerge, los ácaros hembras fecundadas salen junto con ella, pero ante la imposibilidad de alimentarse de la abeja adulta, ingresan inmediatamente a una nueva celdilla, continuando así su reproducción. No existe marcada preferencia por las celdas de la cría de los zánganos, como ocurre con el ácaro Varroa destructor. El hecho de no poder fijarse a la abeja, sumado a la dependencia de la cría hace que la etapa forética sea muy breve (Promedio: 1,6 días) 7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito Como se mencionó anteriormente, Apis dorsata es el huésped original. En general, debido al equilibrio huésped-parásito, las infestaciones en este biotipo suelen ser leves. La abeja es capaz de destruir al ácaro por sus propios medios, siendo frecuente encontrarlos muertos en el piso de la colmena. En cambio, el daño que podría ocasionar en una colonia de A. Mellifera es severo. En abejas adultas podrían verse consecuencias en infestaciones menores a las que necesita la varroasis para manifestarlas. Por este motivo, en regiones donde conviven ambas enfermedades predominaría la infestación con Tropilaelaps. 7.3.5 Signos clínicos Machos y hembras adultos pueden observarse fuera de las celdas de cría, moviéndose libremente sobre los cuadros y piso de la colmena. Son fácilmente desprendidos y observados si se sacude el material. Signos tempranos de la infestación suelen pasar desapercibidos, pero el crecimiento de la población de ácaros alcanza rápidamente niveles que provocan una alta mortandad de colmenas. Cuando la infestación es grave, las larvas se encuentran morfológicamente alteradas. Las pupas infectadas pueden presentar manchas oscuras, principalmente en las extremidades. La cría presenta una distribución salteada y las adultas nacen con signos similares a los provocados por Varroa destructor: abdomen acortado, alas y patas deformes, etc. 7.3.6 Transmisión La transmisión se produce a través de: pillaje, deriva, intercambio de material vivo, movimiento de abejas y crías, etc. El ácaro también puede actuar como vector para la transmisión de agentes virales. 7.3.7. Diagnóstico 7.3.7.a Diagnóstico clínico Al tratarse de una enfermedad exótica, resulta de suma importancia reconocer la enfermedad lo antes posible. El diagnóstico clínico consiste en la observación detallada de los cuadros de cría, los marcos, el piso, piso-trampa, interior de las celdas (desopercular), en busca de la presencia del parásito adulto. Por otro lado, en infestaciones graves, además de observar el ácaro se evidenciarán los signos clínicos antes descriptos. 38 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7.3.7.b Diagnóstico químico Es similar al efectuado para la detección de Varroa destructor. Luego de la aplicación de un producto químico adecuado se recolectan los parásitos que caen en una bandeja con vaselina previamente colocada en el piso. 7.3.7.c Diagnóstico diferencial En todos los casos se debe realizar el diagnóstico diferencial con Varroa destructor, con el cual existen evidentes diferencias morfológicas. 7.3.8 Toma de muestras Para la confirmación del diagnóstico de Tropilaelaps clareae se enviará un trozo de panal qu e contenga la cría con el parásito sospechoso en un frasco de boca ancha con formol al 4% para su identificación taxonómica. En caso de recolectar ácaros se conservarán en agua y alcohol al 50% o formol 4%. 7.3.9 Tratamiento 7.3.9.a Manejo sanitario El control de este parásito apuntará a la necesidad que tiene el ácaro de alimentarse de la cría. Una vez desaparecida ésta, los ácaros morirán en un tiempo variable. Las colmenas infestadas se tratarán mediante la remoción de la cría: Se colocan los cuadros con cría en un nuclero y luego de que emerjan las abejas, se dejan transcurrir seis días más para devolverlas a la colonia. Otra alternativa es enjaular las reinas durante 21 días. Se recomienda realizar esta maniobra al final de la entrada de néctar de manera de minimizar las pérdidas. 7.3.9.b Control químico Los químicos que controlan Varroa destructor son adecuados para Tropilaelaps spp, aunque los tratamientos mediante fumigación no son aconsejables porque sólo afectan al ácaro en fase forética, no siendo muy efectivos en el caso de Tropilaelaps. Aparentemente el ácido fórmico resulta ser el principio activo más efectivo para el control químico debido a su capacidad para penetrar a través de los opérculos. 7.4 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas) 7.4.1 Características generales y distribución Aethina tumida es un coleóptero, también llamado “Pequeño escarabajo de las colmenas”. Es originario de las regiones tropicales y sub-tropicales de Africa. Fuera de Africa fue detectado en los Estados Unidos (Georgia y Florida - año 1998), en Egipto (2000), en Australia (Sidney - 2002) y Canadá (2003). Una parte fundamental de su ciclo reproductivo transcurre dentro de las colmenas de las abejas provocando la destrucción total de la misma. Son escarabajos voladores de color negro que miden entre 5 y 7 mm de largo y de 3 a 4,5 mm de ancho. 7.4.2 Ciclo biológico El ciclo biológico tiene una duración que varía entre 31 a 81 días. El escarabajo adulto ingresa volando a las colmenas, atraído por la miel y la cría. Allí encuentra el lugar y el alimento necesario para iniciar su ciclo reproductivo. Colocan uno o varios huevos (similares a los de las abejas) en las celdas de los panales. Eclosionan larvas alargadas y de color blanquecino que llegan a medir hasta 10 mm de largo. Las larvas cavan galerías en los panales mientras consumen miel, cría y polen. Luego de 10 a 16 días, el desarrollo de la larva finaliza, pasando al estadio de pupa. Esta abandona la colmena, dejándose caer y enterrándose en la tierra. Durante 3 a 4 semanas, enterrada aproxi- Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 39 �madamente entre 10 y 20 cm de la superficie, la pupa sufrirá su metamorfosis dando como resultado a un adulto. Al desenterrarse, el escarabajo adulto es de color amarillento, luego se convierte en rojizo, marrón claro, luego marrón oscuro hasta llegar a negro. Estos adultos copularán, y las hembras fecundadas reiniciarán el ciclo ingresando a nuevas colmenas. 7.4.3 Diagnóstico Durante la revisación de la colmena pueden observarse una gran cantidad de escarabajos moviéndose a gran velocidad por los panales, en el piso de las colmenas, en las zonas más oscuras o entre los cabezales de los marcos. El diagnóstico consiste en la observación del escarabajo adulto, sus huevos, sus larvas y/o los daños que ocasiona en la colmena. 7.4.4 Daños Cuando las larvas comienzan a cavar galerías y destruir los cuadros, derraman la miel que, al mezclarse con sus deyecciones, fermenta y despide un olor similar a naranjas en descomposición que resulta repelente para las abejas. La colonia atacada, finalmente, abandona la colmena. 7.4.5 Toma de muestras A los fines de realizar la identificación taxonómica se deberá enviar al laboratorio el/los ejemplares sospechosos en un recipiente que contenga: alcohol y agua 50% o formol al 4%. 7.4.6 Transmisión El escarabajo puede trasladarse a través de su vuelo, por trashumancia, intercambio de material vivo o inerte, comercialización de frutas (kiwi, bananas, melón) y verduras, a través del comercio de plantas con tierra. 7.4.7 Control En los países que poseen esta plaga, el cumafós parece ser hasta el momento, el único principio activo capaz de destruir a los escarabajos. Sin embargo es conveniente atenerse a medidas profilácticas. 7.4.8 Medidas preventivas Mantener la limpieza alrededor de las colmenas: desmalezado, higiene general del apiario. No apilar alzas con miel con aberturas que permitan la entrada del escarabajo (sin abejas guardianas se facilita la introducción) Evitar falsas piqueras Seleccionar líneas genéticas con alto comportamiento higiénico Remover la tierra cercana a las colmenas con el fin de interrumpir el ciclo del escarabajo. Información Adicional Puede obtenerse información actualizada (listado de productos, novedades, legislación aplicable, etc. ) de las páginas web de SENASA y SAGPyA (www.senasa.gov.ar y www.alimentosargentinos.gov.ar respectivamente). O bien con los responsables del Programa de control de Enfermedades de las Abejas al siguiente correo electrónico: apicultura@senasa.gov.ar 40 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 41 �ANEXO III INSCRIPCION EN EL REGISTRO DE ESTABLECIMIENTOS HABILITADOS PARA LA PRODUCCION Y COMERCIALIZACION DE MATERIAL APICOLA VIVO RENAPA N° Fecha: ............../................./ ................... PROPIETARIO Nombre y Apellido o Razón Social: .................................................................................................................................. DNI/CUIL/CUIT: ....................................................... Domicilio: ........................................................................................................................................................................ Pdo./Dpto.: ..................................................................Cod.Postal: ................... Provincia: .............................................. Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ ESTABLECIMIENTO Razón Social: ................................................................................................. CUIT: ....................................................... Ubicación: ........................................................................................................................................................................ Pdo./Dpto.: ..................................................................Cod.Postal: ................... Provincia: .............................................. Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ Cantidad de Apiarios Afectados a la Producción de Material Vivo: ..................................... TIPO DE PRODFCCION Reinas Celdas Reales Núcleos Paquetes Otros: ................................ ESTIMACION DE LA PRODFCCION ANFAL Reinas Celdas Reales Paquetes Otros: ................................ Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ CORRESPONSABLE SANITARIO Inspector Sanitario Apícola: ............................................................................................................................................. DNI N° ...................................................................... Acreditación SENASA N° .......................................... .............................................................................. Firma del Interesado C.218 Aclaración: ................................................................ �ANEXO V INSPECCION SANITARIA ESTABLECIMIENTO APICOLA DE PRODFCCION Y COMERCIALIZACION DE MATERIAL VIVO INSPECCION N° Lugar y Fecha: ................................................................. ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................................... Apiario N°: .............................................................. Cantidad de Colmenas ............................................. Habilitación N° ........................... Propietario:.................................................................................................................... DIAGNOSTICO CLINICO A CAMPO Loque Americana Cria Yesificada Loque Europea Varroasis Nosemosis Otras: ............................. Cantidad de Colmenas Afectadas (aclarar enfermedad y totalidad de colmenas inspeccionadas): ........................................ ........................................................................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... ENVIO DE MFESTRAS A LABORATORIO ........................................................................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ................................................................................................................................................................................................ ............ ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ INSPECTOR ACTFANTE OFICINA LOCAL DE SENASA .............................................................................. Firma C.219 Aclaración: .................................................................................... Firma y Sello del Responsable ................................................................ Acreditación SENASA N° ......................................... �ANEXO VI ENVIO DE MUESTRAS ESTABLECIMIENTO APICOLA DE PRODFCCION YCOMERCIALIZACIONDE MATERIAL VIVO RENAPA N° Lugar y Fecha: ........................................................................ ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................................... Propietario:........................................................................................................................................................................ Dirección: ........................................................................................................................................................................ Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ MFESTRAS Números: .......................................................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ DIAGNOSTICO LABORATORIAL ENFERMEDAD: ............................................................................................................................................................................... RESULTADO: Positivo Negativo Métodos de Diagnóstico Empleados: ............................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................................... FECHA DE EMISION ................./......................................../.......................... Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ......................................................................................................................................................... ................................................... ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ INSPECTOR SANITARIO .............................................................................. TECNICO ACTFANTE DILAB .............................................................................. Firma Firma Aclaración: ................................................................ Aclaración: ................................................................ DNI N° ............................................. C217 DNI N° ............................................. Remitir Resultaao a la Oficina Local Corresponaiente a la Jurisaicción ael Establecimiento DQCUMENTQ VALIDQ PQR 30 DIAS A PARTIR DE LA FECHA DE TQMA DE MUESTRA �ANEXO V NOTIFICACION DE INGRESO DE MATERIAL APICOLA VIVO AL ESTABLECIMIENTO RENAPA N° Lugar y Fecha: ............................................................... ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................. Habilitación N°: ................................................................................................................................................................ Propietario o Responsable: ................................................................................................................................................ MATERIAL VIVO INGRESADO Indique cantidad, tipo y subespecie: ................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................ .......................................................................................................................................................................................... Fecha de Ingreso: ............../................../.............. Origen del Material: ............................................................................. Importación Mercado Interno País de Origen: ............................................. Establecimiento Productor: .......................................................................... Localidad: .......................................................................................................... Provincia: .............................................. Nombre del Propietario o Responsable: .............................................................................................................................. EN CASO DE CORRESPONDER A MATERIAL IMPORTADO, SOLO INDIQFE EL PAIS DE ORIGEN Y EL NOMBRE DEL ESTABLECIMIENTO PRODFCTOR Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ .............................................................................. Firma del Propietario o Responsable Aclaración: ................................................................ C.220 �Inspección correspondiente a OTOÑO/PRIMAVERA del Año CANTIDAD DE Apicultores Asesorados Colmenas Inspeccionadas Apiarios Inspeccionados COLMENAS ENFERMAS Loque Americana Cantidad Total Varroasis Otras: .......................................................................................................................................................................................................................................................... ............. TOMA Y ENVIO DE MUESTRAS Muestras Emitidas Loque Americana Varroasis ..................................................................................................................... Lugar y Fecha Nosema Otras ............................................................................... Firma y Sello Inspector �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Enfermedades de las abejas. Manual de Procedimientos Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2020 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección de Luchas Sanitarias Programas de Control de Enfermedades de las Abejas Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0084 Abstract A summary of the resource. El presente documento se dirige principalmente a los agentes sanitarios acreditados (Inspector Asesor Sanitario Apícola), veterinarios de las Oficinas Locales de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, profesionales privados, sectores interesados y a las autoridades provinciales, municipales y nacionales locales; por tanto, se centra en aspectos operativos del Programa Nacional de Control de Enfermedades de las Abejas. Table Of Contents A list of subunits of the resource. <div style="text-align: left;">1. LOQUE AMERICANA</div> <div style="text-align: left;">1.1 Características</div> <div style="text-align: left;">1.2 Presentación</div> <div style="text-align: left;">1.3 Patogenia</div> <div style="text-align: left;">1.4 Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">1.5 Cuadro clínico</div> <div style="text-align: left;">1.6 Etiología</div> <div style="text-align: left;">1.7 Proceso epizoótico</div> <div style="text-align: left;">1.8 Reservorios de gérmenes</div> <div style="text-align: left;">1.9 Transmisión</div> <div style="text-align: left;">1.10 Población hospedadora&nbsp;</div> <div style="text-align: left;">1.11 Prevención y lucha</div> <div style="text-align: left;">1.12 Tratamiento</div> <div style="text-align: left;">1.12.1 Recuperación del Material Vivo</div> <div style="text-align: left;">a. Trasiego Directo</div> <div style="text-align: left;">b. Trasiego Doble</div> <div style="text-align: left;">1.12.2 Recuperación del Material Inerte</div> <div style="text-align: left;">a. Calor - Fuego Directo</div> <div style="text-align: left;">b. Calor - Inmersión</div> <div style="text-align: left;">c. Calor y Presión</div> <div style="text-align: left;">d. Químicos</div> <div style="text-align: left;">e. Irradiación 1.12.3 Eliminación del material inerte</div> <div style="text-align: left;">1.12.4. Tratamiento medicamentoso</div> <div style="text-align: left;">1.13. Procedimientos ante la denuncia</div> <div style="text-align: left;">1.14. Procedimiento de atención de focos</div> <div style="text-align: left;">1.15. Toma y remisión de muestras</div> <div style="text-align: left;">2. LOQUE EUROPEA</div> <div style="text-align: left;">2.1 Características 2.2 Presentación</div> <div style="text-align: left;">2.3 Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">2.4 Etiología</div> <div style="text-align: left;">2.5 Reservorios de gérmenes</div> <div style="text-align: left;">2.6 Población hospedadora</div> <div style="text-align: left;">2.7 Prevención y lucha</div> <div style="text-align: left;">2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos 3. VARRAOSIS</div> <div style="text-align: left;">3.1 Características</div> <div style="text-align: left;">3.2 Presentación</div> <div style="text-align: left;">3.3 Daños Indirectos</div> <div style="text-align: left;">3.4 Etiología</div> <div style="text-align: left;">3.5 Ciclo Biológico</div> <div style="text-align: left;">3.6 Cuadro clínico</div> <div style="text-align: left;">3.7 Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">3.7.1 Prueba del frasco</div> <div style="text-align: left;">3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso</div> <div style="text-align: left;">3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría</div> <div style="text-align: left;">3.7.4 Método químico</div> <div style="text-align: left;">3.8 Difusión</div> <div style="text-align: left;">3.9 Reservorios de parásitos</div> <div style="text-align: left;">3.10 Transmisión</div> <div style="text-align: left;">3.11 Población hospedadora</div> <div style="text-align: left;">3.12 Prevención y lucha</div> <div style="text-align: left;">3.13 Tratamiento</div> <div style="text-align: left;">3.13.1 Control químico</div> <div style="text-align: left;">3.13.2 Formas de acción de los acaricidas</div> <div style="text-align: left;">3.13.3 Formas de administración</div> <div style="text-align: left;">3.14 Control de la Varroasis</div> <div style="text-align: left;">3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis</div> <div style="text-align: left;">3.14.2 Plan estratégico</div> <div style="text-align: left;">3.14.2.a Rotación de los Principios Activos</div> <div style="text-align: left;">3.14.2.b Evitar los Residuos</div> <div style="text-align: left;">3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación</div> <div style="text-align: left;">3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado</div> <div style="text-align: left;">3.15 Plan de Curas</div> <div style="text-align: left;">3.16 Procedimientos ante la denuncia</div> <div style="text-align: left;">3.17 Procedimientos ante sospechas</div> <div style="text-align: left;">4. NOSEMOSIS</div> <div style="text-align: left;">4.1. Características</div> <div style="text-align: left;">4.2. Daños directos</div> <div style="text-align: left;">4.3. Daños Indirectos</div> <div style="text-align: left;">4.4. Etiología</div> <div style="text-align: left;">4.5. Población susceptible</div> <div style="text-align: left;">4.6. Patogenia</div> <div style="text-align: left;">4.7. Transmisión</div> <div style="text-align: left;">4.8. Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">4.9. Tratamiento y Control</div> <div style="text-align: left;">4.10. Prevención<br />4.11. Procedimiento ante la sospecha</div> <div style="text-align: left;">5. ASCOPHAEROSIS</div> <div style="text-align: left;">5.1. Características</div> <div style="text-align: left;">5.2. Presentación</div> <div style="text-align: left;">5.3. Etiología <br />5.4. Patogenia</div> <div style="text-align: left;">5.5. Factores predisponentes</div> <div style="text-align: left;">5.6. Cuadro clínico</div> <div style="text-align: left;">5.7. Diagnóstico <br />5.8. Tratamiento y prevención<br />6. APIARIOS ABANDONADOS</div> <div style="text-align: left;">7. ENFERMEDADES EXOTICAS</div> <div style="text-align: left;">7.1 Introducción</div> <div style="text-align: left;">7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia</div> <div style="text-align: left;">7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae</div> <div style="text-align: left;">7.3.1 Características generales y distribución</div> <div style="text-align: left;">7.3.2 Agente etiológico</div> <div style="text-align: left;">7.3.3 Ciclo biológico</div> <div style="text-align: left;">7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito</div> <div style="text-align: left;">7.3.5 Signos clínicos</div> <div style="text-align: left;">7.3.6 Transmisión</div> <div style="text-align: left;">7.3.7. Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">7.3.7.a Diagnóstico clínico</div> <div style="text-align: left;">7.3.7.b Diagnóstico químico</div> <div style="text-align: left;">7.3.7.c Diagnóstico diferencial</div> <div style="text-align: left;">7.3.8 Toma de muestras</div> <div style="text-align: left;">7.3.9 Tratamiento</div> <div style="text-align: left;">7.3.9.a Manejo sanitario</div> <div style="text-align: left;">7.3.9.b Control químico</div> <div style="text-align: left;">7.4 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas)</div> <div style="text-align: left;">7.4.1 Características generales y distribución</div> <div style="text-align: left;">7.4.2 Ciclo biológico</div> <div style="text-align: left;">7.4.3 Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">7.4.4 Daños</div> <div style="text-align: left;">7.4.5 Toma de muestras</div> <div style="text-align: left;">7.4.6 Transmisión</div> <div style="text-align: left;">7.4.7 Control</div> <div style="text-align: left;">7.4.8 Medidas preventivas</div> <div style="text-align: left;">INFORMACION ADICIONAL</div> ENFERMEDADES DE LAS ABEJAS